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.2012年8月31日;287(36):30518-28.
doi:10.1074/jbc。M112.391557。 Epub 2012年7月11日。

蛋白激酶CθC2结构域是一个磷酸酪氨酸结合模块,在其激活中起关键作用

附属公司

蛋白激酶CθC2结构域是一个磷酸酪氨酸结合模块,在其激活中起关键作用

罗伯特·V·斯塔林等。 生物化学杂志. .

摘要

蛋白激酶Cθ(PKCθ)是一种新型的PKC,在T淋巴细胞活化中起关键作用。为了了解PKCθ在T细胞中是如何调节的,我们研究了其作为自身抑制结构域的N末端C2结构域的性质。我们的测量表明,来自CDCP1的含Tyr(P)的肽以高亲和力结合PKCθ的C2结构域,并激活完整蛋白质的酶活性。Tyr(P)肽也与PKCδ的C2结构域紧密结合,但未观察到PKCδ激活酶。参与Tyr(P)结合的PKCθ-C2残基的突变消除了酶的激活以及PKCθ与Tyr磷酸化全长CDCP1的结合,并严重抑制了T细胞受体/CD28介导的PKCβ依赖报告基因在T细胞中的激活。总之,这些研究将PKCθ的C2结构域确定为Tyr(P)结合结构域,并表明该结构域可能通过其Tyr。

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数字

图1。
图1。
PKCθ和PKCδC2结构域的序列比对和结构。 A、,在T-Coffee(48)中进行的大鼠PKCδ和人PKCθC2域C2域的序列比对显示52%的序列一致性。相同的残留物如所示红色,高度相似的残留物蓝色,类似残留物绿色和未经处理的残留物黑色.被认为对Tyr(P)肽结合重要的残基标记为蓝色箭头和Tyr90PKCθ中磷酸化的标记为星号。B类,PKCδ-C2-CDCP1肽复合物的晶体结构(PDB条目1YRK)(18)。蛋白质显示在表面表示法使用PyMOL蓝色红色定性地表示表面正静电势和负静电势。结合的Tyr(P)肽如木棍表示法注意,阳离子槽与中所示的Tyr(P)部分相互作用红色.C,a带状图PKCδ-C2模型的分子取向与图1相同B类。参与PKCδ-C2的Tyr(P)结合的残基侧链在填充空间表示标记。D类以PKCδC2结构域为模板建立了PKCθC2结构域的同源模型。表面表示显示阳离子槽的存在,其与PKCδ-C2的Tyr(P)-结合口袋相当。E类,带状图PKCθ-C2模型的分子取向与图1相同D类参与PKCθ-C2的Tyr(P)结合的残基的侧链在填充空间表示标记.
图2。
图2。
平衡SPR分析测定PKCθ-C2-肽结合。 A类,显示了35、75、150、400和1000 n时PKCδ-C2的SPR绑定传感器图为了测试非特异性结合,对照表面使用非磷酸化肽,该肽从Tyr(P)肽结合反应中减去,以校正折射率变化并产生显示的感测图。B类,饱和响应(R(右)等式)PKCδ-C2在各个蛋白质浓度下的结合(0)在A类绘制了[PKCδ-C2]拟合结合等温线的非线性最小二乘分析(R(右)等式=R(右)最大值/(1 +K(K)d日/0)以确定K(K)d日(见表1)。C类,显示了25、45、110、275和650 n时PKCθ-C2的SPR结合传感器图减去非磷酸化肽控制表面进行折射率校正的Tyr(P)涂层表面。D类,如中所示B类,饱和响应(R(右)等式)PKCθ-C2在每个蛋白浓度下的结合(0)在C类绘制以确定K(K)d日对于PKCδ-C2和PKCθ-C2,在给定PKC浓度下,来自非磷酸化肽的结合信号通常小于来自Tyr(P)肽的信号的5%。
图3。
图3。
PKCθ与CDCP1的关联。如图所示,Jurkat-TAg T细胞与FLAG标记的CDCP1表达载体以及编码GFP标记的野生型或C2-突变的PKCθ载体(或空载体)的载体共同转染。用钠刺激细胞VO(旁白)4(1米)10分钟后溶解。抗-GFP免疫沉淀物(IP(IP))或全部裂解产物通过SDS-PAGE溶解,转移到硝化纤维素中,并进行免疫印迹(IB公司)具有所指示的抗体。
图4。
图4。
在Tyr(P)肽存在下PKCθ和PKCδ的酶活性。30 n的激酶活性在20min内存在不同浓度的Tyr(P)肽的情况下测量PKCHEPES,pH 7.4,含0.16KCl,5米氯化镁2和髓磷脂碱性蛋白(200μg/ml),但不存在脂质辅因子。每个数据点代表三次测量的平均值。计算相对活性,并与250μ肽(0.02μmol/min/mg)。请注意,PKCδ显示肽的激活程度比PKCθ低得多。因为在200μ的存在下,PKCδ的活性高于PKCθPOPC/POPS/DiC18在我们的分析条件下(59:40:1)囊泡(见图5,A类B类),这种差异不是由于PKCδ的固有酶活性低所致。也,第页PKCθ和第页PKCδ在0至100μ之间时<0.33泰尔(P)(对酪氨酸)表明PKCδ的活化度为100μTyr(P)在统计学上没有意义。误差线、S.D。
图5。
图5。
PKCδ、PKCθ和PKCσ突变体的PS和Tyr(P)依赖性活性。30 n的激酶活性PKCδ(A类)或PKCθ(B类)测量单位为20米HEPES缓冲液,pH 7.4,含0.16KCl,5米氯化镁2、髓磷脂碱性蛋白(200μg/ml)和200μPOPC/POPS/DiC18((89 −x个):x个:1)囊泡,有无5μ肽。对于PKCθ突变体,酶测定在相同的条件下进行,除了固定浓度的PS(POPC/POPS/DiC18=89:10:1(C类)或POPC/POPS/DiC18= 59:40:1 (D类))用于囊泡中。每个酒吧表示三次测量的平均值。计算相对活性,并与POPC/POPS/DiC获得的WT-PKCθ最大活性(0.08μmol/min/mg)进行比较18(59:40:1)囊泡和250μ肽。白色条,在没有Tyr(P)的情况下测得的激酶活性;阴影条,用5μ测量激酶活性Tyr(P)肽。当PKCθ被250μ激活时仅肽(0.07μmol/min/mg),添加200μPOPC/POPS/DiC18(59:40:1)囊泡适度增加了活性(0.08μmol/min/mg)。注意,在POPC/POPS/DiC存在下,PKCδ的固有活性(0.067μmol/min/mg)高于PKCθ(0.039μmol/min/mg)18(59:40:1),但不含Tyr(P)肽。在POPC/POPS/DiC存在下PKCθ突变体的比活性(μmol/min/mg)18(59:40:1)M52A、H63A和R68A的囊泡分别为0.038、0.037和0.037,表明这些突变不会改变脂质依赖性活性。误差线、S.D。
图6。
图6。
PKCθ的Tyr(P)结合位点突变对其T细胞调节活性的影响。 A类Jurkat-TAg T细胞与编码GFP标记的野生型或C2突变PKCθ载体(或空载体)的载体以及RE/AP-Luc和β-gal报告基因共同转染。保持细胞未受刺激或用抗CD3和抗CD28单克隆抗体刺激6小时。将荧光素酶活性归一化为β-半乳糖活性测定三倍。RLU(RLU),相对荧光素酶单位。B类流式细胞术分析转染GFP-PKCθ蛋白的表达,显示所有蛋白的表达水平相似。误差线、S.D。
图7。
图7。
PKCθ的域结构示意图(A类)以及提出的PKCθ的膜结合和活化机制(B类). A类,PKCθ的结构域组织示意性地显示为Tyr(P)的位置(对酪氨酸)C2域中的绑定口袋由红色箭头。B类,在PKCθ的静止状态下,Tyr90未磷酸化,C2或C1B结构域均未完全暴露以实现最佳膜相互作用。在经典的激活机制中,Tyr的磷酸化90诱导构象变化,通过脂质结合促进PKCθ的膜募集。C2域与PS的绑定(黄色的)以及随后的膜渗透和DAG(红色)C1B结构域的结合将假底物区域从活性部位拉出来,导致酶激活。不考虑Tyr90磷酸化,C2结构域可以结合膜结合蛋白的Tyr(P),从而通过构象变化激活PKCθ,这也导致从活性位点去除假底物。PS和DAG结合可进一步激活蛋白质或延长其膜滞留和/或活化。

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引用人

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    1. Newton A.C.(2001)蛋白激酶C.磷酸化、辅因子和大分子相互作用的结构和空间调节。化学。版次101,2353–2364-公共医学
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