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.2017年3月;23(3):301-313.
doi:10.1038/nm4283。 Epub 2017年2月13日。

肌酸激酶途径是EVI1阳性急性髓细胞白血病的代谢易损性

附属公司

肌酸激酶途径是EVI1阳性急性髓细胞白血病的代谢易损性

尼娜·费努耶等。 自然·医学. 2017年3月.

摘要

在某些急性髓细胞白血病(AML)病例中,MECOM(也称为EVI1)原癌基因的表达被染色体易位解除调控,并与不良临床结局相关。在这里,通过造血细胞的转录组和代谢组分析,我们发现EVI1过度表达改变了细胞代谢。使用汇集的短发夹RNA(shRNA)进行的筛选确定,在EVI1阳性AML受试者中,ATP缓冲、线粒体肌酸激酶CKMT1是表达EVI1的细胞存活所必需的。EVI1通过抑制髓系分化调节因子RUNX1促进CKMT1表达。CKMT1导向的shRNAs或小分子环肌酸抑制精氨酸-肌酸代谢选择性地降低生存能力,促进人类EVI1阳性细胞系的细胞周期阻滞和凋亡,延长原发性AML的原位异种移植模型和小鼠模型的存活时间。CKMT1抑制改变了线粒体呼吸和ATP生成,这一作用被磷酸肌酸介导的精氨酸-肌酸途径的重新激活所抵消。因此,针对CKMT1是EVI1驱动的AML亚型的一种有希望的治疗策略,该亚型对当前治疗方案具有高度耐药性。

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作者声明没有竞争性的经济利益。

数字

图1
图1。EVI1过度表达给AML细胞带来新的代谢依赖性
(A)GSEA对MSigDB v.5.0中可用于小鼠Lin的c2精选基因集进行定量比较Evi1-过表达与对照骨髓样本(GSE 34729)。数据显示为−log火山图10(FDR)与每个评估的基因集的标准化富集分数的关系。三角形表示与增殖(绿色)、细胞分化(蓝色)和代谢(红色)相关的集合,灰色圆点表示所有其他c2基因集合。(B)代谢网络显示GSE 34729产生的Evi1过度表达特征中的基因集发生改变。黑色、深灰色、浅灰色和白色分别表示富集比值比(OR)高于3、介于2和3之间、介于1和2之间以及低于1。(C)对照组与Evi1-过表达Lin的稳态代谢物谱的富集和通路拓扑分析(MetaboAnalyst)相结合的通路分析小鼠骨髓细胞。在总共45条代谢途径中,前15条是基于FDR≤0.1和p值≤0.05表示的。“Hits”表示稳态曲线中得分的代谢物数量,“Total”表示给定代谢途径中存在的代谢品数量。代谢途径-log10(FDR)≥1.5用红色表示,1≤−log10(FDR)<1.5为橙色,且为−log10(FDR)<1米黄色。(D)靶向人类TF-1(顶部)和UCSD-AML1(底部)细胞系中67个代谢相关基因的shRNA文库中的点击数显著减少(蓝色)或增加(红色)的散点图。未得分的命中率用黑色表示。数据显示为−log火山图10(FDR)与每个基因的RIGER富集分数。(E)Evi1在Lin中过度表达时GSE 34729中差异表达的代谢基因的热图在TF-1和UCSD-AML1细胞的shRNA筛选中,骨髓细胞(左侧面板)和基因的热图要么耗尽(蓝色),要么富集(红色)(右侧面板)。蓝色文字显示的是两种上调基因Evi1公司shRNA筛选中过度表达和耗尽。CT,控制。每个条件的每一列代表一个技术复制(每个条件n=3)。(F)感染发夹的TF-1细胞的生长CKMT1型,SDHA公司,或反恐精英(左侧面板)。免疫印迹法确认shRNA靶基因敲除(右侧面板)。shCT,对照shRNA。误差条代表平均值±标准偏差。*和#p值≤0.05是使用非参数Kruskall-Wallis检验和Dunn多重比较检验在最近一个时间点计算的。数据是两个独立实验的代表。
图2
图2。EVI1阳性细胞高度表达并依赖CKMT1
(A)对EVI1高或低表达的人类AML细胞系进行EVI1、CKMT1和HSP60免疫印迹(负荷控制)。(B-C)肌酸激酶活性(B)IC的分布50 (C)对于用环肌酸(Ccr)处理的人EVI1高与低细胞系。使用非参数Mann-Whitney检验计算的p值。误差线表示8个低表达EVI1和4个高表达EVI1-的人类细胞系的平均值±SD。(D)11个人类AML细胞系感染了2个CKMT1公司-定向miR30-shRNAs。用0.5μg/ml多西环素处理后的生长归一化为对照shRNA,并显示相对于第0天(播种时间)的生长,误差条表示七个技术复制品的平均值±SD。每个A-D实验至少进行两次独立的实验。(E)68例AML患者CD13/33标记骨髓细胞组EVI1表达的Z评分标准化。红色条表示EVI1表达水平最高的四名患者。(F)小组亚选骨髓样本EVI1、CKMT1和GAPDH(负荷控制)的免疫印迹(E类).(G)IC分布50对于EVI1高与低患者样本,以响应环肌酸(Ccr)的治疗。红色方块代表面板中的四个患者样本(F类)以红色突出显示。使用非参数Mann-Whitney检验计算的p值。误差线表示10个低表达EVI1和4个高表达EVI1-的人类原始样本的平均值±SD。
图3
图3。EVI1介导的RUNX1下调促进CKMT1公司表达
(A–B)Evi1、Ckmt1和Gapdh的免疫印迹(A)和qRT-PCRCkmt1表达(B)来自林,c-套件+感染空的或Evi1编码结构的小鼠骨髓细胞。误差线表示四个技术复制品的平均值±SD。*与使用Mann-Whitney检验计算的空白对照矢量相比,p值≤0.05。(C)qRT-PCR用于CKMT1公司感染shControl或shCT的人TF-1和UCSD-AML1细胞的表达水平电动汽车1-靶向shRNAs。误差条代表四个技术重复的平均值±标准差。*#与使用Mann-Whitney试验计算的shCT相比,p值≤0.05。(D)来自人类293E细胞的荧光素酶报告分析,该细胞同时表达编码EVI1的载体和野生型或几种截断型人类CKMT1公司位于荧光素酶盒两侧的启动子。(E)人293E细胞共表达编码EVI1的载体和携带荧光素酶的人的荧光素素酶报告子分析CKMT1公司RUNX1结合位点的启动子为野生型或删除型。(F)来自编码EVI1和RUNX1的人293E细胞共表达载体的荧光素酶报告分析。(G)免疫印迹法检测感染了上述组合的人TF-1细胞的EVI1、RUNX1、CKMT1和HSP60(负荷控制)电动汽车1-和运行NX1-直接shRNAs。(H)EVI1结合峰的表示运行NX1Bard Chapeau进行的两次ChIP测序实验中的基因轨迹等。和玻璃等。.(I-L),c-套件+小鼠骨髓细胞过度表达编码Evi1的载体(I–J)或感染shControl(shCT)的人类UCSD-AML1细胞和三个电动汽车1-定向shRNAs(K),或人类UCSD-AML1细胞感染电动汽车1-和运行NX1-定向shRNAs(左)在ChIP之后使用指定的ChIP抗体(ChIP Ab)和指定启动子区域上的qPCR。结果表示为输入的倍数富集。(D–L)误差线表示三个技术复制品的平均值±SD。*p值≤0.05,使用韦尔奇t检验计算。A–L中的每个实验至少进行两次独立的实验。(百万)用于高效植入的过度表达CSF2的TF-1-Luc细胞被两种药物的联合感染电动汽车1-和一个运行NX1-尾静脉注射前指导shRNAs。每周对生物发光进行量化,以衡量疾病负担。数据表示为每队列5只小鼠的平均值±SEM。*使用非参数Mann-Whitney检验在最近一个时间点计算p值≤0.05。(N)条形图显示了具有以下任一项的主要AML患者样本的数量电动汽车1高的/运行NX1低的,电动汽车1高的/运行NX1高的,电动汽车1低的/运行NX1低的,或电动汽车1低的/运行NX1高的表达和显示CKMT1公司在两个队列中:GSE14468和GSE10358的高表达水平与低表达水平(z评分≥0.58的绝对临界值为高表达,z评分≤−0.58的绝对临界值为低表达)。使用Fisher精确测试计算的p值。
图4
图4。在CKMT1抑制中阻断精氨酸-creatine通路会损害EVI1-阳性AML细胞的线粒体呼吸和ATP生成
(A)精氨酸代谢和参与此过程的酶示意图。(B–C)精氨酸代谢代谢产物的热图,在感染对照(shCT)或CKMT1公司-在用L-精氨酸进行30分钟脉冲标记之前,用3 mM环肌酸(Ccr)与1 mM磷酸肌酸(P-Cr)(C)联合治疗12小时,或在人TF-1细胞中定向shRNAs(B)13C类6。p值≤0.05的代谢物评分以对数表示2折叠变化归一化为平均控制条件。每个条件的每一列代表一个技术复制(每个条件n=3)。(D–E)用增加浓度的环肌酸(Ccr)(D)处理的人TF-1和UCSD-AML1细胞的生长抑制,或用对照(shCT)或CKMT1-directed shRNAs(E)与1 mM磷酸肌酸(P-Cr)联合感染。误差线表示五个技术复制品的平均值±SD。*p值≤0.05,与使用Mann-Whitney检验计算的shControl相比。(F)来自对照或Evi1-过表达小鼠Lin的5轮连续再植的集落形成分析,c-套件+用3 mM环肌酸(Ccr)和1 mM磷酸肌酸(P-Cr)联合处理骨髓细胞。#与对照条件相比,使用韦尔奇t检验计算的p值≤0.05。误差线代表三个技术复制品的平均值±SEM。(G)顶部上调或下调代谢物的热图(p值≤0.05和绝对对数2两个中至少一个的折叠变化≥1.5CKMT1公司-直接shRNAs条件与平均shControl条件)通过稳态代谢谱在感染对照组(shCT)或对照组(shCT)的人TF-1和UCSD-AML1细胞中鉴定CKMT1型-直接shRNAs。每种情况的每一列代表一个技术复制(在两个单独的人类EVI1阳性细胞系中,每种情况n=3)。(H)路径分析集成了专家组(G)顶级代谢物列表的富集和路径拓扑分析(MetaboAnalyst)。根据FDR≤0.25和p值≤0.05表示最高富集代谢途径。“Hits”表示稳态曲线中得分的代谢物数量,“Total”表示给定代谢途径中存在的代谢品数量。代谢途径-log10(FDR)≥1.5用红色表示,1≤−log10(FDR)<1.5为橙色,且为−log10(FDR)<1米黄色。(一)用5 mM环肌酸(Ccr)治疗12小时的12个人类AML细胞系的ADP/ATP比率。*与使用Mann-Whitney试验计算的控制条件相比,p值≤0.05。误差线表示四个技术复制品的平均值±SD。(J)用5 mM环肌酸(Ccr)与1 mM磷酸肌酸(P-Cr)联合处理12小时的指示的人EVI1阳性AML细胞系中的细胞内ATP水平。*#分别与对照条件和Ccr-处理条件进行比较,使用Mann-Whitney试验计算的p值≤0.05。误差线表示四个技术复制品的平均值±SD。(K)连续注射1μM ATP合酶抑制剂寡霉素、1μM解偶联剂FCCP、,复合物I和III抑制剂鱼藤酮和抗霉素A分别为1μM。*与对照条件相比,使用曼希特尼试验计算的p值≤0.05。误差线表示4个技术复制品的平均值±SD。除G和H外,每个实验至少进行两次独立的实验,其中两个不同的EVI1阳性人类细胞系用两种不同的CKMT1公司-使用代谢组学分析定向shRNAs。
图5
图5。肌酸激酶途径的抑制通过细胞周期阻滞和凋亡诱导改变EVI-1阳性AML细胞的活性
(A)用环肌酸处理24小时的人TF-1、UT-7和UCSD-AML1细胞系中最常见的上调和下调基因的热图。p值≤0.05,FDR≤0.05,对数的绝对折叠变化2(FPKM)得分≥1.5。每种情况的每一列代表一个独立的生物复制(在三个单独的人类EVI1阳性细胞系中,每种情况n=3)。(B–C)GSEA通过MsigDB和DMAP数据库查询RNAseq识别的环肌酸信号,以比较载体与经环肌酸处理的AML细胞。(B) 在功能网络中描述了环肌酸治疗后顶部富集的上调(红色)和下调(蓝色)基因集。(C)这些感兴趣的基因集(蓝色或红色)与所有其他可用基因集(灰色)的定量比较。数据以对数火山图表示10(p值)与每个评估基因集的标准化富集分数(NES)。(D–E)用8 mM环肌酸处理9天(D)或感染对照组(shCT)或CKMT1公司-定向shRNA(E)。(F)用8 mM环肌酸酐治疗9天或感染CKMT1公司-定向shRNAs(底部面板)。*与对照条件相比,使用韦尔奇t检验计算的p值≤0.05。误差线表示三个技术复制品的平均值±SD。(G)用环肌酸治疗的人EVI1阳性细胞系的指示时间点的细胞周期分析。(H)FACS图显示用8 mM环肌酸(Ccr)治疗5天的指定人类AML细胞系的Annexin V(AV)/碘化丙啶(PI)剖面。(一)FACS分析CD117细胞表面标记物在使用8 mM环肌酸治疗9天或感染CKMT1公司-定向shRNAs(顶部面板)。图中显示了每个细胞系的典型FACS图。(J)对使用3 mM或10 mM环肌酸(Ccr)治疗的指定人类AML细胞系进行2至3轮连续再植的集落形成分析。结果表示三次测定的平均值。*与对照条件相比,使用韦尔奇t检验计算的p值≤0.05。误差线代表平均值±SEM。D–J中的每个实验至少进行两次独立的实验。
图6
图6。CKMT1敲除优先损害EVI1阳性的人类和小鼠髓系白血病的发展,而不影响正常祖细胞的生存能力
(A)野生型(WT)小鼠骨髓细胞Evi1/Evi1、Ckmt1/Ckmt1和Gapdh/Gapdh(负荷控制)的Western免疫印迹,N-Ras公司G12D系列,或N-Ras公司G12D系列+Evi1公司鼠标。人UCSD-AML1细胞系作为EVI1和CKMT1表达的阳性对照。(B)免疫印迹显示多西环素诱导7天后小鼠RFP分类骨髓细胞中Ckmt1敲除水平。(C)Kaplan-Meier曲线显示小鼠的总体存活率(除N-拉斯G12D系列+Evi1公司shCT+dox组,其中n=6)移植表达每种指定结构组合的细胞。通过log-rank(Mantel-Cox)检验确定的统计显著性。*与shControl(shCT)相比,p值≤0.05N-Ras公司G12D系列N-Ras公司G12D系列+Evi1公司组。(D)shControl小鼠死亡时,每组四只小鼠的脾脏重量和白细胞(WBC)计数。使用曼希特尼试验计算的P值。误差线代表平均值±SEM。(E)Mac-1比例+/等级-1+每组四只小鼠脾脏中的细胞。使用曼希特尼试验计算的p值。误差线代表平均值±SEM。(F)CMP比例(CD16/32/CD34型+),GMP(CD16/32+/CD34型+)和MEP(CD16/32/CD34型)门控Lin上的细胞群/Sca-1型/c试剂盒+shControl死亡时的髓系祖细胞。在每个白血病细胞群上评估RFP和Venus的表达。图中显示了每组中一只典型的垂死小鼠。(G–H)低U937-Luc(G)和高TF-1 CSF2+-表达Luc(H)EVI1的人类细胞系感染了两种强力霉素诱导的CKMT1公司-尾静脉注射前直接注射miR30-shRNAs(顶部面板),或注射后10天用1g/kg/天的环肌酸(Ccr)治疗(底部面板)。TF-1-Luc细胞被设计成过度表达CSF2,以便在小鼠中高效植入。每周对生物发光进行量化,以衡量疾病负担。箭头表示开始强力霉素(Dox)或环肌酸(Ccr)治疗。数据表示为每队列5只小鼠的平均值±SEM。使用非参数Mann-Whitney检验在最近的时间点计算p值。右侧面板显示了显示各组小鼠总体存活率的Kaplan-Meier曲线。通过log-rank(Mantel-Cox)检验确定统计显著性。n.s,不显著。(一)低U937-Luc(顶板)和高TF-1 CSF2+-在指定的时间点,用1g/kg/天的环肌酸(Ccr)和磷酸肌酸(P-Cr)联合治疗表达Luc(底图)EVI1的人类细胞系。每周对生物发光进行量化,以衡量疾病负担。数据表示为每队列7只小鼠的平均值±SEM。使用非参数Kruskall-Wallis检验和Dunn的多重比较检验计算最近一个时间点的p值。Kaplan-Meier曲线显示总体存活率(右侧面板)。通过log-rank(Mantel-Cox)检验确定的统计显著性。*#分别与溶媒和Ccr-治疗组比较,p值≤0.05。不显著。

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引用人

工具书类

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