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.2018年11月13日;25(7):1841-1855.e5。
doi:10.1016/j.celrep.2018.10.056。

TGF-β信号转导的动力学受受体通过ESCRT机制的贩运调控

附属公司

TGF-β信号转导的动力学受受体通过ESCRT机制的贩运调控

丹尼尔·米勒等。 单元格代表. .

摘要

分泌生长因子刺激的信号转导途径在细胞表面和细胞核之间的多个水平上受到严格调控。细胞表面受体的贩运正在成为调节适当细胞反应的关键步骤,而这一过程中的扰动会导致人类疾病,包括癌症。对于识别转化生长因子β(TGF-β)家族配体的受体来说,对于贩运是如何调节的,或者这是如何形成信号动力学的,知之甚少。在这里,使用全基因组小干扰RNA(siRNA)筛选,我们确定了ESCRT(运输所需的内体分选复合体)机制是信号持续时间的关键决定因素。ESCRT组分的下调增加了TGF-β信号的输出,并使细胞对其微环境中的低剂量配体敏感。这种敏化作用促使上皮细胞向间充质细胞转化(EMT),以应对低剂量配体,我们证明了ESCRT机制的下调与癌症生存之间的联系。

关键词:ESCRT机械;SMAD2;转化生长因子-β;上皮-间充质转化;受体贩运;信号动力学。

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图形摘要
图形摘要
图1
图1。TGF-β信号动力学调控因子的全基因组筛选
(A) 用TGF-β处理HaCaT细胞5分钟,然后用TGF--β中和抗体1D11或同型对照(对照抗体)处理指定时间。通过western blotting检测PSMAD2、SMAD2和微管蛋白水平作为负荷对照。量化是三个独立实验的标准化平均值±SD*p<0.05。(B) 一个散点图,显示1小时(x轴)或20小时(y轴)后分析的全基因组siRNA屏幕中每次点击核SMAD2/3水平的变化,用屏幕平均值的SDs表示。红色虚线表示2个SD,这是这些屏幕的重要性阈值。ESCRT机械的四个组件,VPS28、UBAP1、VPS4B、和PTPN23型显示。
图2
图2。敲除ESCRT组分导致TGF-β处理后SMAD2磷酸化持续存在
(A–D)用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染HaCaT细胞VPS28系列(A) ,UBAP1型(B) ,PTPN23型(C) ,或VPS4B(虚拟专用交换机)(D) 并用TGF-β刺激指定时间。通过western blot检测PSMAD2、SMAD2/3、TGFBR1、TGFBR2和微管蛋白水平作为负荷对照。量化是三个独立实验的标准化平均值±SD*p<0.05。通过qPCR评估击倒程度,相同三个独立实验的归一化平均值±SD显示在右下角。
图3
图3。ESCRT敲除的效应不仅限于TGF-β途径,而且导致来自内室的持续信号传导
用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染(A–C)HaCaT细胞VPS28系列并用激活素(A和C)或BMP4(B和C)刺激指定时间。通过蛋白质印迹测定作为负载对照的PSMAD2、SMAD2/3、PSMAD1、SMAD1、BMPR2、ACVR1B、ACVR2B和微管蛋白的水平。定量是三个独立实验的归一化平均值±标准差。定量标准化为NT未处理样品*p<0.05。通过qPCR评估击倒程度,相同三个独立实验的归一化平均值±SD显示在右下角。(D) 用NT对照siRNA或靶向siRNA转染HaCaT细胞VPS28系列UBAP1公司并按指示用TGF-β刺激4小时。进行表面生物素化试验,并用western blot检测TGFBR1或TGFBR2的表面水平,或作为负荷对照的TGFBR1、TGFBR2、PSMAD2、SMAD2/3或微管蛋白的总水平。定量是四个独立实验的平均±SD,并归一化为未经处理的NT样品。(E) 转染NT siRNA或靶向siRNA的HaCaT细胞VPS28系列用TGF-β处理5分钟,然后用中和抗体1D11处理指定时间。通过western blot检测PSMAD2、SMAD2/3和微管蛋白水平作为负荷对照。定量和击倒控制如(A)和(B)所示。
图4
图4。ESCRT组分负责将受体贩运至MVB
(A–D)HaCaT细胞用巴非霉素A1(Baf A1)和/或TGF-β处理指定时间。TGFBR1、TGFBR2(A和B)、BMPR2(C)或ACVR1B(D)的水平通过western blot和负荷对照(微管蛋白、GRB2或MCM6)进行测定。量化是三个独立实验的平均±SD,并将其归一化为未处理样本。(E) 在指定的时间内,用或不用巴非霉素A1和TGF-β处理HaCaT细胞。通过western blot检测PSMAD2、SMAD2/3或GRB2水平作为负荷对照。量化是三个独立实验的标准化平均值±SD。(F) 用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染HaCaT细胞第28页UBAP1公司并用TGF-β刺激指定时间。所示基因的表达水平通过qPCR检测,是三个独立实验的平均±SD,归一化为NT未处理样品中的水平。Exon/Exon表示成熟的mRNA;内含子/外显子表示新生mRNA。NT-Vp(Vp)表示在NT和si之间比较值时的p值VPS28系列24小时处理后的样本,以及NT-Ub(英国)表示NT和siUBAP1。*p<0.05,**p<0.005。(G) 在1小时(x轴)或20小时(y轴)后分析的全基因组siRNA筛选中,显示每次命中时细胞核SMAD2/3水平变化的散点图,表示为来自筛选平均值的SD。红色虚线表示2个SD,这是这些屏幕的重要性阈值。SMURF1公司SMURF2型显示。(H) 用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染HaCaT细胞SMURF1公司并用TGF-β刺激指定时间。通过western blot检测PSMAD2、SMAD2/3和微管蛋白水平作为负荷对照。量化是三个独立实验的标准化平均值±SD*p<0.05。通过qPCR评估击倒程度,相同三个独立实验的归一化平均值±SD显示在右下角。
图5
图5。未能减弱SMAD2磷酸化导致下游TGF-β反应上调
(A) 用非靶向(NT)对照siRNA转染HaCaT细胞,siRNA靶向VPS28系列UBAP1公司用TGF-β刺激24小时。所示基因的表达水平通过qPCR检测,是三个独立实验的平均±SD,归一化为NT未处理样品中的水平*p<0.05,**p<0.005,***p<0.00005。不另作说明,不重要。(B) 用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染HaCaT细胞VPS28系列UBAP1公司将其血清饥饿24小时以阻止细胞周期(arrest),然后在不存在(释放Ctrl)或存在(释放+TGF-β)0.5 ng/mL TGF-α的情况下转移到全血清培养基中20小时。对照(Ctrl)细胞是在全培养基中生长的siRNA转染细胞。处理后,固定细胞,进行细胞周期分析,并将细胞分配到细胞周期的一个阶段。蓝色,G1;红色,S;绿色,G2/M。给出了细胞周期每个阶段的细胞百分比。x轴表示通过碘化丙啶荧光测量的DNA含量。
图6
图6。ESCRT敲除允许TGF-β在低剂量下驱动EMT
(A) 用非靶向(NT)对照siRNA或靶向siRNA转染NMuMG细胞电压28并在指定的时间内用0.5 ng/mL TGF-β处理或不处理。固定细胞并对其进行TJP1、CDH1和DAPI染色,以标记细胞核,并通过共焦显微镜成像。比例尺,50μm。(B) 与(A)中一样,不同之处在于使用鬼笔肽对细胞进行肌动蛋白染色。比例尺,30μm。
图7
图7。肿瘤中ESCRT组分表达减少与预后不良相关
(A) 对RSEM标准化TCGA RNA-seq表达数据集进行分析,以确定匹配肿瘤和正常样本中ESCRT成分的表达。显示了方框图和胡须图,其中中心线表示样本中值,方框边缘表示四分位数,胡须延伸到不被视为离群值的最极端数据点。异常值用红色十字表示*p<0.05,**p<0.005,***p<0.0005,***p<0.00005。(B) 对RSEM标准化TCGA RNA-seq表达数据集进行ESCRT组分表达分析。所选基因的顶部和底部分位数表达排名值绘制为Kaplan-Meier曲线。显示了p值。乳腺浸润癌;COADREAD,大肠腺癌;GBM,多形性胶质母细胞瘤;头颈部鳞状细胞癌;肾肾透明细胞癌;肺腺癌;肺鳞状细胞癌;卵巢浆液性囊腺癌;胰腺癌;皮肤黑色素瘤;STAD,胃腺癌。

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引用人

参考文献

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