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2000年6月6日;97(12):6397-402.
doi:10.1073/pnas.090099297。

转化生长因子β诱导SMAD与Smad7启动子的独立结合

附属机构

转化生长因子β诱导的SMAD与Smad7启动子的非依赖性结合

N G丹尼索娃等人。 美国国家科学院程序

摘要

SMAD蛋白可以介导转化生长因子β(TGF-β)诱导的转录反应。虽然SMAD可以识别特定的DNA序列,但它通常通过与DNA结合伙伴的相互作用被招募到启动子中。为了寻找TGF-β诱导的基因,我们使用了减法筛选方法,并鉴定了人Smad7,该Smad7能够拮抗TGF-α信号传导,并被TGF-γ快速上调。在本报告中,我们表明TGF-β可以稳定Smad7 mRNA并激活Smad7转录。Smad7启动子是脊椎动物中发现的第一个TGF-β反应性启动子,该启动子含有8 bp回文SMAD-结合元件(SBE),这是一个最佳结合位点,之前通过使用重组Smad3和Smad4从随机寡核苷酸中进行基于PCR的选择确定。我们证明,在TGF-β治疗中,内源性SMAD复合物可以与短至14或16 bp的Smad7启动子DNA结合,其中包含凝胶迁移率转移和超转移分析中的8 bp SBE。我们的研究提供了强有力的证据,证明SMAD蛋白可以独立于其他序列特异性转录因子与天然TGF-β应答启动子结合。我们进一步表明,虽然重组Smad3与SBE结合,但内源性或甚至转染的Smad3在没有Smad4的情况下不能与SBE相结合。这些发现对TGF-β/SMAD信号通路靶基因的鉴定具有重要意义。

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数字

图1
图1
(A类)TGF-β快速诱导Smad7 mRNA水平。聚乙烯(A)+以Smad7的N末端结构域为探针,通过Northern blot分析未经处理或TGF-β处理不同时间的HaCaT细胞的RNA(4μg)。(B类)TGF-β能提高Smad7 RNA.Poly(A)的稳定性+用Smad7探针进行Northern blot分析,分析在没有或存在TGF-β(500 pM)的情况下用放线菌素D(1μg/ml)处理不同时间的HaCaT细胞的RNA(4μg)。在两者中A类B类随后将每个印迹与甘油醛-3-磷酸脱氢酶探针杂交,以使RNA负载量正常化。
图2
图2
人类Smad7启动子转录起始位点的测定。聚乙烯(A)+来自未经处理或用TGF-β(500 pM)处理1 h的HaCaT细胞的RNA(0.4μg)与22-bp寡核苷酸一起用于引物延伸分析。在变性凝胶上分析产品(参见A类)具有测序反应(未示出)。标记了两个转录起始位点(P1和P2)、SBE和22bp引物的位置。
图3
图3
(A类)SBE对于Smad7启动子的TGF-β诱导至关重要。将含有不同长度Smad7启动子的荧光素酶构建物转染到HaCaT细胞中,并用TGF-β处理。然后分析荧光素酶活性。(B类)Smad3–Smad4复合物以最佳方式激活Smad7启动子的转录。将Smad2、Smad3和Smad4与−339至+641 Smad7-荧光素酶构建物共转染到SW480.7细胞中,并用TGF-β处理,如图所示。然后测定荧光素酶活性。
图4
图4
内源性SMAD可与SBE结合以响应TGF-β。未经处理或用TGF-β处理1 h的HaCaT细胞的全细胞提取物与16-bp探针在凝胶迁移率变化分析中孵育,如A类B类. (A类)抗Smad2/Smad3或Smad4抗体可引起TGF-β诱导的DNA-蛋白质复合物的超移位。(B类)特定竞争物是指侧翼序列发生突变但含有完整的8 bp SBE的寡核苷酸。非特异性竞争对手是指在SBE的GTCT序列中具有2 bp突变的寡核苷酸。(C类)HaCaT细胞未经处理或用TGF-β处理不同时间,然后在凝胶迁移率变化分析中分析SBE结合活性。
图5
图5
(A类B类)在没有Smad4的情况下,内源性或转染的Smad3不能与SBE结合,Smad3–Smad4复合物与SBE的结合最佳。(A类)用Flag-Smad2、Flag-Smad3和Smad4-HA共同转染SW480.7细胞,并用TGF-β处理。全细胞提取物用于16-bp探针的凝胶迁移率变化分析。(B类)针对Flag和HA表位的抗体被纳入超移位分析。(C类)重组Smad3和Smad4可以与16-bp探针结合。GST-SMAD蛋白(0.8μg)用于凝胶迁移率变化分析。

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