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.2008年2月8日;283(6):3272-3280.
doi:10.1074/jbc。M708033200。 Epub 2007年11月30日。

严重急性呼吸综合征相关冠状病毒核衣壳蛋白与Smad3相互作用并调节转化生长因子-β信号

附属公司

严重急性呼吸综合征相关冠状病毒核衣壳蛋白与Smad3相互作用并调节转化生长因子-β信号

赵新刚等。 生物化学杂志. .

摘要

严重急性呼吸综合征(SARS)是一种急性传染病,死亡率很高。SARS的典型临床特征是肺纤维化和相关的肺衰竭。然而,潜在的机制仍然难以捉摸。在本研究中,我们证明SARS-相关冠状病毒(SARS-CoV)核衣壳(N)蛋白增强转化生长因子-β(TGF-β)诱导的纤溶酶原激活物抑制剂-1的表达,但减弱Smad3/Smad4介导的人类外周肺上皮HPL1细胞的凋亡。N蛋白对TGF-β转录反应的促进作用是Smad3特异性的。N蛋白与Smad3结合,促进Smad3-p300复合物的形成,同时干扰Smad3和Smad4之间的复合物形成。这些发现提供了一种新的机制的证据,即N蛋白调节TGF-β信号传导,阻止SARS-CoV感染宿主细胞的凋亡,同时促进组织纤维化。我们的结果揭示了Smad3以Smad4非依赖性的方式发挥作用的一种新模式,并可能通过靶向TGF-β信号分子而导致SARS治疗的成功策略。

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数字

图1
图1
SARS-CoV N蛋白特异性上调Smad3介导的TGF-β转录反应。A类,N蛋白以剂量依赖性方式增强TGF-β诱导的CAGA-荧光素酶表达。HPL1细胞与CAGA-荧光素酶报告基因(0.5μg)和pcDNA3.1-N(0.1、0.3或0.5μg,共转染。在转染后24小时,用50 p转化生长因子-β。20小时后,收集细胞以测定荧光素酶活性。B类,N蛋白以剂量依赖的方式增强TGF-β诱导的3TP荧光素酶的表达。用3TP萤光素酶报告基因(0.5μg)和pcDNA3.1-N(0.1、0.3或0.5μg)共转染HPL1细胞。C,N蛋白与Smad3协同诱导CAGA-荧光素酶表达。用CAGA-荧光素酶(0.5μg)、pCS2-Myc-Smad3(20 ng)和pcDNA3.1-N(0.5μg.)联合转染HPL1细胞。D类N蛋白对ARE-核糖核酸酶的表达无影响。HPL1细胞与ARE-核糖核酸酶报告子(0.5μg)、FoxH1(0.25μg)和pcDNA3.1-N(0.1、0.3或0.5μg,共转染。E类N蛋白对BRE-荧光素酶的表达无影响。用BRE-荧光素酶报告子(0.5μg)、pCMV5-FLAG-OAZ(0.25μg)和pCMV4-BMPRIB(QD)-HA(0.1μg)以及pcDNA3.1-N(0.1、0.3或0.5μg,共转染HPL1细胞。F类,N蛋白增强TGF-β诱导的野生型CAGA-荧光素酶的表达(重量)MEF,但对Smad3中CAGA-荧光素酶的表达没有影响-/-MEF公司。Smad2的内源性表达(S2系列)和Smad3(第3章)在WT MEF和Smad3中-/-用抗Smad2/3免疫印迹法检测MEF。这个星号显示统计上的显著差异(**,第页< 0.01).RLU(RLU):相对荧光素酶单位。
图2
图2
N蛋白以Smad3依赖性方式增强TGF-β诱导的PAI-1表达。A类免疫组织化学染色显示SARS患者肺部N蛋白的表达(),正常肺PAI-1(c(c))、SARS患者的肺部(d日)SARS患者肺部胶原蛋白的3-氨基-9-乙基咔唑和Masson三色染色显示的颜色(b);比例尺:50微米。B–F类,N蛋白上调TGF-β靶基因表达。通过抗N免疫印迹法测定稳定表达N蛋白(HPL1-N)的HPL1细胞中N蛋白的表达(B类). 通过逆转录-PCR分析HPL1-V或HPL1-N细胞中PAI-1 mRNA的水平(C),或通过实时PCR(D类). PAI-1 mRNA水平(E类)或COL1A2(F类)用实时荧光定量PCR技术对转染空载体或N蛋白的2BS细胞进行分析。β-肌动蛋白和GAPDH作为负荷控制。G公司,N蛋白与Smad3协同作用,增强由PAI-1启动子驱动的萤光素酶的表达。如图所示,HPL1细胞联合转染p800-核糖核酸酶报告子(0.5μg)、pCS2-Myc-Smad3(20 ng)和pcDNA3.1-N(0.5μg)。在转染后24小时,用50 pTGF-β,含或不含10μSB431542。20小时后,收集细胞以测定荧光素酶活性。H(H),siRNAs有效地抑制HPL1细胞内源性Smad3和Smad4的表达。如图所示,用各种siRNA构建物转染HPL1细胞。在0.2 mg/ml嘌呤霉素选择4天后,收集细胞裂解物并通过免疫印迹法测定蛋白表达。pSR-shGFP和pSR-human Dapper I作为非靶向siRNAs,微管蛋白作为负载控制。HPL1细胞中Smad3而非Smad4的敲低可抑制TGF-β诱导的p800-luciferase的表达。如图所示,HPL1细胞共转染p800-核糖核酸酶报告子、pSR-shGFP、pSR-人Dapper I、pSRG-shSmad3或-shSmad4和pcDNA3.1-N(每个构建体0.5μg)。报告者分析按G公司.J型,N蛋白在MDA-MB-468细胞中以剂量依赖性方式增强TGF-β诱导的p800萤光素酶的表达。用p800-核糖核酸酶报告子(0.5μg)和pcDNA3.1-N(0.1、0.3或0.5μg。这个星号表示统计上的显著差异(*,第页< 0.05;**,第页< 0.01).RLU(RLU):相对荧光素酶单位。
图3
图3
N蛋白与Smad3相互作用。A类,N蛋白与Smad3相互作用。如图所示,HEK293T细胞与pEBG1-GST-N(2μg)和FLAG标记的Smad质粒(各5μg)共转染。细胞裂解物与Sepharose 4B-谷胱甘肽珠培养,抗FLAG免疫印迹显示GST-N蛋白相关Smad(上部面板). 通过总细胞裂解物的免疫印迹证实了该蛋白的表达(中间的下部面板).B类,N蛋白与HPL1细胞内源性Smad3相互作用。将pEBG1或pEBG1-GST-N转染HPL1细胞40小时后,收集细胞进行GST下拉。GST-N-相关Smad3蛋白(上部面板)和总蛋白表达(中间的下部面板)免疫印迹显示。C,N蛋白与Smad3突变体相互作用。用pEBG1-GST-N(2μg)和FLAG-tagged Smad3野生型联合转染HEK293T细胞(重量)或突变质粒(每个5μg)。细胞裂解物与Sepharose 4B-谷胱甘肽珠孵育,抗FLAG免疫印迹显示GST-N蛋白相关Smad3(上部面板). 蛋白质表达通过总细胞裂解物的免疫印迹得到证实(中间的下部面板).D类,N蛋白与Smad3 MH2结构域相互作用。将HEK293T细胞与pEBG1-GST-N(2μg)和pCMV5-HA-Smad3、MH1(aa 2–132)、MH1加接头(aa 2–225)和MH2(aa 226–425)(各5μg)共转染。GST下拉分析与A类抗HA免疫印迹显示GST-N蛋白相关Smad3(上部面板). 免疫印迹法证实蛋白质表达(中间的下部面板).E类,Smad3与N蛋白的N端和C端结构域相互作用。将N蛋白及其缺失突变构建物(每个5μg)与HEK293T细胞共转染。细胞裂解物与Sepharose 4B-谷胱甘肽微球和纯化的表达GST或GST-Smad3蛋白的细菌孵育。GST-Smad3-相关N蛋白(上部面板)和蛋白质表达(中间的下部面板)免疫印迹显示。F类N蛋白的C末端结构域对增强TGF-β诱导的CAGA-荧光素酶的表达很重要。如图所示,用CAGA-荧光素酶报告子(0.5μg)和pCMV5空载体或pCMV5-HA-N,-N(2–210),-N,-N(211–422),-N。荧光素酶活性测定如图1A所示。这个星号显示统计上的显著差异(**,第页< 0.01).RLU(RLU):相对荧光素酶单位。
图4
图4
N蛋白与Smad4竞争结合Smad3。A类,N蛋白减弱Smad3-Smad4相互作用。HEK293T细胞与pCS2-Myc-Smad3(4μg)、pCS2-FLAG-Smad4(4μg)、pCMV5-ca-TβRI-HA(2μg)和pcDNA3.1-N(2μg或4μg。抗Myc免疫沉淀和抗FLAG免疫印迹显示Smad3相关Smad4(上部面板). 总细胞裂解物的免疫印迹证实了该蛋白的表达。B类,Smad4与N蛋白竞争结合Smad3。HEK293T细胞联合转染pCS2-Myc-Smad3(4μg)、pEBG1-GST-N(2μg),pCMV5-ca-TβRI-HA(2μg)和pCS2-FLAG-Smad4(2或4μg)。细胞裂解物与Sepharose 4B-谷胱甘肽珠培养。抗Myc免疫印迹显示GST-N相关Smad3(上部面板). 总细胞裂解物的免疫印迹证实了该蛋白的表达。
图5
图5
N蛋白增强Smad3-p300的相互作用。A类,N蛋白与Smad3和p300协同诱导p800-luciferase表达。用p800-核糖核酸酶报告子(0.5μg)、pCS2-Myc-Smad3(20 ng)、pCMV-p300(0.5μg/)和pcDNA3.1-N(0.5μg.)联合转染HPL1细胞。B类,E1A抑制TGF-β和N蛋白诱导的p800萤光素酶表达。用p800-核糖核酸酶报告子(0.5μg)、pCS2-Myc-Smad3(20 ng)、pCS2-FLAG-Smad4(0.5μg/)、pXF2F-FLAG-E1A(0.5μg.)和pcDNA3.1-N(0.5μg-)联合转染HPL1细胞。C,N蛋白促进Smad3-p300复合物的形成。HEK293T细胞与pCS2-Myc-Smad3(4μg)、pCMV-p300(4μg)、pCMCV-ca-TβRI-HA(2μg)和pcDNA3.1-N(2或4μg。收集细胞进行抗Myc免疫沉淀,抗p300免疫印迹显示Smad3相关p300(上部面板). 总细胞裂解物的免疫印迹证实了该蛋白的表达。D类,N蛋白与PAI-1启动子相关。用200p处理HPL1-V和HPL1-N细胞然后使用抗Smad3、抗Smad4、抗p300或抗N抗体进行2 h TGF-β1的ChIP分析。对PAI-1启动子(-733/-484)进行PCR扩增,以检测与蛋白质结合的DNA。兔免疫前血清作为阴性对照。这个星号表示统计上的显著差异(*,第页< 0.05;**,第页< 0.01).RLU(RLU):相对荧光素酶单位。
图6
图6
N蛋白损伤TGF-β诱导的HPL1细胞凋亡。A类,N蛋白抑制TGF-β诱导的HPL1细胞凋亡。如图所示,HPL1细胞共转染GFP质粒(0.1μg)、pCS2-Myc-Smad3(1μg),pCS2-FLAG-Smad4(1μg)、pSUPER-siRNA抗Smad4基因(0.5μg)和pcDNA3.1-N(1μg/)。通过FACS筛选出GFP阳性细胞进行DNA含量分析。子G的百分比1计算GFP阳性细胞总数中的细胞数。每个实验重复三次,数据代表三个独立实验的平均值±S.D。B类C、内源性mRNA水平比姆Bax公司实时PCR分析HPL1-V和HPL1-N中的蛋白。GAPDH起到了装载控制的作用。这个星号表明HPL1-V和HPL1-N细胞之间存在统计显著性差异(*,第页< 0.05;**,第页< 0.01).D类在SASR患者的肺中,N蛋白阳性细胞与活性caspase-3阳性凋亡细胞没有共存。凋亡细胞由抗裂解caspase-3抗体检测,并由四氯化二氨基联苯胺培养(). 用异硫氰酸荧光素标记的抗N蛋白抗体检测SARS-CoV感染细胞,并用荧光显微镜拍摄图像。病毒感染的细胞是绿色(b).白色箭头表明细胞凋亡c(c).比例尺:50微米。E类,一个工作模型描述了严重急性呼吸系统综合征冠状病毒N蛋白在调节转化生长因子-β/Smad3诱导的纤维化和细胞凋亡中的作用。这个星号表示统计上的显著差异(*,第页< 0.05;**,第页< 0.01).

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