跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
科学。作者手稿;PMC 2015年4月3日提供。
以最终编辑形式发布为:
2015年1月7日在线发布。 数字对象标识:10.1126/科学.1259472
预防性维修识别码:项目经理4384888
尼姆斯:NIHMS674445
PMID:25567907

亮氨酸和谷氨酰胺对mTORC1的差异调节

关联数据

补充资料

摘要

雷帕霉素(mTOR)复合物1(mTORC1)的机制靶点整合环境和细胞内信号来调节细胞生长。氨基酸以一种被认为依赖于Rag小鸟嘌呤三磷酸酶(GTPases)、Ragulator复合物和液泡H的方式刺激溶酶体mTORC1的活化+-腺苷三磷酸酶(v-ATP酶)。我们报道亮氨酸和谷氨酰胺分别通过Rag GTPase依赖性和非依赖性机制刺激mTORC1。谷氨酰胺促进RagA和RagB敲除细胞中mTORC1易位到溶酶体,并需要v-ATP酶,但不需要Ragulator。此外,我们确定了谷氨酰胺激活mTORC1和定位溶酶体所需的腺苷二磷酸核糖基化因子-1 GTPase。我们的结果揭示了独立于Rag GTPases的mTORC1激活的信号级联,并表明mTORC2受特定氨基酸的差异调节。

细胞感知环境营养物质的流动,并通过严格控制合成代谢和分解代谢过程作出反应,以使细胞生长与营养状态最佳协调。雷帕霉素(mTOR)是一种保守的丝氨酸-苏氨酸激酶,其机制靶点是mTOR复合物1(mTORC1)的一部分,有助于协调细胞生长与营养状态。mTORC1的失调在人类疾病中很常见,包括癌症和糖尿病(1). 氨基酸对mTORC1激活至关重要(2,); 然而,目前尚不清楚特定氨基酸是如何被感知的。亮氨酸(Leu)(2,4,5),谷氨酰胺(Gln)(57)和精氨酸(Arg)(2)与mTORC1激活有关。在一个模型中,mTORC1间接感应溶酶体腔中需要Rag鸟苷三磷酸酶(GTPases)的氨基酸,GTPases由五聚体Ragulator复合物、液泡H调节+–腺苷三磷酸酶(v-ATP酶)和Gator复合物(8,9). 当激活时,Rag GTPase结合并将mTORC1募集到溶酶体,其中Rheb GTPase激活mTORC2(4). 在哺乳动物中,有四种Rag蛋白:RagA和RagB,它们在功能上是冗余的;以及功能等效的RagC和RagD。RagA或RagB与RagC或RagD之间异二聚体的形成,以及Rag蛋白的鸟嘌呤核苷酸状态决定了mTORC1向溶酶体的募集和随后的激活(4,10,11). 在氨基酸充足的情况下,RagA和RagB复合物是负载三磷酸鸟苷(GTP)的,能够结合猛禽。v-ATP酶以某种方式检测溶酶体氨基酸的积累(12)刺激Ragulator鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF)活性,并抑制Gator GTPase激活蛋白(GAP)活性(9,13). 这将使RagA-RagB复合物与GTP结合,并将mTORC1招募到溶酶体,在溶酶体中与Rheb相遇,Rheb是一种调节生长因子信号的强效mTORC1-activator。结节性硬化症复合物(TSC)肿瘤抑制因子也定位于溶酶体,它通过充当Rheb的GAP负调控mTORC1(14).

我们生成了缺乏RagA和RagB的小鼠胚胎成纤维细胞[RagA/B敲除(KO)MEF](图1A图S1). RagA-RagB复合物直接与mTORC1结合(15),并且两种蛋白之一的组成活性版本的过度表达使mTORC1对氨基酸饥饿不敏感(图S2) (4,10). RagA/B的缺失降低了RagC的丰度,这与RagA和RagB通过形成异二聚体稳定RagC和RagD一致(图1A) (4,16). 根据底物核糖体S6激酶1(S6K1)和真核生物翻译起始因子4E结合蛋白1(4EBP1)的磷酸化状态判断,RagA和RagB的缺失降低了(~30%),但没有消除mTORC1活性。当用mTOR抑制剂Torin1和雷帕霉素处理RagA/B KO细胞或用短发夹RNA(shRNA)耗尽mTORC1亚单位Raptor时,S6K1和4EBP1的磷酸化被消除(图S3). 因此,在缺乏RagA和RagB的情况下,mTORC1是活跃的。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为nihms674445f1.jpg
Gln而非Leu独立于RagA和RagB激活mTORC1

mTORC1活性通过S6K1(pS6K1)、S6(pS4)和4EBP1(p4EBP1)的磷酸化和4EBP的迁移率变化进行分析。AA,氨基酸。(A类)在正常条件下(NC)分析对照组(CON)和RagA/B KO MEF中的mTORC1活性。还分析了mTOR、Raptor、RagA、RagB和RagC蛋白。(B类)在NC、不含氨基酸(–AA)和添加氨基酸(+AA)后的指定时间,分析CON和RagA/B KO MEF中的mTORC1活性(左)。绘制了pS6K1的相对丰度图(右)。(C类)在CON和RagA/B KO MEFs中用Leu(顶部)或Gln(底部)刺激后的mTORC1活性。(D类)在指定时间用Leu或Gln刺激稳定表达Flag-tagged RagA的RagA/B KO MEF后,分析mTORC1活性。(E类)在缺乏氨基酸或用Leu或Gln刺激150分钟的CON、RagA KO(A1)和RagA/B KO(AB1)HEK293A细胞中分析mTORC1活性。

为了研究RagA/B KO MEF的氨基酸反应,我们用氨基酸刺激细胞并分析mTORC1激活的动力学。在缺乏RagA和RagB的细胞中,氨基酸激活mTORC1的量和速率都降低(图1B图S4). 同样,氨基酸提取后,RagA/B KO MEF中的mTORC1活性降低(图S5). 为了排除一些缺乏RagA和RagB的细胞自发突变以补偿mTORC1活性降低的可能性,我们分析了来源于RagA/B KO-MEF群体的单个克隆。单个克隆对氨基酸的反应显示mTORC1活性增加(图S6). 为了确定哪些氨基酸在没有RagA和RagB的情况下激活mTORC1,我们分别用20个标准氨基酸中的每一个刺激RagA/B KO MEF(图S7). Leu和Arg刺激对照组的mTORC1激活,但不刺激RagA/B KO细胞(图1C图S7和S8). 当用20种标准氨基酸刺激RagA/B KO细胞时,RagA/BKO细胞中受Gln刺激的mTORC1活化表现出与对照细胞相似的动力学(图1、B和C、和图S4). RagA/B KO MEF中标记RagA的稳定再表达恢复了mTORC1对Leu的激活(图1D)这证实了RagA和RagB是Leu激活mTORC1所必需的,而不是Gln。

我们通过聚集的规则间隔短回文重复序列(CRISPR/Cas9)进行基因组编辑,以灭活人类胚胎肾293A(HEK293A)细胞中的RagA和RagB基因(17,18) (图S9). 在HEK293A细胞和MEF中,RagA比RagB更丰富(图1A图S9E). 这些细胞中RagA单独或同时缺失RagA和RagB可以阻止Leu诱导的mTORC1活化,但不能阻止Gln诱导的mTORC1活化(图1E图S9F). 因此,Gln可以独立于RagA和RagB或细胞类型刺激mTORC1激活。

溶酶体在通往mTORC1的氨基酸传感途径中是必不可少的,被认为是最佳mTORCl激活平台,该平台通过Rheb整合生长因子(如胰岛素)的作用,通过Rags整合氨基酸的作用(19). 因为Gln可以在缺乏RagA和RagB的情况下激活mTORC1(图1、C和E,图S7和图S9F),我们研究了在缺乏RagA和RagB的细胞中,mTORC1的溶酶体定位是否是Gln诱导mTORCl活化所必需的。在对照细胞中,mTOR早在50分钟时就转移到溶酶体膜上,通过标记蛋白溶酶体相关膜蛋白2(LAMP2)的存在进行鉴定,并在氨基酸刺激150分钟后留在溶酶体上(图S10A) (4,11). 相反,氨基酸刺激50分钟后,mTOR没有定位于RagA/B KO细胞的溶酶体膜(图S10B). 然而,到150分钟时,我们观察到mTOR在一组细胞中的溶酶体定位,这些细胞也显示mTORC1的激活(图2A图S10B). Gln而非Leu诱导RagA/B KO MEF中mTOR溶酶体定位(图2、B和C). 此外,在RagA/B KO细胞中观察到氨基酸和胰岛素协同激活mTOR(图S11). 因此,Gln似乎以独立于RagA和RagB的方式通过易位到溶酶体来诱导mTORC1的激活。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为nihms674445f2.jpg
缺乏RagA和RagB时Gln诱导的mTORC1溶酶体定位

(A类)免疫荧光(IF)分析显示RagA/B KO MEF中S6(pS6;橙色)磷酸化激活mTORC1。图中还显示了mTOR(绿色)和LAMP2(红色)。具有mTOR和LAMP2共定位的pS6细胞的百分比的定量(右上)和具有mTOR但不在溶酶体中也含有S6磷酸化的细胞的百分比(右下)。(B类C类)IF分析显示CON(B)或RagA/B KO MEF(C)中的mTOR和LAMP2,不含氨基酸或用Leu或Gln刺激150分钟(顶部)。定量无氨基酸溶酶体或受Leu或Gln刺激的mTOR细胞百分比(底部)。插图所描绘区域的高倍图像(A)至(C)及其叠加显示在右侧。

氨基酸转运蛋白(5,12)和Ragulator复合体(11,13)与mTORC1激活有关。我们分析了缺乏几种氨基酸转运体的细胞和缺乏p14(p14 KO MEF)的MEF中的mTORC1活性,p14是Ragulator复合体的一个基本亚单位。在缺乏某些氨基酸转运体的细胞和p14 KO MEF中,Gln激活了mTORC1,这表明这些转运体和Ragulator对Gln诱导的mTORC2激活不需要(图S12图3A).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为nihms674445f3.jpg
Gln-诱导的mTORC1激活需要v-ATP酶而不是Ragulator

通过S6K1(pS6K)的磷酸化和4EBP1的迁移率变化分析mTORC1活性。(A类)在缺乏氨基酸的CON和p14 KO MEF中分析mTORC1活性,然后在指定时间用Leu(顶部)或Gln(底部)刺激。(B类C类)氨基酸缺乏的CON和RagA/B KO细胞mTORC1活性分析;用或不用1μM Baf A预处理;然后刺激氨基酸、亮氨酸或谷氨酰胺150分钟(D类)用靶向v-ATP酶V0c亚基(shV0c)的shRNA CON(shCON)或shRNA处理CON和RagA/B KO MEF。CON和RagA/B KO MEF缺乏氨基酸,随后进行氨基酸刺激,并评估mTORC1活性。

v-ATP酶对溶酶体的酸化至关重要,并与Rags和Ragulator相互作用,刺激mTORC1对氨基酸的激活(12). 我们用v-ATP酶抑制剂bafilomycin A(Baf A)处理对照组和RagA/B KO细胞(20). 当用所有氨基酸刺激细胞时,Baf A抑制了对照细胞和RagA/B KO细胞中mTORC1的激活(图3B图S13A)或单独使用Leu或Gln(图3C). Baf A还抑制RagA/B KO细胞中mTORC1的溶酶体定位(图S13、B和C). 此外,concanamycin A对v-ATP酶的抑制或氯喹对溶酶体pH梯度的抑制也阻断了Gln诱导的RagA/B KO细胞溶酶体定位和mTORC1激活(图S13,D至H). 此外,v-ATPase V0c亚单位的缺失,该亚单位与Ragulator相互作用并控制mTORC1活性(12),在很大程度上阻止了氨基酸诱导的对照组和RagA/B KO MEF中mTORC1的激活(图3D图S13I). 此外,在缺乏RagA和RagB的情况下,几种溶酶体蛋白的缺失对Gln诱导的mTORC1的激活和定位没有影响,这表明v-ATP酶的修饰并不是溶酶体结构和功能全面破坏的次要因素(图S13、K和L). 总之,Gln诱导的mTORC1激活似乎需要v-ATP酶和溶酶体功能。

果蝇属S2细胞,TORC1活性在缺乏果蝇属ADP核糖基化因子-Arf1(dArf1)(21)当dRagA和dArf1都耗尽时,我们观察到氨基酸诱导的TORC1活化进一步减少(图4A). 我们使用小干扰RNA(siRNA)从HEK293A RagA/B KO细胞中去除Arf1。Gln刺激经对照siRNA处理的RagA/B KO细胞中的mTORC1活化;然而,它未能在Arf1缺失的RagA/B KO细胞中诱导mTORC1激活(图4B). 其他Arf家族成员的耗尽未能抑制Gln诱导的RagA/B KO细胞中mTORC1的激活(图S14A). Arf1 GEF抑制剂brefeldin A(BFA)对RagA/B KO细胞的治疗作用(22)在高剂量下,阻断了mTORC1的氨基酸信号传导,而BFA对对照细胞中的氨基酸的反应仅导致mTORCl活化的少量减少(图4C图S14、B和C). BFA始终阻断Gln诱导的RagA/B KO细胞中mTORC1的激活(图4D图S14D). 此外,Arf1或BFA处理的缺失不会抑制对照细胞中Leu诱导的mTORC1的激活,也不会影响溶酶体的pH(图S14,E至G).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为nihms674445f4.jpg
在没有RagA和RagB的情况下,向mTORC1发送Gln信号需要Arf1

(A类)TORC1活性分析用于果蝇属S6K1(pdS6K1)英寸果蝇属用靶向GFP、RagA或Arf1的双链RNA(dsRNA)处理S2细胞。细胞饥饿氨基酸1小时,然后用或不用氨基酸刺激30分钟(B类)通过用对照(siCON)或Arf1 siRNA(siArf1)处理的RagA/B KO HEK293A细胞中S6K1(pS6K1)的磷酸化或4EBP1的迁移率变化来分析mTORC1活性。细胞缺乏氨基酸,然后用谷氨酰胺刺激150分钟(C类)在缺乏氨基酸的CON和RagA/B KO MEF中分析mTORC1活性,如(B)所示,然后用指示浓度的BFA预处理,并用氨基酸刺激150分钟。标签s.e.和l.e.分别表示短时间接触和长时间接触。(D类)在缺乏氨基酸的RagA/B KO HEK293A细胞中分析mTORC1活性,如(B)所示,然后用或不用1μM BFA预处理,并用Leu或Gln刺激150分钟(E类)描述RagA/B KO MEF中mTORC1激活(pS6;橙色)和溶酶体定位(LAMP2;红色,mTOR;绿色)的IF分析。细胞缺乏氨基酸,用或不用1μM BFA预处理,然后用Gln刺激150分钟。图像右侧显示了插图所示区域的高倍图像及其叠加。定量不同条件下溶酶体中mTOR的细胞百分比和相应的Western blot(右)。(F类)在转染有HA-Raptor或含有Rheb C末端CAAX基序(HA-Raptor-C-Rheb)的HA-Rapter的RagA/B KO HEK293A细胞中,mTORC1活性如(B)所示进行分析。细胞缺乏氨基酸,用或不用1μM BFA预处理,用Gln刺激150分钟。

亮氨酸或谷氨酰胺刺激似乎不会影响Arf1的鸟嘌呤核苷酸状态(图S14H). 过表达组成活性Arf1-GTP未能在氨基酸缺乏情况下恢复mTORC1活性(图S14I). 此外,绿色荧光蛋白标记的Arf1(Arf1-GFP)定位不受氨基酸饥饿或刺激的影响(图S15). 这些结果表明,激活mTORC1需要GTP水解或Arf1核苷酸循环,或两者兼而有之。

Arf1调节水泡运输,因此我们测试了内质网(ER)和高尔基体之间运输的双向抑制是否会影响Gln诱导的mTORC1激活(23). 我们耗尽了参与顺行运输的蛋白质,并用高尔基肽A处理RagA/B KO细胞(24)但未观察到对谷氨酰胺诱导的mTORC1活化的影响(图S16). 这些结果支持Arf1对mTORC1的信号传导是特异的,并且独立于ER-Golgi囊泡转运。

分析BFA处理的RagA/B KO MEF对Gln刺激的mTOR定位。Gln-诱导mTOR定位于溶酶体(图4E图2C); 然而,BFA预处理细胞抑制了Gln的作用(图4E). 通过将Rheb的C末端溶酶体靶向基序添加到猛禽,将mTORC1人工靶向溶酶体表面(11)激活RagA/B KO细胞中的mTORC1,即使存在BFA(图4F). 因此,BFA通过干扰其溶酶体定位来抑制mTORC1,这意味着Arf1参与了连接Gln与mTORCl定位和溶酶体激活的信号通路。

总之,我们表明mTORC1受Gln和Leu的差异调节(图S17). 我们的研究结果表明,RagA和RagB对Leu激活mTORC1是必需的,而不是Gln激活,这在进化上似乎是保守的酿酒酵母(25). 我们确定Arf1 GTPase参与了一条信号通路,该通路在Rag GTPase缺失的情况下将Gln连接到溶酶体的mTORC1激活。许多癌症细胞系增加了mTORC1活性,并显示出对生长的Gln高度依赖。因此,Gln诱导的mTORC1激活可能对正常细胞和肿瘤细胞的生长都很重要。

补充材料

材料和方法

图S1至S17

参考文献(26-35)

单击此处查看。(503K,pdf格式)

致谢

我们感谢关实验室成员的批判性评论;L.Huber用于p14空细胞;F.Flores、J.Zhou和C.Worby寻求技术帮助。由NIH(R01GM051586和R01CA108941给K.-L.G.;T32CA121938给J.L.J.;T322GM007752给S.W.P.;K99DK099254给V.S.T.)、国防部(W81XWH-13-1-055)给K./L.G.、哈特韦尔基金会给J.L.J以及加拿大卫生研究院给R.C.R.的拨款支持。

参考和注释

1.Laplante M、Sabatini DM。单元格。2012;149:274–293. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
2Hara K等人。生物化学杂志。1998;273:14484–14494.[公共医学][谷歌学者]
三。Wang X、Campbell LE、Miller CM、Proud CG。生物化学杂志。1998;334:261–267. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
4Sancak Y等人。科学。2008;320:1496–1501. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
5Nicklin P等人。单元格。2009;136:521–534. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
6Kim SG等人。分子细胞。2013;49:172–185. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Durán RV等人。分子细胞。2012;47:349–358.[公共医学][谷歌学者]
8Jewell JL、Russell RC、Guan KL。Nat Rev摩尔细胞生物学。2013;14:133–139. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
9Bar-Peled L等人。科学。2013;340:1100–1106. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Kim E、Goraksha-Hicks P、Li L、Neufeld TP、Guan KL。自然细胞生物学。2008;10:935–945. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Sancak Y等人。单元格。2010;141:290–303. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
12Zoncu R等人。科学。2011;334:678–683. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
13Bar-Peled L、Schweitzer LD、Zoncu R、Sabatini DM公司。单元格。2012;150:1196–1208. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Menon S等人。单元格。2014;156:771–785. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
15龚R等人。基因发育。2011;25:1668–1673. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Sekiguchi T、Hirose E、Nakashima N、Ii M、Nishimoto T。生物化学杂志。2001;276:7246–7257.[公共医学][谷歌学者]
17Cong L等人。科学。2013;339:819–823. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
18Mali P等人。科学。2013;339:823–826. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
19Jewell JL、Guan KL。生物化学科学趋势。2013;38:233–242. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
20福加克·M。Nat Rev Mol细胞生物学。2007;8:917–929.[公共医学][谷歌学者]
21李磊等。生物化学杂志。2010;285:19705–19709. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
22.赫尔姆斯JB,罗斯曼JE。自然。1992;360:352–354.[公共医学][谷歌学者]
23.D’Souza-Schorey C,Chavrier P。Nat Rev Mol细胞生物学。2006;7:347–358.[公共医学][谷歌学者]
24Sáenz JB等人。自然化学生物。2009;5:157–165. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
25Stracka D、Jozefczuk S、Rudroff F、Sauer U、Hall MN。生物化学杂志。2014;289:25010–25020. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]