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癌症(巴塞尔)。2011年3月;3(1): 716–729.
2011年2月21日在线发布。 数字对象标识:10.3390/癌症30100716
预防性维修识别码:PMC3106306型
PMID:21643534

肿瘤干细胞与上皮-间充质转化(EMT)-表型细胞:它们是表亲还是双胞胎?

摘要

肿瘤干细胞(CSC)是肿瘤内的细胞,通过分化为构成整个肿瘤的异质性癌细胞谱系,具有自我更新和维持肿瘤启动能力的能力。这些肿瘤起始细胞可以为治疗后导致肿瘤复发的细胞提供资源。尽管CSCs的细胞起源仍有待完全阐明,但越来越多的证据表明,由不同因素诱导的上皮-间充质转化(EMT)与肿瘤的侵袭性和转移有关,并且这些细胞与CSCs具有共同的分子特征,因此通常被称为肿瘤干细胞或肿瘤起始细胞。EMT表型的获得是将早期癌转变为侵袭性恶性肿瘤的关键过程,这通常与上皮分化的丧失和间充质表型的获得有关。最近的研究表明,EMT不仅在肿瘤转移中起着关键作用,而且在肿瘤复发中也起着重要作用,它与肿瘤干细胞或癌诱导细胞的生物学密切相关。在这里,我们将简要总结有关肿瘤干细胞或CSC与EMT表型细胞之间分子相似性的现有知识,这些细胞与肿瘤侵袭性(以实体肿瘤为主)相关。

关键词:上皮-间充质转化,肿瘤干细胞,肿瘤起始细胞,耐药

1.简介

上皮-间充质转化(EMT)最初被认为是胚胎发生的一个特征,对胚胎发育过程中的形态发生至关重要。最近它也被认为与早期肿瘤转化为侵袭性恶性肿瘤有关[1]. 越来越多的证据表明,肿瘤进展与EMT表型的获得密切相关,EMT表型允许肿瘤细胞获得浸润周围组织的能力,从而允许这些细胞在远处转移[2-4]. 大多数肿瘤的进展与间充质表型的获得有关,这伴随着上皮标记物表达的丧失和间充质分子标记物的上调,导致细胞运动性和侵袭性增加[5]. 这些过程与获得“癌症干细胞样细胞”表型(也称为“干细胞”或癌症干细胞(CSC)特征)相一致[],尽管这些术语不是同义词。肿瘤的发生和复发被认为与CSC或致癌细胞的生物学密切相关[6-8]. 越来越多的证据表明,由不同因素诱导的具有EMT表型的细胞是肿瘤干细胞的丰富来源[5,9-11]这表明CSC、癌干样细胞、癌诱导细胞和EMT表型细胞之间的生物学相似性。此外,EMT在肿瘤细胞中的诱导不仅促进肿瘤细胞的侵袭和转移,而且有助于耐药[12-15]这表明,这些细胞的分子特性将有助于开发新的治疗方法来彻底根除肿瘤,这必将提高癌症患者的总体生存率。

2.EMT在肿瘤进展和转移中的作用

EMT是上皮细胞发生显著形态变化的过程,其特征是从上皮性鹅卵石表型转变为细长的成纤维细胞表型[16]. EMT的过程包括细胞-细胞连接的拆卸[17],肌动蛋白细胞骨架重组[18]增加细胞运动[1]和入侵[2]其特征是E-cadherin和闭塞小带-1(ZO-1)的下调和重新定位[19,20]β-catenin从细胞膜到细胞核的下调和移位,以及间充质分子标记物如波形蛋白的上调[18,21]、纤连蛋白和N-钙粘蛋白[1,4,12,16]. 在EMT过程中,具有规则细胞-细胞连接和粘附的非活动上皮细胞失去了细胞-细胞的连接,转化为个体、活动和侵袭性间充质表型细胞。EMT与癌症相关的想法最初遭到质疑,因为病理学家无法找到确凿证据支持人类肿瘤样本中存在EMT[22-25]. 然而,越来越多的证据表明,EMT过程在癌症进展和转移中至关重要[2,,5,12,22,26-29]. 实体瘤的进展是通过EMT的空间和时间出现发生的,从而使肿瘤细胞获得更具侵袭性和转移性的表型。具有间充质表型的转移性肿瘤细胞被认为会发生逆转,转移部位的间充质-上皮转化(MET),以获得相应原发肿瘤的病理学[12,22]. 这一过程是转移性肿瘤细胞在次要部位生长的关键步骤。最近的研究表明,原发性结肠癌及其相应的转移表现为混合上皮-间充质表型[2]. 肿瘤中心的细胞E-cadherin和胞质β-catenin仍呈阳性表达,外围的肿瘤细胞表现为表面E-cadherin缺失、波形蛋白上调和核β-catentin染色,这是EMT表型的典型特征[2,22]. 更重要的是,Chaffer等。选用膀胱癌TSU-pr1(T24)系列细胞株体内通过全身循环增加播种后的转移能力,并发现更多的转移亚系具有EMT特征[27]. 在前列腺癌中,耶茨等。对肝细胞和DU145或PC3细胞进行共培养,发现在共培养条件下,DU145和PC3细胞在接触的外周部位显示E-cadherin上调[30]. 尽管PC3细胞系是一种高度恶性的前列腺癌细胞系,来源于骨转移瘤,但大多数前列腺癌的EMT研究都使用PC3细胞[12]. 这些细胞株表现出细胞间粘附连接的分子标记物如E-cadherin的表达,并伴有上皮样形态,这与原发性上皮性肿瘤细胞的特征相一致。患者原发部位的前列腺癌细胞很可能在到达转移部位(例如PC3和DU145细胞最初来源的骨骼和大脑)时也获得了MET特征。这也可能与获得不完全上皮表型或混合表型有关,通常称为融合细胞表型[12,22]. 新的证据表明,EMT的过程是由细胞外信号(如胶原蛋白)和生长因子(包括转化生长因子-β(TGF-β)、成纤维细胞生长因子(FGF)、表皮生长因子(EGF)和血小板衍生生长因子(PDGF)a、B和D)之间的分子相互作用触发的[31-35]. 在最近的一项研究中,Graham等。表明IGF-1可以激活PC3细胞中的EMT表型,这是由ZEB1(锌指E-box结合同源框1)的激活介导的[36]. 这些结果表明,细胞中EMT表型的改变有助于肿瘤的侵袭性。

3.癌干细胞(CSC)或癌干样细胞

肿瘤干细胞(CSC)是肿瘤内的细胞,具有自我更新和分化为组成整个肿瘤的异质癌细胞谱系的能力。这些肿瘤起始细胞可以提供一个细胞库,导致治疗后肿瘤复发。Dick及其同事首次在白血病细胞中发现CSC[37]. 他们发现只有一小部分带有CD34的白血病细胞+CD38细胞细胞表面标记物被移植到严重联合免疫缺陷(SCID)小鼠中,导致与原患者相似的播散模式和白血病细胞形态[37]. 最近,在乳腺癌、结肠癌、脑瘤和前列腺癌等实体肿瘤中发现了CSC[38-43],Ricci-Vitiani等。发现105CD133型结肠癌细胞不诱导肿瘤形成。注入106五周后,总结肠癌细胞再次悬浮在基质凝胶中,生成可见肿瘤,而注射3000 CD133+四周后细胞诱导可见肿瘤[40]. 奥布莱恩等。还发现只有262 CD133+结肠癌细胞可诱导严重联合免疫缺陷(SCID)小鼠肿瘤形成[39]. 结果表明结肠癌起始细胞是CD133+结肠癌细胞。辛格等。分离脑肿瘤干细胞(BTSC),通过使用神经干细胞表面标记物CD133,从髓母细胞瘤与低度胶质瘤相比最具侵袭性的临床样本中提取自我更新能力增强的亚群[41,42]. 这些CD133+细胞可以在培养中分化为表型上与患者肿瘤相似的肿瘤细胞。他们还证明,注射100 CD133+细胞在NOD-SCID(非肥胖糖尿病,严重联合免疫缺陷)小鼠大脑中诱导肿瘤发生。在人类前列腺癌中,Patrawala等。使用CD44表面标记物从已建立的异种移植物中识别肿瘤起始细胞,并通过分类CD44使这些细胞富集+α2β1+单元格[44]. 由于大多数人类PCa具有成熟的管腔表型细胞,其特征是细胞角蛋白8/18、雄激素受体(AR)和前列腺特异性抗原(PSA)的表达,因此假设PCa的起源细胞是分化的管腔细胞。然而,PCa内有很高的表型异质性,包括转移部位,含有罕见的表型未分化细胞[45]. 尽管前列腺癌的起源细胞需要完全阐明,但越来越多的证据表明,肿瘤起始细胞在前列腺癌的进展和复发中起着关键作用[6-8,46,47]. 最近的研究表明,Oct4、Sox2、Nanog、lin28、Klf4和c-myc等多能性标记物的联合表达可以将体细胞重编程为多能性胚胎干细胞[48-50]这表明,在有癌基因的细胞中联合表达干细胞相关因子也可以诱导这些细胞处于未分化状态。有趣的是,顾等。发现从具有上皮表型的人前列腺标本中获得的细胞系通过hTERT永生化,并显示出胚胎干细胞标记物的表达,如Oct4、Nanog和Sox2[46]这与Oct4、Sox2、Nanog和c-myc在低分化肿瘤中过度表达的结果一致[51]. Nanog、Sox2和Oct4已被证明在癌症进展中发挥重要作用[52-55]. 最有趣的是,越来越多的证据表明,由不同因素诱导的EMT与转移有关,也与干细胞的生成有关[5,9-11,47].

4.EMT-表型细胞作为CSC的资源

大多数恶性肿瘤的进展与上皮分化的丧失和间充质表型的增加有关,其特征是细胞运动性和侵袭性增加[1]导致肿瘤转移[5]和耐药性[15]. 这些过程被认为与EMT有关[1,16,56,57]. 最近的研究表明,EMT不仅在肿瘤转移中起着关键作用,而且在肿瘤复发中也起着重要作用,这与CSC的生物学密切相关[14,58-64]. 莫雷尔等。证明CD44+CD24型−/低干细胞样信号可由CD44生成低的CD24型+细胞,非肿瘤性乳腺上皮细胞,通过激活Ras/MAPK信号通路。此外,他们还发现CD44+CD24型−/低细胞表现出EMT表型,其特征是E-cadherin表达减少和vimentin表达增加。他们假设EMT的诱导可能与CD44的转换有关低的CD24型+CD44细胞+CD24型−/低干细胞样细胞。为此,CD24+用转化生长因子-β(一种潜在的EMT诱导剂)处理的细胞在处理8天后出现CD24细胞,伴随着间充质表型细胞的富集,表现为E-cadherin的丢失和波形蛋白表达的增加[65]. 马尼等。进一步证明,由众所周知的转录抑制因子twist或snail的表达诱导的非致瘤性永生化人类乳腺上皮细胞进入EMT表型,导致上皮表型的丧失和间充质表型的获得,同时获得CD44高的/CD24型低的表达模式和乳腺形成能力以及肿瘤起始能力的增强[9]. 然而,分离的CD44高的/CD24型低的来自正常和肿瘤人乳腺细胞的干样细胞表现出间充质形态,并表达间充质标记物,如波形蛋白和纤维连接蛋白[9]. 桑蒂斯特万等。观察到上皮性乳腺癌免疫反应诱导EMT导致肿瘤生长体内[11]. 有趣的是,由此产生的间充质肿瘤细胞具有CD44+CD24型−/低表型具有重建上皮性肿瘤的能力并增加耐药性,这与乳腺CSC一致[11]. 最近,古普塔等。还发现,通过shRNA介导的E-cadherin表达下调,在转化的HMLER乳腺癌细胞中诱导EMT,显示CD44的数量增加高的/CD24型低的与上皮表型细胞相比,这些细胞表现出约100倍的乳腺球形成能力[66]. 更重要的是,他们发现EMT细胞显示出与CSC特征相关的耐药性增加[66]. 这些报告强烈提示EMT的诱导可以产生干细胞样细胞;然而,对这种过程的分子机制还没有完全了解。

5.将EMT与干细胞特征联系起来的miRNAs

众所周知,microRNAs(miRNAs)参与胚胎发育和癌症进展[67]已知这一过程与上皮性肿瘤细胞EMT表型的获得有关[68]. miRNAs是一种小的(19-24个核苷酸)非编码RNA分子,它通过与位于多个靶mRNAs的3′UTR中的种子序列相互作用来下调基因表达,从而导致mRNAs的翻译抑制或降解[69]. 进化上保守的miR-200家族参与了发育过程中分化过程的调控[68]. 最近的研究还表明,miR-200家族成员可以通过与ZEB1、ZEB2 mRNA的3′UTR序列结合来调节ZEB1和ZEB2的表达,从而调节EMT的过程[10,19,70-73]. ZEB1和ZEB2可以通过直接结合miR-200基因簇启动子中的E-box结合位点来抑制miR-200家族的表达,从而在EMT期间建立控制ZEB1、ZEB2和miR-200家庭表达的双负反馈环[74]. 此外,miR-200还被证明通过调节Bmi1、Notch1和Lin28B的表达与干细胞特征相关[75-77]. 下浓等。发现miR-200家族在CD44中受到强烈抑制+CD24型−/低谱系人类乳腺癌细胞和正常人类乳腺干细胞,而miR-200c强烈抑制正常乳腺干细胞形成乳腺导管的能力和由人类乳腺CSC驱动的肿瘤形成体内[76]. 他们还发现miR-200c抑制了Bmi1的表达,这与干细胞自我更新的调节有关[76]. 韦尔纳等。结果表明,EMT激活物ZEB1在低分化人类胰腺癌中强烈表达,原位(胰腺内)注射表达ZEB1的Panc1细胞导致大的原发性肿瘤侵入胃、脾、小肠和大肠,在裸鼠体内转移到淋巴结和肝脏。相反,注射ZEB1基因敲除的细胞导致较小的原发性肿瘤,几乎没有局部浸润,也没有淋巴结和远处转移。更重要的是,他们还证明了ZEB1对胰腺癌和结直肠癌细胞的致瘤能力是必要的。他们发现ZEB1不仅抑制miR-200c的表达,还通过抑制miR-203和miR-183的表达来控制Bmi1、Sox2和Klf4等“干”相关因子的表达[77]. 因此,ZEB1有望成为肿瘤治疗的靶点。最近,杨等。揭示了Bmi1在Twist1诱导的头颈部鳞癌EMT中起着重要作用,Twistl的异位表达不仅增加了Bmi 1的表达,还诱导了干细胞标记物Sox2的表达。他们进一步表明,Twist1直接调节Bmi1的表达。Twist1和Bmi1通过上调干细胞因子和抑制E-cadherin和p16INK4a的表达,对促进EMT和肿瘤启动能力是相互必要的[63]. 这些报告强烈表明miR-200家族与EMT的调节、CSC和干细胞特性的维持直接相关。

在许多信号通路中,已知Akt在人类癌症的发生和发展中起着关键作用,并且它还与EMT表型的诱导有关[28]. 有趣的是,伊利奥普洛斯等。证明了Akt的三种亚型通过调节miR-200家族的表达在EMT的诱导中起着相反的作用。他们在Akt-1中分别表达每个亚型−/−/Akt-2公司−/−/阿克特-3−/−细胞系,并发现在表达Akt-2的细胞中miR-200家族的表达显著降低[78]. 在转化生长因子-β(TGF-β)处理的MCF-10A细胞中,Akt-1的敲除也降低了miR-200的表达,并促进了转化生长因子β诱导的EMT,其特征是E-cadherin的表达降低,并通过增加乳房球形成能力诱导干样细胞表型。同时,MMTV-cErbB2/Akt1中的癌发生−/−小鼠miR-200表达下调,侵袭力增强。因此,Akt-1和Akt-2的比值而不是Akt的总活性可以通过调节miR-200家族的表达来控制EMT的诱导和“干”的维持[78]. 最近,他们还发现miR-200家族在癌干细胞诱导过程中受到抑制,但在携带可诱导Src癌基因(ER-Src)的MCF-10A模型中没有转化,并且抑制miR-200b显示CSC形成增加。有趣的是,他们证明miR-200b直接靶向多梳阻遏复合物(PRC2)的亚单位Suz12[79]. PRC2包含Suz12、EZH2、EED和RbAp亚单位,已知通过染色质修饰参与基因阻遏的调节,这对维持胚胎和成人干细胞至关重要[80,81]. PRC2介导的E-cadherin基因抑制促进了EMT的诱导。此外,进一步的研究表明,PRC2靶基因被干细胞调节因子如Oct4、Sox2和Nanog共同占据[80-82]. 伊利普洛斯等。发现在CSC形成过程中miR-200的缺失会增加Suz12的表达,而miR-200b的再表达或Suz12缺失会阻碍乳腺球的形成和维持[79]. 相反,Suz12在转化细胞中的异位表达促进了CSC的生成[79]. 这些结果表明miR-200b-Suz12-E-cadherin通路参与了乳腺癌细胞CSC的维持和侵袭特性。

我们最近发现,血小板衍生生长因子D(PDGF-D)是一种新发现的生长因子,可以调节细胞增殖、转化、侵袭和血管生成等多种细胞过程,通过下调miR-200家族的表达,诱导PC3 PCa细胞系发生EMT,导致ZEB1、ZEB2和slug的表达增加[20,70,75]. 与亲代PC3细胞相比,接触纯化活性PDGF-D蛋白的PC3细胞中miR-200的表达显著降低,这与ZEB2和slug的过度表达有关。有趣的是,具有EMT表型的PDGF-D过表达PC3细胞中miR-200的重新表达导致ZEB1、ZEB2和slug的下调,同时上皮标记物如E-cadherin、stratifin、EpCAM、F11R和connexin 26也相应上调,波形蛋白的表达降低[70]. 从这些结果中,我们得出结论,miR-200的丢失在PDGF-D诱导PC3细胞EMT表型的获得中起着重要作用,并且miR-200重新表达可以导致EMT表型向MET表型的逆转。有趣的是,我们还发现,PDGF-D过度表达诱导的EMT表型PC3细胞具有干细胞样特征,其特征是小鼠的克隆原性增强、自我更新能力增强以及致瘤性增强,这与干细胞标记物如Notch-1、Sox2、Nanog、,10月4日和Lin28B。这些EMT型细胞还显示miR-200或let-7家族的表达降低。更重要的是,通过转染miR-200前体蛋白,通过强制重新表达miR-200来逆转EMT,显著抑制克隆形成和前列腺素形成能力,这与下调Notch-1和Lin28B表达有关[75]. 此外,击倒Lin28B显著增加let-7的表达,降低自我更新能力。同时,我们还发现ARCaPM(M)与对照细胞相比,具有EMT表型的细胞也具有干细胞特征,这与Notch-1表达增加以及克隆形成和前列腺素形成能力增强一致(ARCaPE类细胞)具有上皮表型。miR-200c在ARCaP中被抑制M(M)具有EMT表型的细胞和miR-200c的重新表达将EMT表型逆转为MET表型,与Notch-1表达下调和ARCaP自我更新能力相关M(M)单元格[75]这些报告强烈提示miRNAs,尤其是miR-200家族成员,将EMT表型与干细胞特征联系起来(表1).

表1。

人类癌症中连接上皮-间充质转化(EMT)表型与干细胞特征的miRNAs。

微小RNAEMT和干细胞特征的调节功能裁判。
miR-200a型敲低Akt-1降低包括miR-200a在内的miR-200家族的表达,增加乳腺癌中乳腺球的形成能力[78]
miR-200b型miR-200b抑制前列腺癌中ZEB1、ZEB2、Lin28B和Notch1的表达
miR-200b靶向Suz12并有助于维持乳腺癌中的癌干细胞
[75,79]
miR-200c基因miR-200c抑制乳腺癌中ZEB1、ZEB2和Bmi1的表达;miR-200c还抑制胰腺癌中ZEB1、Sox2、Bmi1和KLF4的表达[77]
miR-183型胰腺癌中ZEB1下调miR-183并抑制Bmi1和KLF4的表达[77]
miR-203型胰腺癌中ZEB1下调miR-203并抑制Bmi1和KLF4的表达[77]

越来越多的证据表明,不同因素诱导EMT可产生干细胞样细胞,其特点是自我更新和侵袭能力增强,耐药性高,与肿瘤转移和复发密切相关(图1).

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上皮-间充质转化(EMT)表型细胞的诱导产生具有耐药性特征的癌症干细胞。生长因子,包括FGF、EGF、PDGF-B和PDGF-D,以及TGF-β、Notch-1和Wnt等因子可以诱导EMT,而miR-200家族通过调节转录抑制因子ZEB1和ZEB2的表达来抑制EMT。EMT表型细胞获得干细胞特征,其特征是转移能力增强、自我更新能力增强和获得性耐药。这些细胞转移到远处并进行MET以产生与原发肿瘤表型相似的转移性肿瘤。

6.观点

癌症的常规治疗主要针对分化的肿瘤细胞;然而,在相当数量的患者中,癌细胞经过标准治疗后会获得耐药表型,导致肿瘤复发和转移,目前对其治疗有限或没有治疗方法。肿瘤的复发被认为与CSC或致癌细胞的生物学密切相关[6-8]. 越来越多的证据表明,肿瘤侵袭性特征的获得也与肿瘤细胞经历EMT表型的能力有关,这使肿瘤细胞能够突破组织结构所施加的结构限制[,4,12,22]. EMT诱导产生的干细胞或CSC为癌症复发提供了资源,这些细胞具有高度耐药性[9,15,65,67,72]. 因此,重要的是确定哪些因素可以诱导EMT,并揭示这些因素在癌症进展过程中的机制作用,这强调了这些因素对于开发新的靶向治疗方法以彻底根除癌症的重要性。CSC、肿瘤干细胞和EMT表型细胞的分子理解和生物学特性将使我们能够筛选出可能导致选择性杀伤这些细胞以消除肿瘤复发的潜在药物。此外,可能导致这些细胞中丢失的特定miRNAs重新表达的药物也将使我们能够消除肿瘤发展、维持、复发和转移的“根源”细胞。因此,通过利用目前对CSC的分子理解和EMT过程来彻底根除癌症的前景似乎比以往任何时候都更加光明。

致谢

本综述中引用的作者的工作由NIH国家癌症研究所(5R01CA31151、5R01SCA083695、1R01CA132794、1R01-CA101870)向F.H.S。

工具书类

1Thiery J.P.肿瘤进展中的上皮-间充质转化。Nat.Rev.癌症。2002;2:442–454.[公共医学][谷歌学者]
2Brabletz T.、Jung A.、Reu S.、Porzner M.、Hlubek F.、Kunz-Schughart L.A.、Knuechel R.、Kirchner T.结直肠癌中可变β-catenin的表达表明肿瘤的进展是由肿瘤环境驱动的。程序。国家。阿卡德。科学。美国。2001;98:10356–10361. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
三。Brabletz T.,Jung A.,Spaderna S.,Hlubek F.,Kirchner T.意见:迁移癌干细胞-恶性肿瘤进展的综合概念。Nat.Rev.癌症。2005;5:744–749.[公共医学][谷歌学者]
4Lee J.M.、Dedhar S.、Kalluri R.、Thompson E.W.《上皮-间质转化:信号传导、发育和疾病的新见解》。《细胞生物学杂志》。2006;172:973–981. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
5Hollier B.G.、Evans K.、Mani S.A.《上皮-间充质转化与癌症干细胞:对抗癌症治疗的联盟》。《乳房杂志》。腺。生物肿瘤。2009;14:29–43.[公共医学][谷歌学者]
6干细胞:前列腺癌的根源?《细胞生理学杂志》。2008;216:332–336. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Kasper S.临床标本中前列腺癌干细胞的鉴定、表征和生物学相关性。尿路。昂科尔。2009;27:301–303. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
8Marian C.O.,Shay J.W.前列腺肿瘤起始细胞:端粒酶抑制治疗的新靶点?生物化学。生物物理学。《学报》。2009;1792:289–296.[公共医学][谷歌学者]
9Mani S.A.、Guo W.、Liao M.J.、Eaton E.N.、Ayyanan A.、Zhou A.Y.、Brooks M.、Reinhard F.、Zhang C.C.、Shipitsin M.、Campbell L.L.、Polyak K.、Brisken C.、Yang J.、Weinberg R.A.。上皮-间质转化产生具有干细胞特性的细胞。单元格。2008;133:704–715. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10.Peter M.E.Let-7和miR-200 microRNA:多能性和癌症进展的卫士。细胞周期。2009;8:843–852. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Santisteban M.、Reiman J.M.、Asiedu M.K.、Behrens M.D.、Nassar A.、Kalli K.R.、Haluska P.、Ingle J.N.、Hartmann L.C.、Manjili M.H.、Radisky D.C.、Ferrone S.、Knutson K.L.体内免疫诱导上皮-间充质转化产生乳腺癌干细胞。癌症研究。2009;69:2887–2895. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
12.Hugo H.、Ackland M.L.、Blick T.、Lawrence M.G.、Clements J.A.、Williams E.D.、Thompson E.W.癌症进展中的上皮-间充质和间充质-上皮转变。《细胞生理学杂志》。2007;213:374–383.[公共医学][谷歌学者]
13Sarkar F.H.,Li Y.,Wang Z.,Kong D.营养药物在癌症中Wnt和Hedgehog信号调节中的作用。癌症转移综述。2010;29:383–394. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Singh A.、Settleman J.EMT,《癌症干细胞与耐药性:抗癌战争中新兴的邪恶轴心》。致癌物。2010;29:4741–4751. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
15Wang Z.,Li Y.,Ahmad A.,Azmi A.S.,Kong D.,Banerjee S.,Sarkar F.H.靶向参与肿瘤干细胞和EMT调节的miRNAs:克服耐药性的新概念。抗药性。更新日期。2010;13:109–118. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Thiery J.P.、Sleeman J.P.复杂网络协调上皮-间充质转化。自然修订版分子细胞生物学。2006;7:131–142.[公共医学][谷歌学者]
17Schmalhofer O.、Brabletz S.、Brablet T.E-cadherin、beta-catenin和ZEB1在癌症恶性进展中的作用。癌症转移综述。2009;28:151–166.[公共医学][谷歌学者]
18Berx G.、Raspe E.、Christopori G.、Thiery J.P.、Sleeman J.P.术前转移?癌症形态发生过程综述。临床。实验性转移。2007;24:587–597.[公共医学][谷歌学者]
19Gregory P.A.、Bert A.G.、Paterson E.L.、Barry S.C.、Tsykin A.、Farshid G.、Vadas M.A.、Khew-Goodall Y.、Goodall G.J.。miR-200家族和miR-205通过靶向ZEB1和SIP1调节上皮-间充质转化。自然细胞生物学。2008;10:593–601.[公共医学][谷歌学者]
20Kong D.、Wang Z.、Sarkar S.H.、Li Y.、Banerjee S.、Saliganan A.、Kim H.R.、Cher M.L.和Sarkar F.H.血小板衍生生长因子-D的过度表达有助于PC3前列腺癌细胞的上皮-间质转化。干细胞。2008;26:1425–1435. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
21Shorning B.Y.、Griffiths D.、Clarke A.R.Lkb1和Pten协同抑制小鼠膀胱中mTOR介导的肿瘤发生和上皮-间充质转变。公共科学图书馆一号。2011;6:e16209。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
22Christiansen J.J.,Rajasekaran A.K.重新评估上皮细胞向间充质细胞转化是肿瘤侵袭和转移的先决条件。癌症研究。2006;66:8319–8326.[公共医学][谷歌学者]
23.Garber K.上皮-间质转化对转移很重要,但问题仍然存在。J.国家。癌症研究所。2008;100:232–3. 239.[公共医学][谷歌学者]
24Tarin D.,Thompson E.W.,Newgreen D.F.肿瘤中上皮-间质转化的谬误。癌症研究。2005;65:5996–6000.[公共医学][谷歌学者]
25Thompson E.W.,Newgreen D.F.,Tarin D.癌症侵袭和转移:上皮-间质转化的作用?癌症研究。2005;65:5991–5995.[公共医学][谷歌学者]
26Aigner K.、Dampier B.、Descovich L.、Mikula M.、Sultan A.、Schreiber M.、Mikulits W.、Brabletz T.、Strand D.、Obrist P.、Sommergruber W.、Schweifer N.、Wernitznig A.、Beug H.、Foisner R.、Eger A.。转录因子ZEB1(deltaEF1)通过抑制上皮极性的主调节器促进肿瘤细胞脱分化。致癌物。2007;26:6979–6988. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
27Chaffer C.L.、Brennan J.P.、Slavin J.L.、Blick T.、Thompson E.W.、Williams E.D.间充质-上皮转化促进膀胱癌转移:成纤维细胞生长因子受体-2的作用。癌症研究。2006;66:11271–11278.[公共医学][谷歌学者]
28Irie H.Y.、Pearline R.V.、Grueneberg D.、Hsia M.、Ravichandran P.、Kothari N.、Natesan S.、Brugge J.S.Akt1和Akt2在调节细胞迁移和上皮-间质转化中的不同作用。《细胞生物学杂志》。2005;171:1023–1034. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
29Moustakas A.,Heldin C.H.在胚胎发生和癌症进展期间引导上皮-间充质转化的信号网络。癌症科学。2007;98:1512–1520. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
30Yates C.C.、Shepard C.R.、Stolz D.B.和Wells A.将人类前列腺癌细胞与肝细胞共培养可导致E-cadherin的表达增加。英国癌症杂志。2007;96:1246–1252. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
31Ahmed N.、Maines-Bandiera S.、Quinn M.A.、Unger W.G.、Dedhar S.、Auersperg N.调节EGF诱导的人类卵巢表面上皮上皮-间质转化的分子途径。美国生理学杂志《细胞生理学》。2006;290:C1532–C1542。[公共医学][谷歌学者]
32Fischer A.N.、Fuchs E.、Mikula M.、Huber H.、Beug H.和Mikulits W.PDGF基本上将TGF-β信号传导与肝细胞癌进展中的核β-连环蛋白积累联系起来。致癌物。2007;26:3395–3405.[公共医学][谷歌学者]
33Gotzmann J.、Fischer A.N.、Zojer M.、Mikula M.、Proell V.、Huber H.、Jechlinger M.、Waerner T.、Weith A.、Beug H.和Mikulits W.PDGF在TGF-β介导的肝细胞癌进展中的关键作用。致癌物。2006;25:3170–3185.[公共医学][谷歌学者]
34Strutz F.、Zeisberg M.、Ziyadeh F.N.、Yang C.Q.、Kalluri R.、Muller G.A.、Neilson E.G.基本成纤维细胞生长因子-2在上皮-间充质转化中的作用。肾脏Int。2002;61:1714–1728.[公共医学][谷歌学者]
35Yang L.,Lin C.,Liu Z.R.P68 RNA解旋酶通过取代β-catenin中的Axin介导PDGF诱导的上皮-间质转化。单元格。2006;127:139–155.[公共医学][谷歌学者]
36.Graham T.R.、Zhau H.E.、Odero-Marah V.A.、Osunkoya A.O.、Kimbro K.S.、Tighiouart M.、Liu T.、Simons J.W.、O’Regan R.M.胰岛素样生长因子-I依赖性上调ZEB1驱动人类前列腺癌细胞的上皮-间充质转化。癌症研究。2008;68:2479–2488.[公共医学][谷歌学者]
37Lapidot T.、Sirard C.、Vormoor J.、Murdoch B.、Hoang T.、Caceres-Cortes J.、Minden M.、Paterson B.、Caligiuri M.A.、Dick J.E.移植到SCID小鼠后引发人类急性髓系白血病的细胞。自然。1994;367:645–648.[公共医学][谷歌学者]
38Al-Hajj M.、Wicha M.S.、ito-Hernandez A.、Morrison S.J.、Clarke M.F.对致瘤性乳腺癌细胞的前瞻性鉴定。程序。国家。阿卡德。科学。美国。2003;100:3983–3988. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
39O'Brien C.A.、Pollett A.、Gallinger S.、Dick J.E.一种能够在免疫缺陷小鼠体内启动肿瘤生长的人类结肠癌细胞。自然。2007;445:106–110.[公共医学][谷歌学者]
40Ricci-Vitiani L.、Lombardi D.G.、Pilozzi E.、Biffoni M.、Todaro M.、Peschle C.、De M.R.人类结肠癌诱导细胞的鉴定和扩增。自然。2007;445:111–115.[公共医学][谷歌学者]
41Singh S.K.、Hawkins C.、Clarke I.D.、Squire J.A.、Bayani J.、Hide T.、Henkelman R.M.、Cusimano M.D.、Dirks P.B.人脑肿瘤起始细胞的鉴定。自然。2004;432:396–401.[公共医学][谷歌学者]
42.Singh S.K.、Clarke I.D.、Terasaki M.、Bonn V.E.、Hawkins C.、Squire J.、Dirks P.B.鉴定人脑肿瘤中的癌干细胞。癌症研究。2003;63:5821–5828.[公共医学][谷歌学者]
43Collins A.T.、Berry P.A.、Hyde C.、Stower M.J.、Maitland N.J.对致瘤前列腺癌干细胞的前瞻性鉴定。癌症研究。2005;65:10946–10951.[公共医学][谷歌学者]
44.Patrawala L.、Calhoun T.、Schneider-Broussard R.、Li H.、Bhatia B.、Tang S.、Reilly J.G.、Chandra D.、Zhou J.、Claypool K.、Coghlan L.、Tang D.G.来自异种人类肿瘤的高纯度CD44+前列腺癌细胞富含致瘤和转移祖细胞。致癌物。2006;25:1696–1708.[公共医学][谷歌学者]
45Roudier M.P.、True L.D.、Higano C.S.、Vesselle H.、Ellis W.、Lange P.、Vesella R.L.终末期前列腺癌骨转移的表型异质性。嗯,病态。2003;34:646–653.[公共医学][谷歌学者]
46Gu G.,Yuan J.,Wills M.,Kasper S.具有干细胞特性的前列腺癌细胞在体内重建了原始人类肿瘤。癌症研究。2007;67:4807–4815.[公共医学][谷歌学者]
47Klarmann G.J.、Hurt E.M.、Mathews L.A.、Zhang X.、Duhagon M.A.、Mistree T.、Thomas S.B.、Farrar W.L.侵袭性前列腺癌细胞是具有干细胞样基因组特征的肿瘤起始细胞。临床。实验性转移。2009;26:433–446. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
48Aoi T.、Yae K.、Nakagawa M.、Ichisaka T.、Okita K.、Takahashi K.、Chiba T.和Yamanaka S.从成年小鼠肝脏和胃细胞中生成多能干细胞。科学。2008;321:699–702.[公共医学][谷歌学者]
49Yu J.、Vodyanik M.A.、Smuga-Otto K.、ntosiewicz-Bourget J.、Frane J.L.、Tian S.、Nie J.、Jonsdottir G.A.、Ruotti V.、Stewart R.、Slukvin I.I.、Thomson J.A.从人体细胞中诱导的多能干细胞系。科学。2007;318:1917–1920.[公共医学][谷歌学者]
50Yu J.,Hu K.,Smuga-Otto K.,Tian S.,Stewart R.,Slukvin I.I.,Thomson J.A.无载体和转基因序列的人诱导多能干细胞。科学。2009;324:797–801. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
51Ben Porath I.、Thomson M.W.、Carey V.J.、Ge R.、Bell G.W.、Regev A.、Weinberg R.A.低分化侵袭性人类肿瘤中的胚胎干细胞样基因表达特征。自然遗传学。2008;40:499–507. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
52Jeter C.R.、Badeaux M.、Choy G.、Chandra D.、Patrawala L.、Liu C.、Calhoun-Davis T.、Zaehres H.、Daley G.Q.、Tang D.G.自我更新基因NANOG调节人类肿瘤发展的功能证据。干细胞。2009;27:993–1005. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
53Lu Y.、Futtner C.、Rock J.R.、Xu X.、Whitworth W.、Hogan B.L.、Onaitis M.W.证明SOX2过度表达在肺部致癌的证据。公共科学图书馆一号。2010;5:e11022。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
54Sholl L.M.、Barletta J.A.、Yeap B.Y.、Chirieac L.R.、Hornick J.L.Sox2蛋白表达是I期肺腺癌预后不良的独立指标。美国外科病理学杂志。2010;34:1193–1198. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
55Sotomayor P.、Godoy A.、Smith G.J.、Huss W.J.Oct4A由前列腺神经内分泌细胞亚群表达。前列腺。2009;69:401–410. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
56Thiery J.P.、Acloque H.、Huang R.Y.、Nieto M.A.发育和疾病中的上皮-间充质转变。单元格。2009;139:871–890.[公共医学][谷歌学者]
57Tomaskovic-布鲁克E.、Thompson E.W.、Thiery J.P.上皮-间充质转化与乳腺癌。乳腺癌研究。2009;11:213. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
58Blick T.、Hugo H.、Widodo E.、Waltham M.、Pinto C.、Mani S.A.、Weinberg R.A.、Neve R.M.、Lenburg M.E.、Thompson E.W.人类乳腺癌细胞系中的上皮间质转化特征与人类乳腺癌中的CD44(hi/)CD24(lo/-)干细胞表型平行。《乳房杂志》。腺。生物肿瘤。2010;15:235–252.[公共医学][谷歌学者]
59Caja L.、Bertran E.、Campbell J.、Fausto N.、Fabrega I.转化生长因子-β(TGF-β)介导人肝细胞中间充质干细胞样表型的获得。《细胞生理学杂志》。2010年doi:10.1002/jcp.22439。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
60Fuxe J.、Vincent T.、de Herreros A.G.TGF-β和干细胞途径在肿瘤细胞侵袭中的转录串扰:EMT促进Smad复合物的作用。细胞周期。2010;9:2363–2374.[公共医学][谷歌学者]
61Martin A.,Cano A.肿瘤发生:Twist1将EMT与自我更新联系起来。自然细胞生物学。2010;12:924–925.[公共医学][谷歌学者]
62Phinney D.G.扭转、上皮-间充质转化和干细胞。干细胞。2011;29:3–4.[公共医学][谷歌学者]
63Yang M.H.、Hsu D.S.、Wang H.W.、Wang H.J.、Lan H.Y.、Yang W.H.、Huang C.H.、Kao S.Y.、Tzeng C.H.和Tai S.K.、Chang S.Y.和Lee O.K.、Wu K.J.Bmi1在Twist1诱导的上皮-间质转化中至关重要。自然细胞生物学。2010;12:982–992.[公共医学][谷歌学者]
64Zavadil J.聚焦EMT和癌症干细胞之间的监管网络。细胞周期。2010;9:2927.[公共医学][谷歌学者]
65Morel A.P.、Lievre M.、Thomas C.、Hinkal G.、Ansieau S.、Puisieux A.通过上皮-间充质转化生成乳腺癌干细胞。公共科学图书馆一号。2008;:e2888。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
66Gupta P.B.,Onder T.T.,Jiang G.,Tao K.,Kuperwasser C.,Weinberg R.A.,Lander E.S.通过高通量筛选鉴定肿瘤干细胞的选择性抑制剂。单元格。2009;138:645–659. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
67Sarkar F.H.,Li Y.,Wang Z.,Kong D.,Ali S.微RNA在耐药性中对设计新型癌症治疗的意义。抗药性。更新日期。2010;13:57–66. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
68.Cano A.,Nieto M.A.非编码RNA在上皮-间充质转化中处于中心阶段。趋势细胞生物学。2008;18:357–359.[公共医学][谷歌学者]
69Garzon R.、Fabbri M.、Cimmino A.、Calin G.A.、Croce C.M.MicroRNA在癌症中的表达和功能。摩尔医学趋势。2006;12:580–587.[公共医学][谷歌学者]
70Kong D.、Li Y.、Wang Z.、Banerjee S.、Ahmad A.、Kim H.R.、Sarkar F.H.miR-200调节PDGF-D介导的前列腺癌细胞的上皮-间充质转化、粘附和侵袭。干细胞。2009;27:1712–1721. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
71Korpal M.,Lee E.S.,Hu G.,Kang Y.miR-200家族通过直接靶向E-cadherin转录阻遏物ZEB1和ZEB2抑制上皮-间充质转化和癌细胞迁移。生物学杂志。化学。2008;283:14910–14914. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
72Li Y.,VandenBoom T.G.,Kong D.,Wang Z.,Ali S.,Philip P.A.,Sarkar F.H.天然药物对miR-200和let-7的上调导致对吉西他滨耐药的胰腺癌细胞中上皮-间充质转变的逆转。癌症研究。2009;69:6704–6712. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
73Park S.M.、Gaur A.B.、Lengyel E.、Peter M.E.。miR-200家族通过靶向E-cadherin阻遏物ZEB1和ZEB2来确定癌细胞的上皮表型。基因发育。2008;22:894–907. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
74Burk U.、Schubert J.、Wellner U.、Shmalhofer O.、Vincan E.、Spaderna S.、Brabletz T.ZEB1和miR-200家族成员之间的相互抑制促进了癌细胞的EMT和侵袭。EMBO代表。2008;9:582–589. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
75.Kong D.、Banerjee S.、Ahmad A.、Li Y.、Wang Z.、Sethi S.、Sarkar F.H.前列腺癌细胞中上皮细胞向间质细胞的转化与干细胞特征存在机械联系。公共科学图书馆一号。2010;5:e12445。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
76Shimono Y.、Zabala M.、Cho R.W.、Lobo N.、Daleba P.、Qian D.、Diehn M.、Liu H.、Panula S.P.、Chiao E.、Dirbas F.M.、Somlo G.、Pera R.A.、Lao K.、Clarke M.F.miRNA-200c下调与乳腺癌干细胞和正常干细胞相关。单元格。2009;138:592–603. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
77Wellner U.、Schubert J.、Burk U.C.、Schmalhofer O.、Zhu F.、Sonntag A.、Waldvogel B.、Vannier C.、Darling D.、zur H.A.、Brunton V.G.、Morton J.、Sansom O.、Schuler J.、Stemmler M.P.、Herzberger C.、Hopt U.、Keck T.、Brabletz S.、Brapletz T.。EMT-激活剂ZEB1通过抑制干抑制微RNA来促进致瘤性。自然细胞生物学。2009;11:1487–1495.[公共医学][谷歌学者]
78.Iliopoulos D.、Polytarchou C.、Hatziapostolou M.、Kottakis F.、Maroulakou I.G.、Struhl K.、Tsichlis P.N.受Akt亚型差异调节的微RNA控制癌细胞中的EMT和干细胞更新。科学。信号。2009;2:ra62。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
79Iliopoulos D.、Lindahl-Allen M.、Polytarchou C.、Hirsch H.A.、Tsichlis P.N.、Struhl K.Suz12的miR-200抑制缺失导致形成和维持癌症干细胞所需的多梳介导抑制。分子细胞。2010;39:761–772. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
80Boyer L.A.、Plath K.、Zeitlinger J.、Brambrink T.、Medeiros L.A.、Lee T.I.、Levine S.S.、Wernig M.、Tajonar A.、Ray M.K.、Bell G.W.、Otte A.P.、Vidal M.、Gifford D.K.、Young R.A.、Jaenisch R.Polycomb复合物抑制小鼠胚胎干细胞中的发育调节因子。自然。2006;441:349–353.[公共医学][谷歌学者]
81Lee T.I.、Jenner R.G.、Boyer L.A.、Guenther M.G.、Levine S.S.、Kumar R.M.、Chevalier B.、Johnstone S.E.、Cole M.F.、Isono K.、Koseki H.、Fuchikami T.、Abe K.、Murray H.L.、Zucker J.P.、Yuan B.、Bell G.W.、Herbolsheimer E.、Hannett N.M.、Sun K.、Odom D.T.、Otte A.P.、Volkert T.L.、Bartel D.P.、Melton D.A.、Gifford D.K.、Jaenisch R.、Young R.A。Polycomb对人类胚胎干细胞中发育调节因子的控制。单元格。2006;125:301–313. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
82Boyer L.A.、Lee T.I.、Cole M.F.、Johnstone S.E.、Levine S.S.、Zucker J.P.、Guenther M.G.、Kumar R.M.、Murray H.L.、Jenner R.G.、Gifford D.K.、Melton D.A.、Jaenisch R.、Young R.A.人类胚胎干细胞的核心转录调控电路。单元格。2005;122:947–956. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]

文章来自癌症由以下人员提供多学科数字出版研究所(MDPI)