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分子细胞蛋白质组学。2012年1月;11(1):M111.014159。
2011年10月11日在线发布。 数字对象标识:10.1074/mcp。M111.014159号
预防性维修识别码:项目经理3270109
PMID:21989018

小鼠出生后软骨发育过程中软骨细胞和细胞外基质蛋白组的变化*保存图片、插图等的外部文件。对象名称为sbox.jpg

摘要

软骨内骨化导致的骨骼生长涉及紧密协调的软骨细胞分化,从而在生长板中形成储备、增殖、前增生和肥大的软骨区。许多人类骨骼疾病都是由软骨细胞外基质(ECM)成分的突变引起的,这些突变破坏了ECM结构和软骨细胞功能。因此,了解正常软骨的发育、组成和结构对揭示这些疾病机制至关重要。研究这个复杂的过程体内通过蛋白质组学,我们分析了发育阶段富含未成熟软骨细胞或成熟/肥大软骨细胞的小鼠股骨头软骨(分别为出生后第3天和第21天)。使用LTQ-Orbitrap串联质谱,我们鉴定了703个软骨蛋白。差异丰富的蛋白质(q个<0.01)包括早期和晚期软骨细胞分化的原型标记物(分别为上皮细胞和X胶原)和新的ECM和细胞粘附蛋白,这些蛋白在软骨发育中没有先前描述的作用(tenascin X、colsin、Urb、emilin-1和寿司重复蛋白SRPX和SRPX2)。软骨发育的Meta分析体内和一个在体外软骨细胞培养模型(Wilson,R.、Diseberg,A.F.、Gordon,L.、Zivkovic,S.、Tatarczuch,L.,Mackie,E.J.、Gorman,J.J.和Bateman,J.F.(2010)使用顺序提取和无标签定量蛋白质组学对软骨细胞外基质形成和成熟进行综合分析。分子细胞。蛋白质组学9、1296–1313)确定了两个系统中涉及的组件,如Urb和具有特定角色的组件体内包括玻璃纤维和CILP-2(软骨中间层蛋白-2)。Urb、镜质体和CILP-2的免疫定位显示了它们在不同成熟阶段的特定作用。除了ECM相关的变化外,我们还首次提供了软骨发育过程中内质网功能变化的生化证据。虽然多功能伴侣BiP没有差异表达,但胶原蛋白生物合成所需的酶和伴侣,如脯氨酰3-羟化酶1、软骨相关蛋白和肽基脯氨酸顺反式异构酶B复合物在成熟过程中被下调。相反,管腔蛋白钙调素、网织钙素-1和网织钙蛋白-2显著增加,表明向钙结合功能转变。这是软骨发育的首次蛋白质组学分析体内揭示了小鼠股骨头软骨细胞成熟和ECM重塑过程中蛋白质表达的广度变化。

软骨是一种独特的组织,具有丰富的细胞外基质(ECM)1还有一种单细胞类型,软骨细胞。然而,提供长骨和脊椎关节表面的永久性透明软骨和负责软骨内骨生长的瞬时生长板软骨在细胞表型和蛋白质组成上都不一致。在关节软骨中,软骨细胞形成形态上不同的区域,包括扁平细胞的表面区域、稀疏的中间层和软骨-骨交界处钙化软骨中嵌入的肥大软骨细胞的深层。在成熟的关节软骨中,这些软骨细胞很少分裂。相反,生长板软骨中软骨细胞的活跃分裂和扩张是轴向和附件骨骼元件生长的主要机制(参见图1). 生长板软骨细胞从软骨-骨交界处最远端的骺软骨中的储备区细胞池进入成熟过程。这些小圆细胞分化为盘状增殖软骨细胞,这些软骨细胞排列成柱状并决定骨生长的轴。软骨细胞随后进入有丝分裂前增生期,体积膨胀,形成完全分化的肥大软骨细胞,为血管侵入和软骨改建成骨提供了一个生态位(1).

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软骨在软骨内骨化中的作用。 A类B类间充质细胞浓缩并分化形成软骨细胞,合成胶原蛋白II和富含聚集蛋白的ECM,为软骨内骨化提供软骨模板(分析)。C类,当中心软骨细胞成熟并肥大时,初级骨化过程开始。E类,肥大的软骨钙化,为血管侵袭提供了生态位。钙化的软骨被原骨所取代,原骨随后被重塑,形成次生骨和骨髓。这个过程从原基中心向外辐射,发育出高度有序的生长板,将软骨骨骺与骨骨干分开。F类G公司随着骨的生长,软骨细胞在骨骺内形成次级骨化中心,软骨细胞停止增殖并发生肥大。这在不同的骨骺中发生的频率不同。H(H)在人类中,初级和次级骨化中心在青春期后融合,而在成年小鼠中,生长板软骨的狭窄区域仍然存在。

在人类中,生长板中软骨细胞成熟的破坏导致遗传性骨骼发育不良,严重程度从轻度侏儒症不等(例如Schmid型干骺端软骨发育不良与早发性骨关节炎(例如多发性骨骺发育不良)对围生儿致死率的影响(例如软骨发育不全)。尽管这些骨骼发育不良个别罕见,但每10000个活产婴儿中,就有2-5个受到影响(参考文献。2). 骨骼发育不良的潜在突变经常损害软骨细胞外基质成分的精确组装和相互作用,突出了细胞外基质网络在软骨细胞分化、组织和生存中的关键作用(3). 除了ECM完整性的丧失外,内质网(ER)应激和未折叠蛋白反应的激活也有助于病理学(4).

显微解剖小鼠软骨区的微阵列分析产生了软骨细胞亚群的差异mRNA表达谱(57). 然而,软骨发育的蛋白质组学水平分析具有挑战性,因为可用组织有限,且可溶性较差的基质成分占主导地位(8). 生长板和关节软骨蛋白质组分析的新方法(911)特别是使用基于溶解性的组织分离,使用双向电泳和毛细管HPLC-tandem MS提高了细胞内和细胞外软骨蛋白质组的覆盖率(12,13). 在这项研究中,我们使用小鼠股骨头软骨来鉴定与软骨细胞分化和软骨发育相关的新蛋白质体内根据组织形态学和FACS选择软骨细胞分化状态有明显差异的发育阶段。出生后第3天(P3),股骨头软骨主要由未成熟的储备软骨细胞构成,第3周(P21),这些细胞主要被成熟的前增生细胞和肥大细胞所取代。

使用无标签定量质谱法对P3和P21软骨提取物进行蛋白质组学分析,以高置信度鉴定出703个非冗余蛋白质。使用贝塔二项分布对光谱计数数据建模,我们鉴定了146个显著差异表达的蛋白质(q个< 0.01). 为了从差异表达蛋白组中提取功能信息,使用注释、可视化和集成发现数据库(DAVID)识别了丰富的基因本体(GO)术语。许多差异表达蛋白在软骨发育过程中是新的,包括ECM成分、细胞粘附蛋白和一组钙结合ER管腔蛋白,即网织钙蛋白。我们的蛋白质组分析结果通过对选定ECM成分的免疫组织化学分析进行验证,揭示了与软骨细胞增殖、成熟和肥大区域相关的不同区域表达模式。

实验程序

软骨解剖和软骨细胞制备用于荧光激活细胞分选

通过髋关节脱位、股骨颈骨折和移除骨软骨,从出生后3天和21天的C57/Bl6小鼠中获得股骨头软骨圆韧带在插入位置。解剖的软骨在PBS中冲洗,在干冰上冷冻,并在−80°C下分批储存,每组8个P3髋关节和6个P21髋关节,相当于~10 mg湿重的组织。还使用P3和P21小鼠的解剖股骨头通过免疫组织化学表征新软骨蛋白的分布。

为了通过FACS分析P3和P21软骨细胞,将股骨头在含有5%FCS和2 mg/ml细菌胶原酶(沃辛顿生物化学公司)的DMEM中37°C培养2 h。软骨细胞在含有5%FCS(6×10)的PBS中重新悬浮3细胞/ml(50 ml),并与CD24a和CD200特异性初级结合抗体(Becton Dickinson)在冰上孵育15分钟。随后对细胞进行清洗,并用7-氨基放线菌素D进行联合染色,以检测死亡细胞,然后进行流式细胞术(FACSCantoII)。相应的IgG同种型(Becton Dickinson)用作阴性对照。

蛋白质提取

使用液氮冷却组织研磨机将P3和P21股骨头软骨(每个发育阶段三个独立批次的组织)粉碎,并转移到Eppendorf管中。使用非变性缓冲液(1100 m内的NaCl三乙酸盐,pH 8.0),然后是共沸缓冲液(4GdnHCl,65米DTT,10米50 m深处的EDTA醋酸钠,pH 5.8)(13). 通过100-kDa截止超离心柱(Amicon)通过分子质量截止过滤进一步分离胍提取的蛋白质。蛋白质提取物用9体积的乙醇沉淀,蛋白质颗粒在70%(v/v)乙醇中洗涤两次,并重新悬浮在含有7尿素,2硫脲、4%CHAPS和30mTris,pH 8.0。使用Bradford分析(Pierce)估算蛋白质浓度。

SDS-PAGE和免疫印迹

通过SDS-PAGE分析软骨提取物,以评估每个股骨头软骨部分软骨蛋白的再现性和相对水平。在含有50 m的Laemmli缓冲液中加热相当于总蛋白质产量2%的每种提取物的等分样品二硫苏糖醇在65°C下放置15分钟,并通过4–12%丙烯酰胺双Tris NuPAGE凝胶(Invitrogen)进行溶解,如所述,通过银染色显示蛋白质(14).

蛋白质还原、烷基化和溶液中胰蛋白酶消化

将用于LC-MS/MS分析的蛋白质样品依次还原,并在氮气下通过在10m中孵育进行烷基化二硫苏糖醇(在4°C下过夜),然后50 m碘乙酰胺(25°C,黑暗中2小时)。蛋白质与1μg胰蛋白酶(Promega)在−20°C和1 ml甲醇中共沉淀过夜。用冷冻甲醇清洗胰蛋白酶沉淀一次,干燥,并在100 m内重新配制碳酸氢铵,然后在37°C下胰蛋白酶化5小时,2小时后添加1μg胰蛋白酶。通过在干冰上冷冻终止消化。

Orbitrap质谱

使用UltiMate 3000 HPLC系统(Dionex)或Tempo NanoLC系统(Eksigent),按照LTQ-Orbitrap XL(ThermoFisher Scientific),通过LC-MS/MS对每个样品的三个组分中的每一个进行两次分析。将等分的胰蛋白酶肽(相当于溶液中消化物的25%)加载到0.3×5-mm C18捕集柱(Dionex)以20μl/min的速度在98%溶剂A(0.1%(v/v)甲酸)和2%溶剂B(80%(v/v)乙腈、0.1%(v/v)蚁酸)中放置5分钟,然后回流到预平衡分析柱(Vydac Everest C18300Å, 150微米×150毫米;Alltech)使用1μl/min的流速,在40°C下使用三个线性梯度段(2–12%溶剂B超过6 min,12–50%溶剂B超过65 min,然后50–100%溶剂B超过15 min)分离肽,在100%溶剂B下再保持15 min,然后再返回2%溶剂B超过5 min。

LTQ-Orbitrap配备了一个动态纳米电喷雾离子源(Proxeon),其中包含一个内径为30μm的无涂层二氧化硅发射器(新目标)。LTQ-Orbitrap XL使用Xcalibur 2.0软件(Thermo Electron)进行控制,并在数据相关采集模式下运行,其中测量扫描在Orbitrap中采集,分辨率设置为60000(400米/z). 在LTQ质量分析仪上同时采集了FT测量扫描中七种最强烈离子的MS/MS光谱。荷电状态过滤,其中未选择未分配的前体离子进行破碎,并使用动态排除(重复计数,1;重复持续时间,30 s;排除列表大小,500)。LTQ中的碎片条件为:35%的归一化碰撞能量,激活q个激活时间为0.25、50毫秒,最小离子选择强度为500计数。

数据库搜索

获得的MS/MS数据,以及在我们之前的LC-MS/MS软骨蛋白质组学研究中获得的MS-MS数据(12)使用吉祥物2.2.06版(矩阵科学)进行分析。Proteome Discoverer 1.2版(Thermo Scientific)用于从Xcalibur原始文件中提取串联质谱,并根据以下参数将搜索结果提交给内部Mascot服务器:S公司-半胱氨酸残基的羧酰胺甲基化被指定为固定修饰,N-末端谷氨酰胺环化为焦谷氨酸,天冬酰胺脱酰胺,脯氨酸羟基化,蛋氨酸氧化被指定为可变修饰。使用20ppm的母体离子耐受性和0.8Da的片段离子质量耐受性,将酶裂解设置为胰蛋白酶,最多允许两次缺失裂解。所搜索的数据库由46137个序列组成,包括UniProt完整蛋白质组集小家鼠(2011年5月23日下载了45889个序列)和附加的常见污染物序列(从Max Plank Institute下载http://maxquant.org). 对所有数据集执行了自动吉祥物诱饵数据库搜索。

蛋白质鉴定标准

吉祥物搜索结果加载到Scaffold版本3.0.08中,以指定肽和蛋白质匹配的概率(15). 如果按照肽Prophet算法的规定,肽的分配概率大于0.95,则接受肽谱匹配(16). 概率阈值0.95显示了预测的正确和错误肽谱分配之间的良好区分,并且只有电荷状态为+1、+2和+3的肽被保留为可靠的标识,因为肽先知模型不适合电荷状态≥4的数据。如果蛋白质包含至少两个独特的肽(按照氨基酸序列),则接受蛋白质鉴定,并且蛋白质被Protein Prophet算法分配的概率大于0.99(17). 该阈值将蛋白质错误发现率(FDR)限制在<1%。报告了满足简约原则的最小蛋白质列表。

串联质谱数据的统计和生物信息分析

为了获得样品水平的光谱计数数据,对每个重复样品的E0、E1和E2级分的MS/MS数据进行重组生物信息学使用Scaffold MudPIT功能。将全局归一化应用于原始光谱计数,并添加一个伪计数以减少欠采样的影响。使用P21相对于P3的归一化计数平均值估计折叠变化。贝塔二项检验(18)用于评估P3和P21样本之间的差异。该测试模拟了样品组之间光谱计数差异的大小以及重复测量之间的差异。QVALITY用于估算q个每个蛋白质的值(19),其中q个值是蛋白质被称为显著的最小FDR。A类q个本研究采用0.01作为显著性阈值。

使用DAVID 6.7版进行功能注释和富集分析(20). 蛋白质列表作为官方基因符号上传至DAVID网站(http://david.abcc.ncifcrf.gov/)以小鼠全基因组为背景。使用功能注释聚类工具集对显著丰富的功能组进行排序,以达到较高的分类严格性。

免疫组织化学分析

将分离自P3和P21 C57/Bl6小鼠的股骨头用4%(v/v)多聚甲醛固定在PBS中4°C过夜,然后在4°C脱钙溶液(免疫)中孵育18 h。组织在PBS中清洗并处理(徕卡TP 1010自动组织处理机),然后包埋在液体石蜡中。使用Leica 1512切片机切割股骨头(5μm)的矢状切面,然后在60°C下烘烤1 h。三周新软骨培养(在体外软骨细胞培养第21天)标本按规定处理(12). 石蜡切片在二甲苯中脱蜡并用分级乙醇浇水,然后在自来水中漂洗两次,在PBS中漂洗二次。

两种方法用于抗原检索。为了进行Urb和镜质体分析,将载玻片在37°C的2 mg/ml胃蛋白酶中培养30分钟,然后再培养10分钟含0.05%吐温20的柠檬酸缓冲液在60°C下浸泡30分钟。冷却后的载玻片在PBS中清洗,然后在37°C下用0.2%透明质酸酶(IV-S型)处理60分钟,然后进行三次PBS清洗。对于CILP-2分析,载玻片经过10m的热处理Tris,1米EDTA,pH 8,在60°C下保持30分钟。用30μg/ml蛋白酶K在50 mTris,pH 6.0,5 m氯化钙237°C下30分钟,然后在37°C条件下0.2%透明质酸酶(IV-S型)60分钟。用3%H灭活内源性过氧化物酶30分钟2O(运行)2PBS中的(v/v)。

用山羊血清(Vectastain Elite ABC兔IgG试剂盒)在PBS中的1%BSA中封闭组织切片60分钟,然后与兔抗玻璃蛋白(2μg/ml)、Urb(0.2μg/ml(21)或CILP-2(22)(2μg/ml)。用与主要抗体浓度相同的免疫前血清(CILP-2)或非免疫兔IgG(Urb和镜质体)检测对照切片。将生物素化的第二抗体(Vectastain Elite ABC兔IgG试剂盒)应用于切片1小时,并在三种PBS中洗涤切片,然后与ABC试剂(Vectastain Elite ABC兔IgG试剂盒)在室温下孵育30分钟。再次在PBS中洗涤切片,使用ImmPatch DAB底物(Vector Laboratories)检测免疫组织化学染色,直到检测到颜色。通过在自来水中冲洗,然后使用分级乙醇系列(50、70、90和100%)对组织切片进行脱水来终止反应。这些图像是用尼康Eclipse 80i显微镜以10倍放大率拍摄的。

结果

股骨头软骨作为小鼠体内软骨发育的模型

软骨内骨化是软骨前体重塑为骨的过程,始于不同发育阶段的不同骨骼成分。因此,我们的首要目标是建立一个适用于蛋白质组分析的发育模型。在小鼠股骨中,远端骺软骨的次生骨化(对应于下盒区我在图1)出生后早期发育(23). 这将可用软骨限制在生长板上,生长板只能通过组织切片和显微切割来收集(9). 相反,髋关节处的近端股骨头(对应于上框区域II英寸图1)在骨骼成熟之前,骨小梁骨仍然缺失(24)可以作为完整的关节软骨外植体和初级生长板进行解剖(25).

通过P3和P21软骨外植体切取的矢状节切片的苏木精和伊红染色来表征股骨头的发育变化(图2A类). 在P3软骨中,除生长板中增殖的软骨细胞外,大多数细胞呈圆形且不成熟,关节软骨表面和假定的骨化中心之间几乎没有形态学差异。相反,P21骨化中心也被描述为股骨头的关节软骨深部区域(26),主要由肥大软骨取代,关节软骨显示出分化为浅层和中部软骨细胞区的迹象。

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组织和细胞水平软骨发育的股骨头模型特征。 A类苏木精和伊红染色显示出生后3天(P3)至21天(P21)软骨组织学的变化。假定的骨化中心(OC公司)P3软骨由未成熟软骨细胞填充,P21处大部分被肥大软骨取代。在P3软骨中,关节软骨细胞(自动控制)均一,而P21软骨表面(箭头)和中间区域(实心箭头)关节软骨细胞更容易区分。在这两个阶段,扁平的增殖柱(公共关系)生长板中可见软骨细胞。B类P3和P21软骨细胞的荧光激活细胞分选,以区分软骨细胞的分化状态。软骨细胞在三个独立的实验中制备和分类,并显示了代表性曲线。所有软骨细胞都标记有CD24a抗体(y轴),而CD200(x轴)是肥大前期和肥大软骨细胞的标志物。CD24a比例增加+/CD200型+单元格(第2季度)相对于CD24a+/CD200型单元格(第一季度)与成熟软骨细胞数量增加一致。

为了量化细胞成熟过程,通过FACS分析P3和P21软骨释放的细胞(图2B类). 我们使用了经验证的软骨细胞分化状态的细胞表面标记物,之前通过小鼠生长板软骨细胞的微阵列分析鉴定(27). CD24a在未成熟和成熟软骨细胞的表面均有表达,CD200的表达仅限于前增生和肥大细胞。CD24a的增加人口+/CD200型+P21软骨中的软骨细胞(66±1.2%)与P3软骨中的软骨细胞(37.3±2.3%)相比,提供了软骨细胞分化的进一步证据。在此基础上,我们使用P3和P21股骨头软骨来研究软骨细胞成熟和软骨ECM发育过程中的蛋白表达变化。

股骨头软骨蛋白组分的连续提取与分析

软骨蛋白质组的很大一部分由细胞外基质组成,必须使用GdnHCl等强变性剂将其分离。我们使用基于在1中的不同溶解度的顺序提取氯化钠和4GdnHCl,然后离心超滤,以进一步分离胍可溶成分(13). 该方法如图所示图3A类,将软骨蛋白质组分为三个不同的部分,有效降低样品复杂性并增加蛋白质组覆盖率(12). P3和P21软骨提取物的蛋白质产量为~25μg/mg湿组织,与之前的研究一致(10,13).

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股骨头软骨的连续提取。 A类采用物理(粉碎)、化学(4)相结合的方法从软骨中提取蛋白质GdnHCl)和酶(使用软骨素酶ABC脱糖)方法破坏细胞外基质氯化钠提取物(E0类)没有进一步细分,而4通过离心超滤将盐酸葡萄糖提取物进一步分离为标称低浓度(E1级)和高(E2级)分子质量分数。B类,股骨头软骨蛋白提取物的SDS-PAGE图谱显示了生物复制品和软骨蛋白有效分割为三个不同部分之间的再现性。三天重复连续提取物的等分(第3页)和21天(第21页)用Bis-Tris 4–12%NuPAGE解析相当于蛋白质产量2%的软骨,并用银染色观察蛋白质。

通过SDS-PAGE对P3和P21软骨蛋白组分的分析显示,重复提取之间的条带轮廓一致,但在两种成熟状态之间,易溶(E0)和难溶(E1和E2)蛋白的比率存在显著差异(图3B类). 在P3软骨中,较高比例的材料可溶于1NaCl,而在P21软骨中,4个软骨中提取了更多的蛋白质GdnHCl。难溶蛋白相对丰度的增加与软骨细胞外基质成熟过程中日益不溶网络的生物合成和整合一致。

无标签纳米LC串联质谱

P3和P21股骨头软骨蛋白组分在溶液中被胰蛋白酶消化。肽通过毛细管HPLC进行解析,并通过LTQ-Orbitrap串联MS进行分析。MS/MS数据提交给Mascot,使用Scaffold对搜索结果进行分析,识别出70318个肽谱匹配,概率大于0.95(电荷态≤3)。基于392个诱饵匹配与69926个目标匹配的比率,肽谱水平的FDR为0.56%。本研究中确定的肽的完整列表包括在补充表1肽组装成蛋白质后,应用简约原理,共有703个蛋白质(和一个诱饵蛋白)被两个或多个独特的肽识别,蛋白质概率>0.99。

将分配给每个蛋白质的肽谱匹配数用作相对蛋白质丰度的度量,并使用全局归一化来校正任何系统变化。完整的归一化光谱计数集如所示补充表2A类.β-二项式检验,估计偶然观察到相同或更大幅度差异的可能性(18),用于比较P3和P21样本的归一化计数。要更正多次比较,q个将值分配给数据集中的每个蛋白质,其中q个值是观测值被称为有效的最小FDR(28). 为了选择适当的显著性阈值,使用MA图表示P3和P21的标准化计数(29). 重要蛋白质在q个给出了0.001、0.01和0.05的阈值,以及两个生物复制的零分布(图4). 我们选择了一个q<0.01的阈值,在此阈值下,146个蛋白质被鉴定为差异丰富,其中不到两个是预期的假阳性。

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P3和P21股骨头软骨数据集的标准化蛋白计数的全局表示为三个错误发现率。每个数据点MA图中表示P3和P21软骨中蛋白质的相对丰度。两个轴都是对数2转换,其中水平轴表示光谱计数的乘积垂直轴表示光谱计数的比率。这个实线灰色线代表相等的丰度灰色虚线代表着丰度的2倍差异。A–C,的黑色数据点代表丰度有显著差异的蛋白质。给出的重要蛋白质的数量q个0.001、0.01和0.05的阈值分别为74、146和282。,两个生物复制(P3复制R1和R2)的代表性图,以显示蛋白质的零分布,那些在数量上没有实际差异的。

与软骨发育相关的蛋白质功能类别

我们使用了网络资源DAVID(20)从146个差异丰富的蛋白质中提取生物学意义。使用设置为高度严格的功能注释工具,20个聚类显著,富集分数>2(如补充表3A类). 条目最多的注释簇是细胞成分“细胞外基质”(簇1;n个=28)和“细胞内细胞器管腔”(簇19;n个= 22). 在重要的ECM成分中,11种在P3软骨中更丰富,17种在P21软骨中更丰富,这表明软骨成熟过程中基质结构发生了广泛的重塑和变化。ECM成分的模块化性质允许在不同组织基质中进行多种交互作用和修改功能。因此,三个富集术语是ECM成分中经常出现的蛋白质结构域:血小板反应蛋白,III型重复序列(簇11;n个=3),EGF-like区域,保守位点(簇9;n个=10),和富含亮氨酸的重复序列(簇18;n个=7)包含富含亮氨酸的小重复蛋白聚糖。软骨蛋白聚糖的关键作用也通过多糖结合(簇2;n个=12),包括主要软骨蛋白聚糖聚集蛋白(Acan)、一种聚集蛋白结合蛋白(软骨寡聚基质蛋白,COMP)和浅层蛋白聚糖润滑蛋白(Prg4)。参与细胞-基质相互作用的另一组组分,由细胞粘附的正向调节(簇15;n个=5),P21软骨中均显著增加。血栓反应蛋白-1是一种已知的软骨细胞结合蛋白(30)而其他四种细胞黏附蛋白要么是全新的软骨成分(tenascin X和emilin-1),要么从未在出生后的软骨中描述过(线圈域蛋白80/Urb和镜质)。由这六个丰富的功能术语描述的ECM和细胞基质粘附蛋白在表I

表I

参与体内软骨发育的重要细胞外基质和相关蛋白

在P3和P21软骨中差异表达的146个蛋白质中,34个亚群显著(q个<0.01)ECM和相关蛋白由功能术语细胞外基质(ECM)、血小板反应蛋白、III型重复序列(TSP)、EGF样区域、保守位点(EGF)、富含亮氨酸重复序列(LRR)、多糖结合(PSB)和细胞粘附的正调节(粘附)注释。每个条目的分类用×表示。另外五种细胞外蛋白,即血小板反应蛋白-1(Thbs1)、血小板反应蛋白-4(Thbs4)、乳钙粘附素(Mfge8)、润滑素(Prg4)和基质-4(Matn4),根据其在一个或多个丰富功能术语下的分类,被包括为细胞外基质相关成分。

蛋白质名称基因名称丰富的功能术语
q个价值折叠(P21/P3)加入号码
发动机控制模块公共安全局LRR公司TSP公司表皮生长因子粘附
维特林维生素×××0.0004418Q8VHI5型
骨omodulin奥姆德××0.00059417.3O35103号机组
未表征蛋白质(软骨中间基质蛋白,亚型2)西尔普2×0.00102610.7D3Z7H8型
血小板反应蛋白4Thbs4型××0.00384110.7第61750页
螺旋结构域蛋白80(Urb)抄送80×××0.00030610问题8R2G6
未表征蛋白质(润滑素)项目4×0.002739.3E0CZ58型
SPARC公司斯巴达克×0.0005318.6P07214号
Tenascin X公司Tnxb型××××0.00500873月5452日
胶原蛋白α-1(X)链第10a1列×0.0003286.5Q05306问题
α-2-HS-糖蛋白阿什格×0.001954.9第29699页
纤维质素Fmod公司××0.000484.1第50608页
Decorin公司数字频道×××0.000443.9第28654页
半乳糖凝集素-3拉加尔3×0.0055443.8第16110页
未表征蛋白质(乳钙粘附素)制造商8×0.0001233.8E9QKW0型
胶原蛋白α-1(III)链第3a1列×0.0071153.5P08121号
软骨寡聚基质蛋白Comp公司××××0.002093.4第9季度第0季度第6季度
软骨粘连蛋白乍得××6.29E-05年2.8O55226号
纤连蛋白Fn1型×××0.0005372.8第11276页
马特里林-3材料3××0.0003232.4问题543Q2
埃米林-1埃米林1××0.0037532.4Q99K41号
血小板反应蛋白1Thbs1型×××0.0026431.8Q80YQ1期
脯氨酸精氨酸富集末端亮氨酸富集重复序列Prelp公司××0.0023471.5Q543S0问题
阿格雷坎阿坎××0.00555-1.3E9QLS9型
马特里林-4材料4×0.00048-1.9O89029号
胶原蛋白α-3(IX)链第9a3列×0.000954-2.7A2ACT7系列
淫羊藿属Epyc公司××0.001311-2.7第70186页
转化生长因子,β诱导Tgfbi公司×0.00209-2.7A1L353型
Leprecan 1号机组勒普雷1×0.003213-2.8A6PW84型
胶原蛋白α-2(IX)链第9a2列×0.000459-3.6Q07643问题
胶原蛋白α-2(V)链第5a2列×0.00901-3.8问题3U962
Tenascin公司Tnc公司××0.000185-4Q80YX1型
软骨相关蛋白Crtap公司×0.005008-5问题8C8C5
阿司匹林阿斯彭××0.009304-5.7A6H6K1
胶原蛋白α-1(IX)链第9a1列×0.000185-7.1企05722

29种差异丰富的蛋白质被归类为ECM成分(GO:0031012),包括Cilp2和Col9a3,根据人类同源物注释为ECM。

几个注释簇与粗略内质网和蛋白质分泌有关,这些细胞内蛋白质组的趋势表示为图5(A类B类). 丰富的术语“氧戊二酸和铁依赖性加氧酶”和“前胶原-脯氨酸双加氧酶活性”(分别为簇6和簇10)包括脯氨酰4-羟化酶、赖氨酰羟化酶和脯氨酸3-羟化酶酶(n个=5),参与胶原蛋白α链的翻译后修饰(31). 脯氨酰4-羟化酶β亚单位(P4hb)是一种ER蛋白二硫键异构酶,是丰富注释术语“蛋白二硫醚异构酶活性”(簇8;n个= 4). 与蛋白质生物合成相关的另一个细胞蛋白亚群被归类为“核糖核蛋白”(簇4;n个= 12). ER蛋白的最后一组是由PIR超家族“网状内皮素”分类的钙结合管腔蛋白(簇14;n个= 3). 除了网状内皮素外,与这些丰富注释簇相关的蛋白质在P3软骨中更为丰富。

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与股骨头软骨发育相关的功能群。每个数据点图中表示P3和P21软骨之间蛋白质的相对丰度,其中高于水平轴在第21页更为丰富。两个轴都是对数2转换,其中水平轴表示光谱计数和垂直轴表示光谱计数的比率。A类B类,彩色数据点代表差异丰富的蛋白质(q个<0.01)和英寸C类,这些蛋白质在丰度上没有显著差异。A类,与内质网相关的三个不同蛋白质组:氧化还原酶活性蛋白质(Lepre1、Plod2、Plod 1、P4ha1和P4ha2)突出显示为绿色填充圆,蛋白质二硫键异构酶活性蛋白质(P4hb、Pdia3、Pdia4和Pdia6)突出显示为蓝色实心圆圈和PIRSF036326:网织红蛋白(Calu、Rcn1和Rcn2)突出显示为红色填充圆圈识别的网织球蛋白家族的第四个成员(Rcn3)突出显示为打开红色圆圈。B类、核糖核蛋白(Hnrnpab、Hnrnpu、Rpl9、Rpl27a、Rps4x、Rps6、Rps8、Rpl4、Rpl6、Rpl32、Rps15和Rpl22)。C类P3和P21软骨中不存在差异丰富的管家蛋白家族:微管蛋白链Tuba1b、Tuba1a、Tubb2a、Tub2c、Tubb5和Tubb6(红色填充圆圈); 14-3-3蛋白Ywhaq、Ywhab、Ywhae、Ywhah、Ywhag和Ywhaz(蓝色填充圆); 以及t复合物伴侣蛋白亚基Cct2、Cct3、Cct4、Cct5、Cct6a、Cct7、Cct8和Tcp1(绿色填充圆).

本研究中使用的顺序提取方法根据溶解度分割软骨蛋白,例如从易溶的细胞溶质酶中分离大分子复合物(12). P3和P21发育阶段之间E0、E1和E2组分的比率发生了显著变化(图3). 因此,我们检测了三种不同的可溶性蛋白质亚群,以验证所描述的蛋白质丰度差异并不是由于蛋白质可提取性的全球变化造成的。因此,14-3-3蛋白(1NaCl-可溶性)、微管蛋白链和T复合物伴侣蛋白亚基(4GdnHCl-可溶性)没有证据表明P3和P21软骨中的丰度存在差异(图5C类).

两种软骨发育模型的Meta分析

我们最近通过比较小鼠幼年骺软骨(P3膝软骨)和3周高密度软骨细胞培养物(培养第21天新软骨),确定了软骨细胞分化的ECM成分和标记物队列(12). 然而,软骨发育体内涉及环境信号和因素,如缺少的机械负载在体外.对体内在体外因此,蛋白质组学数据集用于:(i)识别具有特定作用的潜在成分体内和(ii)确定两个过程中涉及的组件,因此适合进一步调查在体外

生成软骨成熟的等效数据集在体外,我们之前研究的MS/MS数据(12)根据小M完整的蛋白质组集,产生44960个可靠的肽谱匹配(FDR=0.43%)和839个蛋白质鉴定(补充表2B类). 除去8种污染物,P3膝关节软骨和在体外软骨细胞培养第21天新软骨提取物(q<0.01),列于补充表2B类几乎一半的蛋白质(n个=45)在股骨头软骨成熟中也有显著作用(在图6A类和中提供的详细信息补充表2C类). 作为对在体外体内蛋白质组学数据集、按功能术语“细胞外基质”、“内质网”和“核糖核蛋白”分类的蛋白质亚群以MA图表示(图6B类). 体内数据集,大多数重要的内质网成分和核糖核蛋白在体外在P3软骨中富集。此外,重要的ECM部件在上下均匀分布=0两者在体外体内

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全球评估在体外体内软骨发育模型。MA图在体外(左侧面板)和体内(右侧面板)光谱计数数据。这个在体外光谱计数数据基于P3小鼠膝骨骺软骨和新软骨培养物的蛋白质组比较(12)、和体内光谱计数数据基于P3和P21股骨头软骨。这个水平轴表示光谱计数的乘积垂直轴表示光谱计数的比率。轴是对数2转化。没有差异丰富的蛋白质绘制为灰色圆圈。A类,蛋白质丰度差异显著(q个<0.01)或在体外体内由表示开放的圆圈,两种发育系统中差异丰富的蛋白质表示为黑色圆圈。B类,蛋白质亚群在体外体内按功能术语细胞外基质分类(电解加工),内质网(急诊室)和核糖核蛋白(RIBO公司)突出显示为实心圆圈不同丰富的蛋白质表示为黑色填充圆圈

为了进一步研究新软骨形成和股骨头软骨发育之间的异同在体外提交给DAVID进行功能注释(补充表3B类). 在体外数据集与那些在体内数据集。特别是,进入最多的细胞成分是“细胞外基质”(n个= 22). 与软骨发育相关的其他ECM相关术语体内在体外包括“多糖结合”(簇4;n个=8),“血小板反应蛋白,C末端”(簇7;n个=3)和“类EGF,类型3”(簇9;n个= 7). 然而,ECM相关术语“层粘连G,血小板反应蛋白型,N末端”(簇5;n个=4),“纤维胶原”(簇6;n个=3)和“von Willebrand因子,C型”(聚类8;n个=4)特别富集在体外

这些结果表明ECM成分在两种环境下软骨发育中的基本作用,但这两个过程可能涉及不同的蛋白亚群。确定的34个重要ECM和相关蛋白体内(表I)和27个重要的在体外使用维恩图比较属于ECM的部件和上述相关GO术语。图7A类显示蛋白质的丰度显著增加在体外和/或体内、和图7B类显示蛋白质的丰度显著下降在体外和/或体内

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软骨成熟过程中细胞外基质和相关蛋白的比较在体外体内与软骨成熟相关的蛋白质在体外通过比较P3膝骨骺软骨和新软骨培养物进行鉴定。差异丰富的蛋白质(n个=102),由重要功能术语细胞外基质注释的蛋白质;多糖结合;血小板反应蛋白,C末端;EGF样,3型;层粘连蛋白G,血小板反应蛋白型,N-末端;纤维胶原;和von Willebrand因子,C型包括在体外子集。包含体内亚类是与P3和P21股骨头软骨发育相关的ECM和基质相关成分体内中完整描述的表IA类,蛋白质的维恩图增加在软骨发育过程中在体外()特别是体内()或两者兼而有之在体外体内(). 第III组中的8种蛋白质在大胆的仅在P21软骨中检测到,而在新软骨中也检测到了其余六种蛋白质,但没有显著富集。B类,蛋白质的维恩图降低在软骨发育过程中在体外()特别是体内(不及物动词)或两者兼而有之在体外体内(V(V)). 第五组包括Ucma(独特软骨基质相关蛋白),因为在这两个比较中,它在P3软骨中富集;然而,这只是统计上的显著性(q个< 0.01)在体外

软骨发育过程中增加了22种ECM成分体内(II+III组)。其中8例在软骨成熟过程中也增加在体外(第二组)。在P21股骨头软骨中富集的其余14个蛋白质(第三组)可以亚类化为在软骨成熟过程中也检测到但没有显著增加的蛋白质在体外(n个=6)和仅检测到的蛋白质体内(n个= 8). 例如,在第三组中富含亮氨酸的小重复蛋白聚糖中,软骨粘连蛋白(Chad)、纤维调节蛋白(Fmod)、脯氨酸精氨酸末端富含亮氨酸重复蛋白(Prelp)和核心蛋白(Dcn)也在新软骨培养物中检测到,而骨调节蛋白则检测到只有P21股骨头软骨。

相对于P3软骨(V+VI组),P21软骨中的12个ECM和相关蛋白显著减少,其中5个在软骨ECM成熟过程中也下调在体外(V组)。这一比较突出了四个关键的蛋白质亚群:在ECM发展过程中增加的成分在体外体内(II组)、与“不太成熟”软骨ECM(V组)相关的一般成分以及参与ECM发育特定方面的蛋白质,或者在体外(I组)或体内(第三组)。

细胞外基质成熟相关新蛋白的免疫组织化学分析

软骨细胞肥大和关节软骨发育是股骨头软骨发育的主要组织学特征(图2). 这些过程的原型标记(分别是X型胶原和润滑蛋白)是我们蛋白质组分析确定的重要蛋白质。此外,还确定了在这些过程中没有已知作用的ECM部件。因此,我们使用了一种互补的方法来验证我们的蛋白质组学数据,并进一步研究股骨头软骨中的区域特异性表达模式。三种仅在P21软骨样品中鉴定的蛋白质,因此可能与软骨发育有关体内(玻纤蛋白、tenascin X和CILP-2)和一种蛋白质,这两种蛋白的丰度都增加了在体外体内免疫组化分析Urb。在测试条件下,tenascin X抗体没有给出可靠的阳性信号;因此,仅显示Urb、cursin和CILP-2结果。

对P3软骨中的Urb、Clscn和CILP-2的分析显示,所有三种蛋白均呈细胞内免疫染色,但很少有区域特异性表达的证据(图8A类). 相反,P21软骨中的Urb、玻璃细胞和CILP-2免疫染色在不同成熟阶段的ECM和软骨细胞群中特异定位。在假定的骨化中心的区域间基质和潜在的成熟/前增生软骨细胞簇中观察到Urb的强免疫染色(图8B类)但在增殖生长板软骨基质中未检测到信号。在成熟/前增生区,Vitrin免疫染色与Urb表达重叠,但在假定的骨化中心的肥大软骨中相对较弱。在没有Urb的增殖区也观察到强烈的玻璃蛋白表达。CILP-2的免疫阳性信号比镜质和Urb更受限制,在推定骨化中心和下方生长板的边缘有一条紧密的染色带。这种模式与CILP-2在膝关节软骨钙化较深区域的局部表达一致(22).

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股骨头软骨和3周新软骨培养物中玻璃蛋白、Urb和CILP-2的免疫组织化学。 A类P3和P21股骨头软骨的矢状石蜡切片和3周软骨细胞新软骨培养物的冰冻切片用Urb、coscln和CILP-2抗体孵育。这三种蛋白质的阳性免疫定位表示为棕色的染色,组织学/核定位显示为蓝V柄苏木精反染剂。B类,展开了装箱区域在里面A类P21股骨头软骨的标记区域对应于假定骨化中心的肥大软骨(星号)成熟/前增生软骨细胞区域(打开的箭头)和增殖的软骨细胞柱(括号). 假定的骨化中心和下生长板边缘CILP-2染色最强烈的区域标记为实心三角形新软骨培养物中Urb染色最强烈的区域显示为箭头

根据我们的蛋白质组学分析,Urb在在体外体内而CILP-2和玻璃蛋白仅在P21股骨头软骨中鉴定(图7). 与这些结果一致,在软骨细胞新软骨培养物的ECM中仅检测到Urb(图8A类). 软骨细胞培养物的高倍图像显示,细胞内Urb染色和细胞周染色在增大的软骨细胞中特别强烈,最有可能发生肥大(图8B类). 这些结果支持Urb在软骨细胞肥大中的作用,而新软骨中CILP-2和玻璃纤维蛋白的缺乏表明其在培养过程中的作用无法重现。总的来说,免疫组化CILP-2、Urb和镜质体分析的结果与蛋白质组学数据密切一致,并为软骨发育中非常独特的作用提供了证据。

讨论

软骨内骨化形成骨骼元素涉及软骨细胞分化的严格调控。在小鼠中,通过对生长板软骨组织形态学定义区域的软骨细胞群进行显微切割和微阵列分析,对这种发育过程进行了“空间”研究(57). 这对蛋白质组学来说是一个具有挑战性的目标,特别是因为可从单个软骨区获得的蛋白质量非常有限。为了克服这一点,我们使用了一种基于具有高比例未成熟软骨细胞(第3天)或前增生和肥大软骨细胞(第一天)的股骨头软骨发育阶段的“暂时”方法。无标签定量质谱鉴定出703个蛋白质,其中67个在P21软骨中显著富集,79个在P3软骨中富集(q个< 0.01). P21软骨中显著丰富了软骨细胞分化(X型胶原)和关节表面发育(滑润蛋白)的原型标记,证明了我们的模型在发现软骨发育中涉及的新蛋白质和过程方面的实用性。我们的结果的意义将在下文中讨论。

P3和P21软骨提取物中丰富的重要生物过程和蛋白质功能类别概述

股骨头软骨发育中排名最高的蛋白质功能类别是细胞外基质(GO:0031012),与P21软骨中GdnHCl提取蛋白相对于NaCl提取蛋白的丰度增加一致(图3B类). 然而,P3和P21软骨蛋白质组中的重要蛋白质和蛋白质功能类别反映了一个复杂的组织和细胞成熟过程,涉及的不仅仅是ECM的生物合成。P21软骨中显著富集的蛋白质还包括细胞溶质(烯醇化酶和甘油醛-3-磷酸脱氢酶)、线粒体(肌酸激酶B)和结构(β-肌动蛋白和波形蛋白)元素(补充表2A类). 其他细胞蛋白类,如微管蛋白、t复合物伴侣亚单位和14-3-3蛋白,在P3和P21软骨细胞中以大致相等的水平强烈表达(图4C类)可以被视为在这两个阶段都履行“内务管理”职能。尽管P21软骨中细胞内内膜系统的许多居民显著减少,但内腔内质网织红蛋白家族显著逆转了这一趋势。此外,12种重要的细胞外或细胞基质成分在P3软骨中更为丰富,突显了成熟过程中ECM重塑和合成的作用。

软骨中新的细胞粘附蛋白和寿司结构域介导的相互作用证据

GO术语“细胞粘附调节”分类的四种重要蛋白质在出生后软骨发育的背景下是新的(emilin-1、tenascin X、coscin和Urb)。Urb和玻璃细胞先前由生物信息学筛选新型ECM组件并验证其促进细胞粘附和基质组装在体外(21). P3软骨中Urb的扩散免疫染色与小鼠胚胎肋骨和脊椎的观察结果一致(21,32). Urb在增生前软骨和推测的P21骨化中心内的有限表达表明,在骨形成之前,在ECM中起作用。此外,Urb的“提取特征”(易溶性和胍基可溶性P3和P21提取物之间的分布)与软骨发育期间Urb在ECM中的整合一致(数据未显示)。

Urb是寿司重复蛋白质超家族的成员。寿司结构域,也称为补体控制蛋白模块,是一个由约60个氨基酸组成的结构基序,介导蛋白质与蛋白质的相互作用。我们进一步鉴定了三种以前在软骨中没有报道过的寿司重复蛋白。纤维蛋白-7(Fbln7)是唯一具有寿司重复结构域的纤维蛋白,已在生长板和关节软骨的mRNA水平上检测到(33)而X连锁寿司重复序列包含的蛋白质(Srpx)和同源物(Srpx2)则是全新的软骨成分。我们实验室的初步研究显示,P21软骨中Srpx2的表达与Urb的表达类似(数据未显示)。鉴定这些寿司域分泌蛋白的配体将有助于阐明它们在软骨细胞附着和/或基质蛋白组装中的作用。

股骨头软骨发育过程中玻璃纤维丰度的急剧增加是意料之外的。Vitrin是一种模块化蛋白质,在C末端含有两个von Willebrand因子a结构域,构成与基质蛋白相关的非胶原a结构域蛋白的一个独立亚家族(34). 苦参素在软骨中架桥胶原蛋白和蛋白多糖大分子网络中的作用是众所周知的,而自其在牛玻璃体中发现以来,关于镜质体功能的报道很少(35). 通过免疫组织化学对玻璃细胞进行定位,发现P21生长板软骨增殖区的染色特别强,而Urb染色则不存在。同样与Urb不同的是,与相邻的肥大软骨相比,镜质体在增生前软骨细胞周围的基质中更为丰富。与这种区域特异性模式一致,生长板中从前增生性软骨细胞向肥大性软骨细胞的转变以玻璃蛋白mRNA减少10倍为标志。2这种严格调控的表达意味着在维持增殖和增生前软骨基质中ECM结构方面的潜在作用,使玻璃纤维蛋白成为人类软骨发育不良的新候选者和进一步分析的重要靶点体内

股骨头软骨体外发育与新软骨形成的相似性

我们之前对软骨细胞“新软骨”培养物中软骨基质形成的研究确定了一组ECM成分,这些成分基于与P3小鼠膝关节骨骺软骨的蛋白质溶解度差异(12). 对两个模型系统的荟萃分析显示,基质成分和细胞粘附蛋白在这两个方面都很重要在体外体内其中包括基质蛋白-3(Matn3)、COMP、血小板反应蛋白-1(Thbs1)和纤维连接蛋白(Fn1),支持这些成分在ECM网络形成和软骨组织稳定性中的基本作用(36).

软骨细胞肥大和相关的细胞外基质重塑为血管侵犯和软骨残留物骨替代创造了生态位。除了这种发育作用外,骨关节炎中关节软骨细胞的肥大还导致新生血管和骨赘的形成(37). 我们的蛋白质组学分析为股骨头软骨发育和新软骨中软骨细胞肥大提供了证据。除了X型胶原蛋白(软骨细胞晚期分化的主要标志)外,肥大软骨中鲜为人知的成分,如膜联蛋白VIII(Anxa8)、半乳糖凝集素3(Lgals3)和赖氨酰氧化酶C(Loxl4)(38)均显著增加。从P21软骨中提取的IX型胶原α1、α2和α3链的减少表明IX型胶原蛋白和X型胶原蛋白合成之间存在反向关系。表斑蛋白(Epyc)和独特的软骨基质相关蛋白(Ucma),两种已知的未成熟软骨细胞标记物(39,40)与P21软骨相比,P3软骨也富集。P3和P21软骨中这些分化标记物的相对丰度与其表达变化一致在体外,揭示了基质发育和重塑的关键相似之处在体外体内

参与股骨头软骨发育的特异性和新蛋白质

我们预计软骨发育体内将涉及与发育中关节的独特生理条件相关的特定蛋白质,这些蛋白质在软骨细胞培养中无法重现。为了支持这一假设,富含P21的ECM和基质相关蛋白中的八种表I特定于股骨头软骨发育(图6第三组),包括关节软骨浅层蛋白聚糖润滑蛋白(Prg4)。另一种仅在P21软骨中检测到的成分是CILP-2,一种最近描述的软骨中间层蛋白(CILP-1)的亚型(41). 虽然CILP-1的表达仅限于关节软骨的中层,但CILP-2在膝关节的半月板和较深的关节软骨区有差异表达(22). 在P21股骨头中,CILP-2在肥大软骨和下生长板边缘的高度定位表达带为软骨发育过程中ECM的特殊作用提供了进一步证据体内

Tenascin X仅与软骨发育相关体内以前在软骨中没有检测到。人类和小鼠的肌钙蛋白X缺乏症导致由皮肤和肌肉中异常胶原纤维生成引起的Ehlers-Danlos综合征(42,43)增加了软骨中类似功能的可能性。在发育中的心脏和骨骼肌中,tenascin X和tenascin-C的相互表达表明它们具有非冗余功能(44). 有趣的是,我们观察到tenascin X的表达与tenascin-C(早期软骨形成的标志物)之间存在类似的相互关系(45).

特别减少的基质成分体内包括转化生长因子β1(TGFβ1)调节蛋白、tenascin C、阿司匹林和TGFβ诱导的ig-h3(4648). 这些结果支持TGFβ1信号在软骨发育早期的作用体内与TGFβ1对间充质软骨细胞前体分化的积极作用一致在体外(49,50). TGFβ1信号改变与衰老和关节炎相关的软骨变性有关(51)软骨稳态和软骨细胞表型的病理变化包括软骨发育早期标志物的重新表达。在富含P3软骨的TGFβ调节蛋白中,正常成人软骨中不存在阿司匹林和tenascin C,但在骨关节炎中表达,而TGFβ诱导的ig-h3作为潜在的新生物标记物值得研究。

软骨-骨交界处终末分化软骨细胞和成骨细胞之间的蛋白质表达重叠引起了关于软骨细胞命运以及软骨细胞和造骨细胞在肥大软骨矿化中各自作用的争论(参考文献。52). 骨髓质素仅在P21股骨头软骨中检测到,因此可能是向肥大软骨中招募成骨细胞的产物。相反,培养的软骨细胞也合成了三种与P21软骨中富集的软骨基质的正常和病理矿化有关的蛋白质(碱性磷酸酶/Alpal、骨桥蛋白/Spp1和骨钙素/Sparc)(5355). 对这些成分的进一步分析在体外体内将确定它们的细胞起源,并阐明它们在晚期软骨细胞分化和肥大软骨矿化中的作用。

特异性内质网驻留蛋白和分泌蛋白运输和质量控制系统元件的调节

软骨内骨化过程中软骨ECM的发育对组织完整性和正常软骨细胞分化至关重要,我们已经确定了参与基质发育的新成分体内。除了软骨基质蛋白质组的变化(这是蛋白质积累和周转的净结果)外,我们还确定了参与基质蛋白质生物合成的ER蛋白的变化。特别是,软骨成熟伴随着翻译后修饰、折叠和组装软骨胶原蛋白所涉及的酶和分子伴侣的全部变化。

富含P3软骨的一组重要蛋白质属于铁依赖性双加氧酶,特别是脯氨酸3-羟化酶、脯氨酸4-羟化酶和赖氨酰羟化酶家族的五个成员,它们催化胶原蛋白α链的翻译后修饰。Xaa-Pro-Gly胶原蛋白三肽重复序列的脯氨酸4-羟基化对三螺旋稳定性至关重要,而Xaa-Lys-Gly的赖氨酰羟基化生成碳水化合物附着位点,稳定分子间胶原蛋白相互作用。脯氨酰4-羟化酶α亚单位亚型(P4ha1和P4ha2)、两种赖氨酰羟化酶(Plod1和Plod2)和前胶原半乳糖转移酶-1(Glt25d1)在P3软骨中的含量显著增加。胶原蛋白三螺旋形成所必需的进一步修饰是顺-反式肽基脯氨酰键的异构化。在我们的研究中,两种ER相关的肽基脯氨酰顺-反式异构酶Fkbp10和Ppib在P3软骨细胞中的含量显著增加,而细胞溶质酶Ppia和Ppic的水平保持不变。

脯氨酸3-羟基化是胶原蛋白α链的一种高度特异性修饰,除了可能的结构作用外,似乎还可以调节从内质网正确折叠的前胶原的转运(56). 脯氨酸3-羟化酶1(Lepre1)与Ppib和软骨相关蛋白(Crtap)结合形成一种伴侣复合物,对胶原蛋白分泌的质量控制至关重要。这些亚单位中任何一个的突变都会导致小鼠的严重骨、肌腱和皮肤表型以及人类的成骨不全(57,58). 令人惊讶的是,所有三种成分在P3软骨中都更为丰富,这表明该复合体在软骨胶原蛋白的组装和分泌中具有重要的发育作用。另一个参与胶原蛋白特异性质量控制的ER伴侣Hsp47(Serpinh1)最近也与成骨不全有关(59). 在P3和P21软骨细胞中检测到高水平的Hsp47,尽管在P21时减少了1.3倍,这表明在软骨细胞成熟过程中需要Hsp47。虽然软骨ECM的发展以某些胶原亚型水平的增加为标志(例如胶原蛋白X)和其他成分减少(例如胶原蛋白IX),我们的结果表明,在软骨成熟的早期阶段,胶原蛋白的生物合成是最高的。

软骨细胞分泌功能的变化还表现为蛋白二硫键异构酶(P4hb)、Pdia3、Pdia4和Pdia6水平的降低,表明晚期软骨细胞内质网中二硫键蛋白的折叠和组装能力降低。Pdia4(ERp72)的伴侣活性特别令人感兴趣,因为ERp72与致病COMP和基质蛋白-3突变体形成稳定的复合物。这些复合体在扩张的内质网池中的积聚是多发性骨骺发育不良和假性软骨发育不全的标志(6062)由此产生的内质网应激影响生长板中正常软骨细胞的分化和组织(6365). 肥大软骨细胞中X型胶原错误折叠引起的内质网应激也有助于Schmid型干骺端软骨发育不良的病理学改变(66,67)但具体ER伴侣的作用尚不清楚。尽管ERp72在P21处显著降低,但在P3和P21软骨中检测到未折叠蛋白反应BiP(Hspa5)的主调节因子水平大致相同。内质网伴侣在软骨细胞寿命期间的变化,以及内质网应激的潜在机制,可能会改变不同致病突变对软骨细胞功能的影响。

软骨细胞分化过程中ER功能改变的进一步生化证据反映在网状钙蛋白Rcn1、Rcn2和Calu的P21软骨显著增加(参考文献。68). 网状内皮素被认为根据内质网滞留基序和多个EF手结构域调节内质网和分泌途径中的钙依赖性功能。然而,它们在软骨细胞中的作用目前尚不清楚。总之,我们的结果揭示了与胶原蛋白生物合成相关的分泌途径元件的下调,但网织红细胞生成素的显著增加。据报道,钙的胞浆浓度随着软骨细胞的成熟而增加(69). 在软骨发育过程中,网织钙蛋白是否能改变内质网管腔钙的生物利用度是未来研究的目标。

我们方法的优点和未来展望

软骨内骨化是一个复杂且基本重要的发育过程,很难研究在体外由于软骨细胞表型和组织结构的相互依赖性。使用股骨头软骨在其生理背景下研究这一过程既是一种优势,也是一种限制,因为复杂性增加了。然而,综合分析在体外体内蛋白质组数据集使我们能够发现新的成分,更详细地描述这两个发育系统,并为进一步分析确定目标。Urb的表达和观察到的分布支持其在软骨细胞肥大中的作用在体外体内而免疫组化和蛋白质组学数据表明,玻璃细胞和CILP-2在软骨发育中具有更特殊的作用体内在敲除小鼠和人类骨骼发育不良模型的软骨中使用此方法将使蛋白质组学水平的研究能够研究特定软骨成分的作用以及致病突变对骨骼发育的影响体内

致谢

我们感谢Anders Diseberg通过串联质谱分析软骨蛋白提取物。

脚注

*这项工作得到了澳大利亚国家卫生和医学研究委员会419237号拨款和德意志基金会BR2304/5-1、BR2304/7-1和SFB 829-B6号拨款的支持。该项目还得到了维多利亚州政府运营基础设施支持计划的支持,并利用澳大利亚政府通过国家合作研究基础设施战略和澳大利亚生物平台提供的基础设施进行实施。这篇文章的出版费用部分由页面费支付。因此,必须在此标记“广告“根据《美国法典》第18卷第1734节,仅为了表明这一事实。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为sbox.jpg本文包含补充表1-3

2D.Belloccio和J.F.Bateman,未发表的观察结果。

1使用的缩写如下:

发动机控制模块
细胞外基质
长期有效期
线性陷阱四极
财务总监
错误发现率
盐酸胍
盐酸胍
戴维
注释、可视化和集成发现数据库
GO(开始)
基因本体论
P(P)n个
产后日n个
急诊室
内质网
压缩机
软骨寡聚基质蛋白
TGF公司
转化生长因子。

参考文献

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文章来自分子和细胞蛋白质组学:MCP由以下人员提供美国生物化学和分子生物学学会