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《实验医学杂志》。2000年11月6日;192(9): 1261–1272.
doi(操作界面):2014年10月10日/星期192.9.1261
预防性维修识别码:PMC2193360型
PMID:11067875

嗜肺军团菌复制液泡成熟为酸性内分泌器官

摘要

巨噬细胞摄入后,嗜肺军团菌抑制其吞噬体的酸化和成熟。经过6-10小时的延迟期后,细菌会复制10-14小时,直到巨噬细胞溶解释放出数十个后代。检查细胞内的生长期L(左).嗜肺菌决定其吞噬体命运的是,在整个初次感染期间分析了内胚体网络和病原体液泡之间的相互作用。令人惊讶的是L(左).嗜肺菌大量液泡以指数方式复制,获得溶酶体特征。到18小时,70%含有溶酶体相关膜蛋白1(LAMP-1),40%含有组织蛋白酶D;50%的液泡可被内吞标记,该液泡群体的pH值平均为5.6。此外,L(左).嗜肺菌似乎在溶酶体隔室中存活和复制:含有5种以上细菌的液泡也含有LAMP-1,巴非霉素A1对液泡酸化和成熟的抑制抑制了细菌的复制,内胚液泡中的细菌通过表达绿色荧光粉报告基因和从巨噬细胞而非肉汤中获得的复制细菌具有耐酸性。了解如何L(左).嗜肺菌首先回避然后利用内体途径在巨噬细胞内复制可能揭示了吞噬体成熟的机制,这个过程也受分枝杆菌属,利什曼原虫、和柯克西拉菌.

关键词:发病机制、自噬、吞噬体、溶酶体、巨噬细胞

介绍

吸入后,革兰氏阴性杆菌嗜肺军团菌可以在肺泡巨噬细胞内复制,并在免疫功能低下的人群中引起严重肺炎。储液罐L(左).嗜肺菌似乎是淡水变形虫,它也吞噬但不消化这种机会病原体。因此,L(左).嗜肺菌克服专业吞噬细胞强大的抗菌活性,建立一个细胞内生态位,提供充足的营养,免受环境压力的影响,并免于与其他微生物竞争。

法戈索姆窝藏L(左).嗜肺菌有几个独特的特点。通过卷曲吞噬作用内化后1,细菌在既不酸化也不与溶酶体融合的吞噬体中生存至少8小时2 4 5 6 7相反,到4小时时,内质网将液泡包裹起来,这一过程类似于自噬 8。经过6-10小时的滞后阶段后,细菌复制开始。到24小时L(左).嗜肺菌增加了50-100倍,吞噬细胞明显溶解 9 10.需要的几个因素L(左).嗜肺性发现了建立其保护性液泡11但他们的行动方式仍然难以捉摸。

肉汤培养L(左).嗜肺菌根据生长条件协调表达几种毒力性状12当氨基酸受到限制时,第二信使ppGpp积累并触发可能促进细菌向另一吞噬细胞传播的性状的表达13相应地,指数后相(PE)L(左).嗜肺菌能够逃避吞噬体与溶酶体的融合,而90%的指数期(E)细菌在巨噬细胞溶酶体中被迅速破坏。是否L(左).嗜肺菌此外,由于很少有研究分析了8小时以上的吞噬体,因此还没有确定巨噬细胞在生长过程中下调逃避溶酶体的能力。

细胞内病原体的生长阶段会影响吞噬体的成熟。传染性的利什曼原虫前鞭毛虫逃避吞噬体-溶酶体融合14但是,随着吞噬体转化为可复制的无鞭毛虫,吞噬体与溶酶体融合,原生动物在溶酶体中进行复制15 16 17类似地,休眠的小细胞变体形式贝氏柯克斯体延迟吞噬体成熟18; 随后,其大细胞变异形式在吞噬体内复制19 20 21因此,我们检验了以下假设:L(左).嗜肺菌决定了液泡的命运。

材料和方法

细菌培养。

L(左).嗜肺菌Lp02,一种来源于费城菌株1的胸腺嘧啶营养缺陷型22,培养于N个-(2-乙酰氨基)-2-氨基乙磺酸(ACES;Sigma-Aldrich)缓冲酵母抽提液肉汤,含有135μg/ml硝酸铁,400μg/ml-半胱氨酸和100μg/ml胸苷(AYET)。巨噬细胞被感染L(左).嗜肺菌培养至PE,通过OD 3.3–4.0的600 nm吸光度和>20%的细胞运动测定;E培养基的OD为0.8–1.2,不可移动12吞噬体-溶酶体成熟试验的阳性对照为PEL(左).嗜肺菌在80°C下培养20分钟,可降低99.9%的存活率和PE大肠杆菌菌株DH5α在Luria-Bertani肉汤中培养并用5(6)-羧基荧光素标记-N个-用于pH值测定的羟基琥珀酰胺酯(NHS-羧基荧光素;罗氏)。对于某些分析,标记为E类.大肠杆菌在2.5%甲醛/PBS中固定0.5小时,并用PBS洗涤三次。

巨噬细胞培养。

如前所述,准备A/J小鼠(杰克逊实验室)骨髓衍生巨噬细胞培养物8.

显微镜。

2.0 × 105每个12毫米玻璃盖玻片的巨噬细胞在37°C下感染1小时L(左).嗜肺菌在含有10%热灭活FCS(RPMI/FCS)的RPMI 1640中,感染倍数(MOI)为0.5,在培养基中洗涤三次,然后培养至含有100μg/ml胸腺嘧啶核苷的RPMI/FCC中所示的时间。为了分析内吞体酸化的作用,巨噬细胞被感染1小时L(左).嗜肺菌,在RPMI/FCS中洗涤三次,然后在含有25 nM巴非霉素A1(BFA;Calbiochem)的培养基中培养指定时间。细胞在含有5%蔗糖的周期性赖氨酸-甲醛中固定0.5小时8,在含有5%蔗糖的PBS中清洗一次,然后用每毫升PBS中1 mg Zwittergent(Roche)渗透1分钟。为了减少抗体的非特异性结合,使用含有5%蔗糖和2%山羊血清的PBS预培养细胞并进行抗体稀释,如下所示:兔抗–L(左).嗜肺菌(马萨诸塞州波士顿霍华德·休斯医学院和塔夫茨大学医学院拉尔夫·伊斯伯格博士赠送的礼物),1:1000;大鼠抗溶酶体相关膜蛋白1(LAMP-1)(1D4B;发育杂交瘤库),1:100;兔抗组织蛋白酶D(日本山梨医科大学横田佐木博士赠送),1:100;兔抗胰蛋白酶D23, 1:20; 和大鼠抗BiP(密歇根州安阿伯市密歇根大学David Bole赠送),1:200;所有荧光二级抗体(分子探针)稀释为1:2000。将细胞与抗体在37°C下孵育1小时,然后在含有5%蔗糖的PBS中洗涤三次。L(左).嗜肺菌被抗-L(左).嗜肺性抗体或0.1μM的核酸染料4′,6′-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI;分子探针)。

使用配备100×Plan-Neofluar物镜、数值孔径1.3、过滤器487901、487910和487900的蔡司Axioplan 2表观荧光显微镜分析样品。50个液泡含有L(左).嗜肺菌每个盖玻片都有记分,每个细胞的液泡数不超过三个。当管腔内检测到荧光时,液泡的可溶性标记物为阳性。对于膜标记物,只有在液泡周围观察到完整的荧光环时,液泡才被定义为阳性;这个严格的标准可能低估了含有LAMP-1的液泡的比例。由于每个液泡中超过20个细菌无法准确计数,因此得分为>20。然而,它们的大小表明成熟的液泡能容纳50多个细菌。

获取胞内物质。

为了荧光标记溶酶体,巨噬细胞与100μg德克萨斯红卵清蛋白(TR-OV)或德克萨斯红右旋糖酐(TR-DEX)培养0.5小时,每毫升RPMI/FCS 10 kD(分子探针),清洗,在未标记培养基中培养0.5小时后感染L(左).嗜肺菌MOI为0.5。对于脉冲追踪实验,感染巨噬细胞与250μg/ml TR-OV孵育15分钟,未标记RPMI/FCS孵育5–120分钟,然后固定、渗透、DAPI染色,并如上所述进行评分。

pH值测量。

为了测定6小时以下吞噬体的pH值,首先用比例荧光团对细菌进行表面标记。要么L(左).嗜肺菌E类.大肠杆菌在PBS中清洗一次,用1mg NHS-羧基荧光素/ml PBS(pH 8)标记,在4°C下持续0.5 h,然后在RPMI/FCS中清洗三次。培养在25毫米盖玻片上的巨噬细胞感染了L(左).嗜肺菌在MOI为0.5且E类.大肠杆菌MOI为2时,持续1-2小时。根据菌落形成情况,表面标记不会影响细菌的生存能力,只会受到轻微影响L(左).嗜肺菌贩运:感染后2小时,平均有20%的标记细菌与溶酶体融合,而对照细菌只有10%。

还测量了可通过内胚体途径进入的病原体液泡的pH值。巨噬细胞被感染L(左).嗜肺菌在0.5的MOI下培养1小时,清洗,然后培养指定的时间。在每个终点前2 h,巨噬细胞用荧光素葡聚糖,10 kD(分子探针)以200μg/ml孵育0.5 h,然后在未标记的RPMI/FCS中孵育1.5 h。为了测试巨噬细胞质子ATP酶活性是否影响空泡pH值,在终点前用1μM BFA处理巨噬细胞1小时。为了标记细胞内细菌,在终点之前将DAPI添加到0.3μM中30–45分钟。DAPI不影响空泡pH值:含有L(左).嗜肺性荧光素标记的表面与荧光素和DAPI标记细菌的pH值相似。

真空pH值是通过Tsang等人的方法测量的。24使用Metamorph软件(Universal Imaging Corp.)。用37°C Ringers缓冲液(155 mM NaCl、5 mM KCl、2 mM CaCl)清洗感染的巨噬细胞两次2,1 mM氯化镁2,2 mM NaH2人事军官410 mM Hepes和10 mM葡萄糖,pH值7.2),安装在37°C的盖玻片支架上,并在带有Quantix Photometrics相机(普林斯顿仪器公司)的尼康日食TE300显微镜上进行可视化。含有L(左).嗜肺菌在405-nm激发(450-nm发射)下通过DAPI荧光进行鉴定,然后在440-和485-nm激发下收集获得右旋糖酐的病原体液泡图像(520-nm辐射)。屏蔽DAPI图像以定义细菌像素区域,并记录440 nm和485 nm图像中相应像素的平均灰度区域。每个液泡的pH值计算为485-nm强度(pH敏感)与440-nm强度(pH不敏感)的比值。按照Beauregard等人的描述,使用经黑精和等渗钾缓冲液处理的细胞,对每个实验中的单个荧光粒子进行原位校准。25年轻吞噬体通过掩蔽440-nm图像进行分析,然后按上述方法计算比率。作为对照,如上所述用荧光素右旋糖酐标记未感染巨噬细胞的溶酶体,掩盖440-nm图像,然后如上所述计算现场所有囊泡的比率。

细胞内嗜肺L.的存活率。

构建质粒pMMB-GRN,通过L(左).嗜肺菌可由异丙基硫代-β诱导-d日-吡喃半乳糖苷(IPTG;Sigma)。pGFPmut3的SmaI–HindIII片段26编码GFP的基因与P连接3′战术通信pMMB-Gent的启动子,赋予庆大霉素耐药性13.消除其对L(左).嗜肺菌复制27,mobA公司暴徒B通过用AgeI消化pMMB-GRN,然后进行分子内连接来删除。pMMB-GRN转移至L(左).嗜肺菌通过电穿孔和在含有10μg/ml庆大霉素的CYET板上进行选择。肉汤培养物分析表明,在IPTG处理4小时或大约两个世代后,可以检测到GFP的表达(数据未显示)。

为了评估GFP的表达,感染的巨噬细胞在2 mM IPTG中培养1.5小时,在TR-OV和IPTG内培养0.5小时,然后在含有IPTG的未标记RPMI/FCS中培养2小时。固定和DAPI染色后,对空泡内的TR-OV和GFP荧光进行评分。或者,巨噬细胞感染1 h,清洗,再培养13–17 h,用2 mM IPTG处理4 h,然后按照上述方法对其LAMP-1进行染色。

细胞内生长。

10548个组织培养皿的每孔巨噬细胞感染1小时L(左).嗜肺性MOI为0.5,用RPMI/FCS清洗三次,然后在含有或不含25 nM BFA(Calbiochem)的培养基中培养指定时间。为了量化每个孔的CFU,收集培养上清液,在含有0.05%皂苷(PBS/皂苷)的冷冻PBS中研磨单层,然后在CYET琼脂上培养4份10倍稀释液的等分上清液和裂解液3-4天。

用50或500 nM BFA处理24小时对L(左).嗜肺菌根据其未能抑制细菌复制、运动或毒性来判断(数据未显示)。为了确保巨噬细胞是活的,并且其内吞网络不会被BFA不可逆转地改变,在感染前用25 nM BFA处理吞噬细胞24小时,在无药物的培养基中培养0.5小时,然后让吞噬细胞每毫升RPMI/FCS内吞100μg TR-OV 0.5小时。巨噬细胞吞噬后L(左).嗜肺菌,如上所述,定量每个孔的CFU和细菌液泡中内吞探针的积累。几乎100%的吞噬细胞内吞TR-OV,但在L(左).嗜肺菌观察摄取情况。然而,细胞内L(左).嗜肺菌复制过程与未经处理的巨噬细胞相同,特征是在感染后期与内吞网络融合,24小时内CFU增加10-20倍(数据未显示)。

要确定每个液泡中的细菌密度(参见图4),巨噬细胞感染1 h,然后在指定的时间内用或不用25 mM BFA孵育。固定后,如上所述对与LAMP-1共定位和每个液泡的细菌数量进行评分。

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含有LAMP-1(黑条)或缺乏LAMP-1的液泡中的细菌密度(白条)。(A) 固定并处理指定时期感染的巨噬细胞,以进行LAMP-1和L(左).嗜肺菌在指定的时间,对液泡中LAMP-1的存在和细菌数量进行评分。由于不可能在一个隔间中准确计数>20个细菌,因此评分>20。(B) 感染1小时后,用质子ATP酶抑制剂BFA处理巨噬细胞,培养指定时间,然后如上所述进行处理。在三个独立实验中的每一个实验中,在指定的时间对每种情况下的50个液泡进行了分析。为A分析的液泡数量与图1B类;分析B的液泡数量与图7.

耐酸性。

1.5 × 1066孔组织培养皿每孔的巨噬细胞感染1小时L(左).嗜肺菌在0.5的MOI下,用RPMI/FCS洗涤三次,然后培养2–17小时。用300μl PBS/皂苷(用HCl调节至pH 6.9或5.0)对巨噬细胞进行裂解,然后用pH 6.9和5.0的AYET将裂解液体积增加至1.5 ml。并行,E或PEL(左).嗜肺菌pH 6.9 AYE中的培养物稀释至2×106每毫升pH为6.9或5.0的AYET中含有300μl PBS/皂苷或1.5×10制备的裂解物的细胞6未感染的巨噬细胞。在37°C下在旋转轮上培养1–4小时后,将每份样品的四份10倍稀释液的等分样品在CYET上培养3–4天。生存率计算为(CFU/ml AYET,pH 5.0)/(CFU/ml AYET(pH 6.9)×100。

结果

成熟嗜肺乳杆菌液泡与溶酶体室相互作用。

确定是否成熟L(左).嗜肺菌液泡具有晚期内体和溶酶体的特征,感染的巨噬细胞在用LAMP-1或组织蛋白酶D蛋白特异性抗体标记后通过荧光显微镜进行分析,这是吞噬溶酶体发育晚期的两个标志28 29 30或可溶性荧光内体示踪剂。

不出所料,很少有人提早L(左).嗜肺菌液泡获得晚期内体和溶酶体蛋白LAMP-1(6 7;图1a图b). 然而,到16小时时,70%的液泡含有这种糖蛋白。LAMP-1–特异性荧光与L(左).嗜肺菌液泡,表明要么位于液泡膜内,要么小水泡与液泡膜并列。在许多细胞中,溶酶体在细菌液泡周围融合(24小时;图1A) ●●●●。

通过L(左).嗜肺菌液泡。巨噬细胞感染L(左).嗜肺菌用LAMP-1或组织蛋白酶D特异性抗体标记所示周期,然后用DAPI染色。(A) 8小时后,L(左).嗜肺菌液泡很少与LAMP-1或组织蛋白酶D(黑色箭头)共定位;16小时后,许多L(左).嗜肺菌液泡被LAMP-1包围,含有组织蛋白酶D(白色箭头)。百分比L(左).嗜肺菌在三个单独的实验中对所示时间含有LAMP-1(B)或组织蛋白酶D(C)的液泡进行评分,每个实验用不同的符号(圆圈、正方形或菱形)表示。

溶酶体蛋白酶组织蛋白酶D也在成熟时积累L(左).嗜肺菌液泡。感染早期,<20%L(左).嗜肺菌如前所述,吞噬体中含有这种酶5; 到16小时,40%或更多的液泡这样做(图1a图c). 正如所料,这种可溶性酶似乎位于L(左).嗜肺性液泡。相反,组织蛋白酶D的形式,通过生物合成途径传递到早期内体31 32,在成熟期内未检测到L(左).嗜肺菌液泡(数据未显示)。

当溶酶体预先标记有可溶性荧光示踪剂TR-OV或TR-DEX的巨噬细胞感染L(左).嗜肺菌感染后5小时内,<20%的液泡含有荧光探针;然而,到18–20小时时,至少50%的人已经与溶酶体融合(图2).

液相溶酶体标记的获取L(左).嗜肺菌液泡。溶酶体被TR-OV或TR-DEX内吞预先标记的巨噬细胞被感染L(左).嗜肺菌在指定的时间段内,固定,用DAPI培养以标记细菌,然后进行显微镜分析。(A) 在8小时时,从内吞网络中分离出细菌液泡(黑色箭头);到了16小时,许多空泡的管腔里都有L(左).嗜肺菌包含一个荧光探针(白色箭头)。24小时面板显示了两个单独的液泡,其中充满了细菌;左边的那个明显融合了(白色箭头),而右边的液泡积累的TR-OV低于检测极限(黑色箭头)。(B) 在四个单独的实验中,荧光显微镜对所示时间含有TR-OV(填充符号)或TR-DEX(开放符号)的50个液泡的百分比进行了评分,每个液泡用不同的符号(钻石或方块)表示。

其次,可访问性L(左).嗜肺菌评估空泡对内吞途径的影响。摄入甲醛的巨噬细胞E类.大肠杆菌或者活着L(左).嗜肺菌将TR-OV吞噬15分钟,然后将细胞在新鲜培养基中再培养5、30或120分钟。正如预期的那样,120分钟后,约80%的吞噬体含有E类.大肠杆菌积累了液相探针,而<20%的新生L(左).嗜肺菌液泡做到了这一点(图3). 相反,50%的成熟病原液泡含有TR-OV。

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可访问性L(左).嗜肺菌液泡到内吞探针。与甲醛混合培养的巨噬细胞E类.大肠杆菌持续1小时或L(左).嗜肺菌(Lp)在所示时间段内与TR-OV孵育15分钟,然后在新鲜培养基中再孵育5、30或120分钟。固定和DAPI染色后,对盲样进行累积可检测TR-OV的空泡百分比评分。每个条形代表三个独立实验的累积结果,每个条件下有50个液泡得分。

尽管有很大一部分成熟复制液泡积累了可检测到的LAMP-1、组织蛋白酶D和内胚体示踪剂TR-OV和TR-DEX的数量,但并非所有液泡都积累了这些数量。然而,两个技术限制阻碍了成熟复制液膜的分析。首先,由于空泡只有在积累了可见数量的标记物后才能被评分为阳性,因此无法检测到与内体通路的最早相互作用。第二,通过相位显微镜观察活培养物,很明显,含有大复制空泡的巨噬细胞呈圆形,许多已从盖玻片上脱落。由于这些细胞群在免疫荧光染色过程中会被冲走,因此在我们的数据集中,成熟的复制液泡可能没有得到充分的代表。事实上,当巨噬细胞在组织培养级盖玻片(编号:12-545-82;Fisher Scientific)上培养时,61%的成熟复制液泡含有可检测的TR-OV(三个实验中每个实验都有50个液泡得分)。综上所述,相当一部分细菌吞噬体中明显缺乏凝血酶原D和LAMP-1、组织蛋白酶D以及胞内示踪剂TR-OV和TR-DEX,表明随着年龄的增长,L(左).嗜肺菌液泡与溶酶体室融合。

嗜肺乳杆菌液泡是酸性的。

要评估L(左).嗜肺菌通过一种独立的方法进行吞噬体成熟,我们将其pH值与传统吞噬溶酶体的pH值进行了比较。与Horwitz和Maxfield的结果类似2,含有NHS-羧基荧光素活性的3-6小时吞噬体-标记L(左).嗜肺菌保持中性pH值(平均pH值7.4),而液泡具有类似的标记E类.大肠杆菌或热处理L(左).嗜肺菌酸性pH值分别为5.5和5.6(). 其次,成熟的pH值L(左).嗜肺菌测量与内体通路融合的空泡。为此,感染的巨噬细胞被允许内吞荧光素-dextran,这一过程标记了近50%的成熟巨噬细胞L(左).嗜肺菌液泡(图2); 剩余的细菌液泡无法评估。在感染后16至20小时,大多数荧光素提取物L(左).嗜肺菌液泡呈酸性,平均pH值为~5.6,与未感染巨噬细胞溶酶体小泡的pH值相当().

表1

年轻和成熟液泡的pH值

条件年龄n个酸碱度错误
含有NHS羧基荧光素标记颗粒的噬菌体现场大肠杆菌 45–75分钟175.60.32
现场嗜肺军团菌 3-6小时567.40.9
高温致死嗜肺军团菌 2-4小时415.50.3
含荧光素右旋糖酐的液泡嗜肺军团菌16–22小时645.60.8
嗜肺军团菌+ 1μM博鳌亚洲论坛 17–20小时227.30.8
巨噬细胞囊泡2小时3005.50.3
巨噬细胞囊泡+1μM BFA2小时907.60.59

溶酶体被质子ATP酶酸化33.确定是否酸化成熟L(左).嗜肺菌空泡需要质子ATP酶,感染的巨噬细胞被一种特定的活性抑制剂BFA孵育34.经过1小时的处理,成熟L(左).嗜肺性液泡的pH值为~7.3;同样,BFA处理后,未感染巨噬细胞中溶酶体小泡的pH值为7.4(). 因此,巨噬细胞质子ATP酶活性是酸化成熟细胞所必需的L(左).嗜肺菌液泡。

嗜肺乳酸杆菌在内生、酸性液泡中的存活和复制。

观察发现,成熟的L(左).嗜肺菌液泡酸化,积聚内吞探针,并含有LAMP-1和组织蛋白酶D,强烈提示L(左).嗜肺菌在细胞内复制期间被输送到溶酶体室。因此L(左).嗜肺菌用四种方法评估溶酶体内液泡。

首先,在感染后8、16和24小时,根据LAMP-1的存在判断,比较每个非内体空泡和每个内体空穴中的细菌数量。含有5种以上细菌的大多数液泡为LAMP-1阳性,并且这些内体液泡内的细菌密度随着时间的推移而增加(图4A) ●●●●。相比之下,缺乏LAMP-1的液泡通常含有不到五种细菌。少数液泡含有超过20种细菌,但缺乏可检测的LAMP-1,这表明细菌复制可能先于内体标记物的积累。我们还观察到,即使在感染后16和24小时,大约一半的细菌液泡中含有少于五种细菌。虽然巨噬细胞被PE肉汤培养物感染,但细胞内细菌复制并不同步(图4); 因此,这个液泡群可能代表了PE细菌在初次感染和二次感染期间从未复制的细胞。此外,因为含有大复制液泡的细胞从盖玻片上脱落,含有含1到5个细菌的液泡的感染巨噬细胞的实际比例可能小于计算值。因此,对单个吞噬体进行微观分析(图4A) 表明与内涵体网络的相互作用没有抑制并且可能促进,L(左).嗜肺菌复制。

接下来,中和巨噬细胞内体途径对L(左).嗜肺性对生长情况进行了检查。从感染的8小时到24小时L(左).嗜肺菌在巨噬细胞培养中增加了~20倍(图5). 然而,在巨噬细胞内体网络被BFA中和的情况下L(左).嗜肺菌只增加了两倍。对每个液泡中细菌的计数证实并扩展了这些结果。感染24小时后未经处理的巨噬细胞中,26%的L(左).嗜肺菌液泡中含有11个以上的细菌(图4A) ●●●●。相比之下,在BFA处理的巨噬细胞中,只有8%的液泡含有>11种细菌(图4B) ●●●●。值得注意的是,内体室的中和作用并没有阻止细菌在单细胞阶段的复制。显然,酸性内体网络不是细菌复制启动的先决条件,但巨噬细胞质子ATP酶活性确实促进了细菌的细胞内生长L(左).嗜肺菌.

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抑制L(左).嗜肺菌质子ATP酶抑制剂BFA在巨噬细胞中的生长。感染的巨噬细胞与25 nM BFA(开环)或不含药物(填充方格)孵育,并在指定时间测定CFU的产量。所示为从四个单独的实验中计算得出的平均值和SE值,每个实验均进行三次。

伴随其抑制L(左).嗜肺菌此外,BFA还能延缓病原液泡对晚期内体和溶酶体蛋白质的获取。在未经处理的巨噬细胞中,50%或更多的成熟巨噬细胞L(左).嗜肺菌液泡含有LAMP-1和累积的TR-OV(图2)而在BFA治疗后,只有~20%的成熟液泡这样做(图6).

抑制L(左).嗜肺菌BFA诱导液泡成熟。巨噬细胞溶酶体标记有LAMP-1特异性抗体或TR-OV的内吞作用。感染后1小时,在实验期间向培养基中添加25 nM BFA(开放符号)或不添加(填充符号)。(A) 在BFA的见证下,L(左).嗜肺菌液泡未能与内吞网络(黑色箭头)融合,每个液泡通常含有<15种细菌。在三个单独的实验中,在原发感染过程中,通过荧光显微镜对与(B)LAMP-1或(C)TR-OV共定位的50个液泡的百分比进行评分,每个符号由不同的符号(圆形、正方形或菱形)表示。

尽管病原体液泡与内吞途径的相互作用似乎对pH敏感,但其与内质网的联系并不敏感。在对照培养基中,感染后6小时,54%的L(左).嗜肺菌根据BiP的免疫荧光显微镜定位判断,液泡被内质网包裹(n个在三个实验[8]中的每个实验中=50)。同样,当感染的巨噬细胞用BFA处理时,58%的病原体空泡与BiP共定位(n个=三个实验中每个实验50)。此外L(左).嗜肺菌感染后24小时的CFU与感染前6-8小时是否用BFA处理培养物相似(数据未显示)。因此L(左).嗜肺菌生命周期发生在自噬体样空泡形成后。

几项对照实验的结果表明,BFA不影响细菌或巨噬细胞的活性。首先L(左).嗜肺菌甚至500 nM BFA也没有抑制肉汤中的蛋白质(数据未显示)。其次,BFA治疗并没有永久性地中断内体交通。当巨噬细胞在感染前而不是感染期间用BFA治疗24小时时L(左).嗜肺菌,预处理细胞和未处理细胞之间的液泡成熟度或CFU产量没有差异(数据未显示)。第三,用25μM氯喹或25 mM氯化铵中和细胞的酸性隔室,包括吞噬体35 36也被抑制L(左).嗜肺菌复制,尽管程度低于BFA(数据未显示)。因此,L(左).嗜肺菌巨噬细胞内生长最快,其内体室呈酸性,能够与细菌液泡融合。

第三,评估L(左).嗜肺菌巨噬细胞位于内吞空泡内,感染了一株可由IPTG诱导GFP表达的菌株。16小时后,>60%的复制液泡与内体通路合并(图1),巨噬细胞与IPTG和TR-OV孵育4h,然后显微镜下分析溶酶体空泡内细菌表达GFP的能力。大约70%的病原液泡含有表达GFP的细菌,无论液泡是否积聚了LAMP-1或TR-OV(图7). 因此,L(左).嗜肺菌似乎在溶酶体液泡中存活。

表2

细菌在内涵体和非内涵体液泡中表达GFP的比较

体内标志物GFP公司 GFP公司+ 液泡总数绿色荧光蛋白百分比+
n个n个n个%
LAMP-1负极28669470
LAMP-1阳性4611115771
TR-OV负极7518726271
TR-OV正极5511817368

感染后16小时嗜肺军团菌携带pMMB-GRN的巨噬细胞用IPTG和TR-OV(如有指示)培养4h,然后用荧光显微镜分析细菌、GFP和LAMP-1或TR-OV的共定位,如材料和方法所述。

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内吞液泡内细菌表达GFP。巨噬细胞感染16小时L(左).嗜肺菌携带pMMB-GRN的细胞与IPTG孵育诱导GFP表达,与TR-OV孵育标记溶酶体。通过DAPI染色鉴定细胞内细菌,并对溶酶体探针的共定位和GFP的表达进行评分。(A) 大多数溶酶体病原体液泡携带表达GFPL(左).嗜肺菌,(B)而少数内体空泡含有仅显示DAPI荧光的细菌。

最后,预测L(左).嗜肺菌对巨噬细胞内的复制进行了耐酸性测试。巨噬细胞感染L(左).嗜肺菌将细菌溶解3、12或18小时,然后将其转移到pH 6.9(标准pH值)或pH 5.0的肉汤中,以模拟溶酶体室(). 同时,E和PE肉汤培养物在pH 6.9或5.0的AYET中培养。这是许多细菌的典型特征37、PEL(左).嗜肺菌耐酸,而酸处理使大肠杆菌的CFU减少了1000倍L(左).嗜肺菌(图8). 与此形成鲜明对比的是,从巨噬细胞中获得的复制细菌的类似治疗使CFU减少了不到五倍。巨噬细胞裂解物不会诱导小鼠的耐酸性L(左).嗜肺菌,作为E的肉汤培养物L(左).嗜肺菌用未受感染的巨噬细胞制备的裂解物孵育,不受pH5.0应激的保护(数据未显示)。预测L(左).嗜肺菌在感染后12和18小时复制(图1,图2,图4、和图5)通过将巨噬细胞裂解物的平行样品在AYET(pH 6.9)中孵育3小时后观察到的CFU增加两倍来证实,这一时间对应于不到2L(左).嗜肺菌加倍(数据未显示)。因此,与我们的观察一致,成熟细菌复制液泡的很大一部分pH值为5.6(),巨噬细胞的吞噬体环境似乎诱导L(左).嗜肺菌耐酸性。

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耐酸性L(左).嗜肺性从巨噬细胞中分离出来。巨噬细胞感染L(左).嗜肺菌裂解3、12或18h,将细菌转移到pH值为5.0或6.9的肉汤中。并行,E或PEL(左).嗜肺菌将pH值为6.9的肉汤稀释成pH值为5.0或6.9的肉汤。4小时后,将样品置于CYET上以量化CFU。存活率计算为(AYET的CFU/ml,pH 5.0)/(AYET的CFU/ml,pH 6.9)×100。从四个单独的实验中计算平均值和SE。

讨论

阿米巴和巨噬细胞的寄生虫,L(左).嗜肺菌通过阻止吞噬体-溶酶体融合,避免吞噬细胞快速死亡。霍维茨及其同事的经典实验表明,在感染的前8小时,L(左).嗜肺菌吞噬体不能酸化或获得溶酶体蛋白2 4.新生吞噬体也缺乏早期和晚期内体蛋白5 6 7 38 39在这里,细胞生物学研究侧重于L(左).嗜肺菌细胞内生命周期表明,病原菌液泡随时间发生显著变化。与细菌复制相一致L(左).嗜肺菌液泡酸化,获得溶酶体蛋白酶,并从内吞途径积累物质。此外,溶酶体隔间内的居住似乎促进了L(左).嗜肺菌生长:内体区室的中和抑制了液泡的成熟和细菌的复制。

之前的几项观察结果与吞噬体的复制居所一致L(左).嗜肺菌从E肉汤培养物中获得的细菌在巨噬细胞溶酶体中降解,而PEL(左).嗜肺菌逃避吞噬体-溶酶体融合12.L(左).嗜肺菌24小时以上的液泡通常含有颗粒状和膜状物质40 41 42.DotA,一种蛋白质L(左).嗜肺菌感染期间需要阻止吞噬体成熟7 43在细胞内复制期间是不必要的44.据报道,中和内体室的试剂可以防止L(左).嗜肺菌巨噬细胞、HeLa细胞或阿米巴中的复制32 37 45 46最后,C.伯内蒂,一种专性细胞内病原体,与L(左).嗜肺性 47 48,在巨噬细胞的酸性吞噬体内复制19 20 21.

用BFA治疗1小时足以中和巨噬细胞内体室(),但它没有阻止复制L(左).嗜肺菌在单细胞阶段(图4图6). 因此,虽然酸性pH值会触发休眠C.伯内蒂其代谢活性变体49,L(左).嗜肺菌PE毒力型向复制型的分化12可能与pH无关。然而,细胞内的强劲增长L(左).嗜肺菌与病原体液泡和内体室之间的相互作用有关(图4 图5 图6).

Byrd和Horwitz假设单核细胞液泡pH值的实验中和抑制铁从内质体转铁蛋白中分离,使细胞内缺乏铁L(左).嗜肺菌铁的35 50在我们的实验模型中,我们无法证明BFA抑制细胞内L(左).嗜肺菌通过铁依赖机制进行复制。向BFA处理的吞噬细胞中添加亚硝酸铁至100μg/ml并不能持续恢复L(左).嗜肺菌生长(数据未显示),尽管这一结果的解释很复杂,因为在没有BFA的情况下,该化合物部分抑制了细胞内细菌的复制,并且对巨噬细胞有毒(数据未示出)。此外,L(左).嗜肺性在缺乏补充铁的肉汤中、在缺乏血清(转铁蛋白的来源)的培养基中培养的巨噬细胞中,或在用铁螯合剂去铁胺处理过的小鼠巨噬细胞中有效复制24小时,其浓度先前显示可抑制人单核细胞中的细菌生长(50; 数据未显示)。虽然铁对最大L(左).嗜肺菌在肉汤中生长,所需浓度从微量到~20μM不等51 52 53 54 55最后,用特定药物抑制质子ATP酶活性,如BFA和伴胞霉素,具有多效性效应,包括解除对反高尔基体贩运的管制56 57,抑制自噬58和阻止内体成熟59的确,BFA不仅抑制细胞内L(左).嗜肺菌复制,同时也将其液泡与内吞网络融合(图6). 因此,尽管很明显中和内体pH会干扰L(左).嗜肺菌复制,这种抑制的机制需要更详细的研究。

此前,Horwitz和Maxfield确定L(左).嗜肺菌通过分析小于8h龄的液泡,发现其存在于中性吞噬体中2; 3~6h吞噬体的研究()证实他们的结果。他们还报告说,18h吞噬体保持中性pH值,这一结论与我们的结论相矛盾。然而,他们测量pH值的方法要求细菌在巨噬细胞感染之前保留结合的荧光抗体调理蛋白。由于细菌复制预计会显著稀释表面调理蛋白,它们的18h pH值可能代表含有非复制的液泡L(左).嗜肺菌.

我们观察到巨噬细胞液泡内有复制L(左).嗜肺菌酸性是一个难题,因为这种病原体在pH 6.3–7.2的肉汤中生长最佳53 60然而,与之前的报告一致61,细胞内复制的细菌具有耐酸性(图1,图2,图5、和图8). 据推测,在与内吞途径隔离的几个小时内,L(左).嗜肺菌通过诱导因子的表达来响应细胞内的提示,这些因子可以在这个充满营养的充满敌意的隔间内促进存活和复制。与其他革兰氏阴性杆菌类似,其液泡pH值的早期中度下降可能会导致L(左).嗜肺菌耐酸性62,或吞噬过程中遇到的各种有害条件可能会诱导对L(左).嗜肺性其他环境压力31事实上,L(左).嗜肺菌巨噬细胞生长过程中表达热休克蛋白10 61 63或者,耐酸性L(左).嗜肺菌可能由巨噬细胞中存在的因子促进,但不是AYET,例如高浓度的氨基酸可以代谢生成基本化合物64.耐酸细菌可能会利用溶酶体隔间来提供充足的氨基酸,而氨基酸是L(左).嗜肺菌 65 66和膜,以容纳众多的后代。

的方面L(左).嗜肺菌细胞内途径类似于细胞自噬。在这个无处不在的真核生物过程中,内质网吞噬细胞质材料和细胞器,然后随着自噬体获得LAMP-1、质子ATP酶和溶酶体水解酶而降解67同样,在形成后4-6小时,内质网包围L(左).嗜肺菌液泡8; 12h时,液泡开始获得溶酶体特征。此外,增加巨噬细胞自噬的实验条件也促进内质网和病原体液泡的结合,适度刺激细菌生长8类似地,液泡携带复制利什曼原虫无鞭毛菌或流产布鲁氏菌获得内质网和晚期内体室的特征68 69 70 71 72可能一些液泡病原体诱导自噬以获得营养。另外,自噬可能作为巨噬细胞质量控制机制,识别流产的吞噬体并将这些细胞器传递给溶酶体。

微生物生长阶段、自噬和液泡成熟之间的类似关系已被描述为利什曼原虫.感染时利什曼原虫前鞭毛虫被巨噬细胞吞噬,吞噬体成熟被寄生虫表面的脂磷聚糖阻断14当前鞭毛虫发育为复制型无鞭毛虫时,脂磷聚糖表达下调,液泡与内质网结合并与内质体途径融合,寄生虫在酸性吞噬体液泡内复制68 73 74.

因为L(左).嗜肺菌它受分子遗传学的影响,可以作为识别病原体的机制的工具,包括柯克西拉菌利什曼原虫容忍或利用溶酶体环境。了解如何L(左).嗜肺菌操纵巨噬细胞的细胞过程,将其新生吞噬体从内吞体途径中分离出来,形成自噬体空泡,然后在酸性溶酶体隔室中存活并可能复制,这可能会阐明调控巨噬细胞膜交通的机制,以及其他细胞内病原体的毒力策略。

致谢

我们感谢Brenda Byrne的技术援助,感谢Albert Tsang和Ken Christianson的视频显微镜援助,感谢Tom Zahrt、Joe Vogel和Amrita Joshi批判性地审阅了这份手稿。非常感谢Joel Swanson使用他的视频设备,以及在编写这份手稿时提出的深思熟虑的意见。

这些研究得到了美国国立卫生研究院国家过敏和传染病研究所的支持,拨款R29 A140694-01BM。S.Sturgill Koszycki是密歇根大学微生物病原体分子机制培训项目的博士后,拨款T32AI07528。

脚注

本文中使用的缩写:BFA,巴非霉素A1;E、 指数阶段;绿色荧光蛋白;异丙基硫代-βIPTG-d日-吡喃半乳糖苷;LAMP-1,溶酶体相关膜蛋白1;感染多重性;PE,指数后相;TR-DEX,德克萨斯红-右旋糖酐;TR-OV,德克萨斯州红-卵清蛋白。

工具书类

  • Horwitz M.A.军团病细菌的吞噬作用(嗜肺军团菌)发生在伪吊舱线圈内的一种新型机械吞没。单元格。1984;36:27–33.[公共医学][谷歌学者]
  • Horwitz M.A.、Maxfield F.R。嗜肺军团菌抑制人类单核细胞吞噬体酸化。《细胞生物学杂志》。1984;99:1936–1943. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Horwitz M.A.军团病细菌形成新的吞噬体(嗜肺军团菌)在人类单核细胞中。实验医学学报1983;158:1319–1331。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Horwitz M.A.军团病细菌(嗜肺军团菌)抑制人类单核细胞吞噬溶酶体融合。实验医学学报1983;158:2108–2126. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Clemens D.L.,Horwitz M.A结核分枝杆菌吞噬体和吞噬体成熟被抑制的证据。实验医学学报1995;181:257–270. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Swanson M.S.,Isberg R.R.识别嗜肺军团菌具有异常细胞内命运的突变体。感染。免疫。1996;64:2585–2594. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Roy C.R.、Berger K.H.、Isberg R.R。嗜肺军团菌DotA蛋白是在细菌摄取后几分钟内作出早期吞噬体贩运决定所必需的。摩尔微生物。1998;28:663–674.[公共医学][谷歌学者]
  • Swanson M.S.、Isberg R.R.协会嗜肺军团菌巨噬细胞内质网。感染。免疫。1995;63:3609–3620. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Horwitz M.A.,Silverstein S.C.军团病细菌(嗜肺军团菌)在人类单核细胞内增殖。临床杂志。投资。1980年;66:441–450. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Abu Kwaik Y.、Eisenstein B.I.、Engleberg N.C.的表型调制嗜肺军团菌巨噬细胞感染后。感染。免疫。1993;61:1320–1329。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Vogel J.P.、Isberg R.R.的细胞生物学嗜肺军团菌.货币。操作。微生物。1999;2:30–34.[公共医学][谷歌学者]
  • Byrne B.,Swanson M.S.表达嗜肺军团菌对生长条件作出反应的毒力性状。感染。免疫。1998;66:3029–3034. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Hammer B.K.、Swanson M.S.协调嗜肺军团菌进入固定相的毒性ppGpp。摩尔微生物。1999;33:721–731.[公共医学][谷歌学者]
  • Desjardins M.,Descoteaux A.通过利什曼原虫脂磷聚糖。实验医学学报1997;185:2061–2068. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Antoine J.C.、Prina E.、Jouanne C.、Bongrand P.寄生液泡亚马逊利什曼原虫-受感染的巨噬细胞保持酸性pH值。感染。免疫。1990;58:779–787. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Russell D.G.,Xu S.,Chakraborty P.细胞内贩运和寄生液泡墨西哥利什曼原虫-受感染的巨噬细胞。细胞科学杂志。1992;103:1193–1210.[公共医学][谷歌学者]
  • Turco S.J.,Descoteaux A利什曼原虫寄生虫。每年。微生物评论。1992;46:65–94.[公共医学][谷歌学者]
  • Howe D.,Mallavia L.P.公司。立克次体J774A.1细胞内化后出现形态变化并延迟吞噬体融合。感染。免疫。2000年;68:3815–3821. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Akporiaye E.T.、Rowatt J.D.、Aragon A.A.、Baca O.G.持续感染小鼠巨噬细胞样细胞系的溶酶体反应贝氏柯克斯体.感染。免疫。1983;40:1155–1162. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Maurin M.A.、Benoliel A.M.、Bongrand P.、Raoult D贝氏柯克斯体-感染细胞系在持续感染期间保持酸性pH值。感染。免疫。1992;60:5013–5016. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Heinzen R.A.、Scidmore M.A.、Rockey D.D.、Hackstadt T.与内吞和外吞途径的差异相互作用区分了立克次体沙眼衣原体.感染。免疫。1996;64:796–809. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Berger K.H.,Isberg R.R.细胞内生长中的两个不同缺陷由单个基因位点补充嗜肺军团菌.摩尔微生物。1993;7:7–19.[公共医学][谷歌学者]
  • Ullrich H.J.、Beatty W.L.、Russell D.G.直接将促胃动素D输送至吞噬体简化,以通过分枝杆菌属.《欧洲细胞生物学杂志》。1999;78:739–748.[公共医学][谷歌学者]
  • Tsang A.、Oestegaard K.、Myers J.T.、Swanson J.A.改变活化骨髓源巨噬细胞的膜转运。J.Leukoc。生物。2000年;68:487–494.[公共医学][谷歌学者]
  • Beauregard K.E.、Lee K.-D.、Collier R.J.、Swanson J.A.李斯特菌溶血素O对巨噬细胞吞噬体的依赖性穿孔单核细胞增生李斯特菌.实验医学学报1997;186:1159–1163。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Cormack B.P.、Valdivia R.H.、Falkow S.FACS绿色荧光蛋白(GFP)优化突变体基因。1996;173:33–38.[公共医学][谷歌学者]
  • Segal G.,Shuman H.A.通过嗜肺军团菌被IncQ质粒RSF1010的结合组分抑制。摩尔微生物。1998;30:197–208.[公共医学][谷歌学者]
  • Chen J.W.,Cha Y.,Yuksel K.U.,Gracy R.W.,August J.T.编码溶酶体膜蛋白小鼠LAMP-1的cDNA克隆的分离和测序。与含有癌分化抗原的蛋白质的序列相似性。生物学杂志。化学。1988;263:8754–8758.[公共医学][谷歌学者]
  • Peters C.,von Figura K.溶酶体膜的生物发生。FEBS信函。1994;346:108–114.[公共医学][谷歌学者]
  • Oh Y.-K.,Swanson J.A.吞噬颗粒进入巨噬细胞溶酶体后的不同命运。《细胞生物学杂志》。1996;132:585–593. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Diment S.、Leech M.S.、Stahl P.D.组织蛋白酶D在巨噬细胞内体中是膜相关的。生物学杂志。化学。1988;263:6901–6907.[公共医学][谷歌学者]
  • Delbruck R.、Desel C.、von Figura K.、Hille-Rehfeld A.溶酶体前细胞器中组织蛋白酶D的蛋白质水解过程。《细胞生物学杂志》。1994;64:7–14.[公共医学][谷歌学者]
  • Grinstein S.,Nanda A.,Lukacs G.,Rotstein O.吞噬细胞中的V-ATP酶。实验生物学杂志。1992;172:179–192.[公共医学][谷歌学者]
  • Drose S.、Altendorf K.Bafilomycins和concanamycins作为V-ATP酶和P-ATP酶的抑制剂。实验生物学杂志。1997;200:1–8.[公共医学][谷歌学者]
  • Byrd T.F.,Horwitz M.A.氯喹抑制细胞内增殖嗜肺军团菌通过限制铁的可用性。临床杂志。投资。1991;88:351–357. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Eissenberg L.G.、Goldman W.E.、Schlesinger P.H。荚膜组织胞浆菌调节吞噬体的酸化。实验医学学报1993;177:1605–1611. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Hengge-Aronis R.进入稳定期期间基因表达的调节。收录人:Neidhardt F.C.,编辑。大肠杆菌和鼠伤寒沙门氏菌:细胞和分子生物学。美国微生物学会出版社;华盛顿特区:1996年。第1497-1512页。[谷歌学者]
  • Clemens D.L.,Horwitz M.A.在吞噬过程中的膜分类选择性排除主要组织相容性复合物分子,但在常规吞噬和盘绕吞噬过程中不排除补体受体CR3。实验医学学报1992;175:1317–1326. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Clemens D.L.、Lee B.-Y.、Horwitz M.A.在含有细胞内病原体的吞噬体上Rab5的异常表达结核分枝杆菌嗜肺军团菌与吞噬体命运改变有关。感染。免疫。2000年;68:2671–2684. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • King C.H.,Fields B.S.,Shotts E.B.,White E.H.细胞松弛素D和甲胺对细胞内生长的影响嗜肺军团菌阿米巴虫和人类单核细胞样细胞。感染。免疫。1991;59:758–763. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Yamamoto Y.、Klein T.W.、Brown K.、Friedman H.感染嗜肺军团菌.感染。免疫。1992;60:3231–3237. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Abu Kwaik Y.含有嗜肺军团菌在原生动物体内蠕形哈特曼菌被粗面内质网包围。申请。环境。微生物。1996;62:2022–2028. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Berger K.H.、Merriam J.J.、Isberg R.R.改变了与细胞内肺炎军团菌dotA基因。摩尔微生物。1994;14:809–822.[公共医学][谷歌学者]
  • Coers J.、Monahan C.、Roy C.R.通过嗜肺军团菌创造一个允许细胞内生长的细胞器。自然细胞生物学。1999;1:183–188.[公共医学][谷歌学者]
  • Goldoni P.、Pastoris M.C.、Cattini L.、Peluso C.、Sinibaldi L.、Orsi N.莫能菌素对入侵和增殖的影响嗜肺军团菌.医学微生物学杂志。1995;42:269–275.[公共医学][谷歌学者]
  • Cattani L.、Goldoni P.、Pastoris M.C.、Sinibaldi L.、Orsi N.Bafilomycin A1和细胞内复制嗜肺军团菌.抗微生物。代理Chemother。1997;41:212–214. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Weisburg W.G.、Dobson M.E.、Samuel J.E.、Dasch G.A.、Mallavia L.P.、Baca O.、Mandelco L.、Sechrest J.E.、Weiss E.、Woese C.R立克次体.《细菌学杂志》。1989;171:4202–4206. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Segal G.,Shuman H.A嗜肺军团菌毒力基因及其与贝氏柯克斯体.摩尔微生物。1999;33:667–672.[公共医学][谷歌学者]
  • Hackstadt T.,Williams J.C.真核细胞专性寄生的生物化学策略贝氏柯克斯体.程序。国家。阿卡德。科学。美国。1981;78:3240–3244. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Byrd T.F.、Horwitz M.A.干扰素γ激活的人单核细胞下调转铁蛋白受体并抑制细胞内增殖嗜肺军团菌通过限制铁的可用性。临床杂志。投资。1989;83:1457–1465. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Warren W.J.、Miller R.D.军团病细菌的生长(嗜肺军团菌)在化学定义的介质中。临床杂志。微生物。1979;10:50–55. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Reeves M.W.、Pine L.、Hutner S.H.、George J.R.、Harrell W.K.的金属要求嗜肺军团菌.临床杂志。微生物。1981;13:688–695. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Ristrop J.D.、Hedlund K.W.、Gowda S.化学定义培养基嗜肺军团菌增长。临床杂志。微生物。1981;13:115–119. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • James B.W.、Mauchline W.S.、Fitzgeorge R.B.、Dennis P.J.、Keevil C.W.铁盐连续培养对小鼠生理和毒力的影响嗜肺军团菌.感染。免疫。1995;63:4224–4230. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Pope C.D.、O'Connell W.A.、Cianciotto N.P。嗜肺军团菌铁吸收和同化以及细胞内感染缺陷的突变体。感染。免疫。1996;64:629–636。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Van Weert A.W.M.、Geuze H.J.、Stoorvogel W.在液泡质子泵被抑制后,细胞在从跨高尔基体网络到高尔基体的逆行转运诱导方面的异质性行为。《欧洲细胞生物学杂志》。1997;74:417–423.[公共医学][谷歌学者]
  • Reaves B.,Banting G.液泡ATP酶失活阻断了从质膜向反式高尔基体网络的循环。FEBS信函。1994;345:61–66.[公共医学][谷歌学者]
  • Yamamoto A.、Tagawa Y.、Yoshimori T.、Moriyama Y.、Masaki R.、Tashiro Y.Bafilomycin A1通过抑制大鼠肝癌细胞系H-4-II-E细胞中自噬体和溶酶体之间的融合来防止自噬空泡的成熟。单元格结构。功能。1998;23:33–42。[公共医学][谷歌学者]
  • Clague M.J.、Urbe S.、Aniento F.、Gruenberg J.液泡ATP酶活性是内胚体载体囊泡形成所必需的。生物学杂志。化学。1994;269:21–24.[公共医学][谷歌学者]
  • Feeley J.C.、Gorman G.W.、Weaver R.E.、Mackel D.C.、Smith H.W.军团病细菌的主要分离培养基。临床杂志。微生物。1978年;8:320–325. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Abu Kwaik Y.,Gao L.-Y.,Harb O.S.,Stone B.J.巨噬细胞诱导基因的转录调控(gspA公司)第页,共页嗜肺军团菌以及空突变体的表型特征。摩尔微生物。1997;24:629–642.[公共医学][谷歌学者]
  • 当质子攻击微生物的酸适应策略时,Foster J.W。货币。操作。微生物。1999;2:170–174.[公共医学][谷歌学者]
  • Susa M.、Hacker J.、Marre R.从头合成嗜肺军团菌吞噬细胞内生长过程中的抗原。感染。免疫。1996;64:1679–1684. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Olsen E.R.pH对细菌基因表达的影响。摩尔微生物。1993;8:5–14.[公共医学][谷歌学者]
  • Pine L.、George J.R.、Reeves M.W.、Harrell W.K.开发化学定义的液体培养基,用于嗜肺军团菌.临床杂志。微生物。1979;9:615–626. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Mauchline W.S.、Araujo R.、Wait R.、Dowsett A.B.、Dennis P.J.、Keevil C.W.的生理学和形态学嗜肺军团菌在低氧张力下连续培养。《遗传学微生物学杂志》。1992;138:2371–2380.[公共医学][谷歌学者]
  • Dunn W.A.自噬和溶酶体介导的蛋白质降解的相关机制。趋势细胞生物学。1994;4:139–143.[公共医学][谷歌学者]
  • Schaible U.E.、Schlesinger P.H.、Steinberg T.H.、Mangel W.F.、Kobayashi T.、Russell D.G墨西哥利什曼原虫通过两条独立的途径从宿主细胞胞浆中获取大分子。细胞科学杂志。1999;112:681–693。[公共医学][谷歌学者]
  • Pizarro-Cerda J.、Meresse S.、Parton R.G.、Van der Goot G.、Sola-Linda A.、Lopez-Goni I.、Moreno E.、Gorvel J.P。流产布鲁氏菌通过自噬途径转运并在非专业吞噬细胞的内质网中复制。感染。免疫。1998;66:5711–5724. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Detilleux P.G.、Deyoe B.L.、Cheville N.F。内吞和代谢抑制剂对细胞内化和细胞内生长的影响流产布鲁氏菌在Vero细胞中 美国兽医协会。物件。 52199016581664年[公共医学][谷歌学者]
  • Detilleux P.G.、Deyoe B.L.、Cheville N.F。渗透和细胞内生长流产布鲁氏菌体外培养非吞噬细胞 感染。免疫。 58199023202328亿[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Porte F.、Liautard J.P.、Kohler S.含有猪布鲁氏菌对小鼠巨噬细胞的细胞内存活至关重要。感染。免疫。1999;67:4041–4047. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • McConville M.J.、Blackwell J.M杜氏利什曼原虫:前鞭毛虫和无鞭毛虫糖脂的特征。生物学杂志。化学。1991;266:15170–15179.[公共医学][谷歌学者]
  • Turco S.J.,Sacks D.L.在大型利什曼原虫无鞭毛虫。分子生物化学。寄生虫醇。1991;45:91–100.[公共医学][谷歌学者]

文章来自实验医学杂志由以下人员提供洛克菲勒大学出版社