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.2015年1月22日;57(2):207-18.
doi:10.1016/j.molcel.2014.11.013。 Epub 2014年12月18日。

mTORC1磷酸化UVRAG负调控自噬体和内体成熟

附属公司

mTORC1磷酸化UVRAG负调控自噬体和内体成熟

Young-Mi Kim(金永美)等。 分子电池. .

摘要

mTORC1作为负调控因子在自噬中起关键作用。目前已知的自噬途径中mTORC1的靶点主要在自噬体形成的早期阶段发挥作用。在这里,我们发现mTORC1通过磷酸化UVRAG来抑制后期的自噬。在营养丰富的条件下,mTORC结合并磷酸化UVRAG。磷酸化积极调节UVRAG-与RUBICON的结合,从而增强RUBICON对UVRAG-介导自噬小体成熟的拮抗作用。在去磷酸化后,UVRAG从RUBICON中释放出来,与HOPS复合物相互作用,HOPS复合体是晚期内吞体和溶酶体融合机制的组成部分,并促进自噬体和内吞体的成熟。因此,UVRAG的去磷酸化促进表皮生长因子受体(EGFR)的溶酶体降解,减少EGFR信号传导,并抑制癌细胞增殖和肿瘤生长。这些结果表明,mTORC1参与了自噬和内体成熟的晚期阶段,在膜相关过程中定义了更广泛的mTORCl功能。

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数字

图1
图1。mTORC1与UVRAG结合并诱导UVRAG-磷酸化
(A类)mTOR与含UVRAG的Vps34复合物结合。Myc标记的蛋白质在HEK293T细胞中瞬时表达。采用免疫印迹法(WB)分析用myc免疫沉淀物(IP)恢复的内源性mTOR。(B类)mTORC1与UVRAG相互作用。Myc-tagged蛋白在HEK293T细胞中用HA-UVRAG瞬时表达。WB分析用myc IP恢复的UVRAG。中间一条不相关的车道被取消。(C类)WB分析用RUBICON、猛禽和对照IgG IP恢复的内源性UVRAG。()UVRAG-mTORC1相互作用受Torin1或HBSS负调控,但不受雷帕霉素负调控。瞬时转导HEK293T细胞表达myc-UVRAG,在HBSS中孵育2h或用Torin1或雷帕霉素处理1h。WB分析用myc-UVRAG分离的内源性mTOR或雷帕藤。(电子)mTOR抑制诱导SDS-PAGE上UVRAG带的迁移。HEK293T细胞在DMEM或HBSS中培养2 h,或用Torin1处理1 h。细胞也在亮氨酸产生的培养基(−)中培养,然后补充亮氨酸(+)。(F类)MEF中TSC1或TSC2的缺乏导致UVRAG的迁移率改变(G公司)mTOR在体外磷酸化UVRAG。从细菌中制备GST标记的UVRAG片段,并与活性mTOR片段在32P-ATP。成立32通过放射自显影术分析UVRAG片段中的P。另请参见图S1。
图2
图2。UVRAG Ser498是mTORC1依赖性磷酸化位点
(A类)围绕UVRAG S498的序列与已知mTORC1靶点的序列对齐。(B类)Rheb诱导UVRAG S498磷酸化。HA-Rheb在HEK293T细胞中用myc-UVRAG表达。WB分析UVRAG S498磷酸化。(C类)MEF中的UVRAG磷酸化被Torin1、Akt抑制剂VIII或HBSS抑制,但不被雷帕霉素抑制。免疫沉淀UVRAG通过WB分析磷酸化。()Akt和Rheb增强了S498磷酸化。HA-UVRAG仅在HEK293T细胞(−)中瞬时表达,或与myc标记的组成活性Akt突变体(cAkt)或Rheb一起瞬时表达。转染后两天,用载体(−)或Torin1(+)处理细胞1小时(电子)MEF中AMPK、PTEN或TSC1的缺乏会增强UVRAG磷酸化。用载体(−)或Torin1(+)处理MEFs 1小时。通过免疫沉淀和WB分析UVRAG磷酸化。另请参见图S2。
图3
图3。mTORC1磷酸化UVRAG Ser498
(A类)mTOR在体外磷酸化UVRAG S498。将mTOR的活性形式与纯化的UVRAG在ATP存在下孵育。Akt1作为阴性对照。WB分析UVRAG S498磷酸化。(B类)使用抗Myc抗体通过免疫沉淀法分离在HEK293T细胞中瞬时表达的Myc-mTOR WT或其激酶死亡突变体(KD),并与UVRAG和ATP孵育。(C类)从HEK293T细胞中分离出内源性mTOR IP,并以UVRAG 271-699片段为底物分析其激酶活性。()mTOR、raptor或rictor IP是从HEK293T或HeLa细胞中获得的,激酶反应分析如(C)所示。(电子)分析从shRNA转导的HEK293T细胞中分离的内源性UVRAG中S498的磷酸化状态。(F类)Torin1在体外抑制UVRAG S498磷酸化。mTOR活性片段与从细菌中纯化的UVRAG WT或S498A孵育。在有或无Torin1的情况下进行激酶反应。另请参见图S3。
图4
图4。UVRAG Ser498磷酸化正调控UVRAG-RUBICON相互作用
(A类)S498磷酸化正向调节UVRAG-RUBICON相互作用。Myc-UVRAG WT或突变体在UVRAG-沉默的HEK293T细胞中瞬时表达。WB分析用myc-UVRAG IP恢复的内源性RUBICON。(B类)Torin1负调节UVRAG-RUBICON相互作用。用Torin1处理HEK293T细胞4h。通过免疫沉淀和WB分析内源性UVRAG和RUBICON之间的相互作用。(C类)亮氨酸剥夺减少UVRAG-RUBICON相互作用。HEK293T细胞在含有(+)或不含亮氨酸(-)的培养基中培养2 h。用WB分析用UVRAG IP回收的内源性RUBICON。()S498A突变对RUBICON与含UVRAG的Vps34复合物之间的相互作用产生负面影响。所示蛋白在UVRAG-沉默的HEK293T细胞中表达。转染后两天,用Torin1处理细胞,如(B)所示。另请参见图S4。
图5
图5。UVRAG Ser498磷酸化对RUBICON对Vps34的抑制作用很重要
(A类)S498磷酸化的预防增加了PI3P在HeLa细胞中的积累。RFP标记的2xFYVE在WT或突变UVRAG重组HeLa细胞中瞬时表达,并通过荧光显微镜进行监测。比例尺,10μm。(B类)FYVE斑点形成的定量分析。结果表示为平均值±标准偏差(SD)(*,<0.05 vs WT;**,与WT相比p<0.01;#<0.01; n≥17)。(C类)阻止S498磷酸化增加Vps34的激酶活性。HA-Vps34在UVRAG-缺失的HEK293T细胞中单独或与myc-UVRAG一起表达。获得HA-Vps34 IP,并与磷脂酰肌醇(PI)和ATP在存在或不存在沃特曼(200 nM)的情况下孵育。PI3P的含量按照实验程序进行分析。()Vps34激酶活性的定量分析。结果表示为平均值±SD(*,<0.01 vs空向量;#<0.01; NS,无显著性;n=3)。(电子)RUBICON依赖S498磷酸化来抑制UVRAG诱导的PI3P的产生。如(A)所述,分析空腹载体或UVRAG转导的HCT116细胞中单独(−)或与RUBICON一起表达的RFP-2xFYVE。比例尺,5μm。(F类)PI3P斑点形成的定量分析。误差条表示平均值±SD(#<0.01; n=20)。(G和H)RUBICON依赖S498磷酸化来抑制UVRAG介导的Vps34激酶活性刺激。用空载体或RUBICON构建物瞬时转染UVRAG重建的HEK293T细胞。体外激酶测定如(C)所示。该图代表了两个独立的实验。()WB分析用Vps34 IP恢复的Vps34。另请参见图S5。
图6
图6。预防UVRAG Ser498磷酸化促进自噬体成熟
(A类)S498磷酸化负调控UVRAG-Vps39相互作用。HA-Vps39在UVRAG重组HEK293T细胞中瞬时表达,并通过免疫沉淀和WB分析其相互作用。(B类)S498磷酸化负调节UVRAG-Vps16相互作用。WB分析用GFP-UVRAG IP从HEK293T细胞中回收的Myc-Vps16。(C类)Torin1增强UVRAG-Vps39相互作用。用Torin1或载体(−)处理瞬时表达HA-Vps39和myc-UVRAG的HEK293T细胞。WB分析用myc-UVRAG IP回收的HA-Vps39。()RUBICON敲除增强了WT细胞中的UVRAG-Vps16相互作用,但不增强S498A细胞中的相互作用。WB分析用myc-UVRAG IP从shRNA转导的HEK293T细胞中回收的GFP-Vps16。(电子)S498磷酸化负调控Rab7-RILP相互作用。用HA-RILP从WT或突变UVRAG-重组HEK293T细胞中回收的Rab7用WB分析。(F类)S498磷酸化负调节Rab7。如实验程序所述,检测到GTP结合的Rab7。(G公司)(F)的定量分析。数据为平均值±SD(n=2)。(H(H))S498磷酸化负调控自噬体成熟。mCherry-GFP-LC3在空载体或UVRAG转导的HCT116细胞中表达。用Torin1或载体处理细胞。LC3通过荧光显微镜进行监测。比例尺,5μm。(单元节点号)GFP puncta(I)和mCherry putta(J)的定量分析(*,<0.01 vs空向量;#,p<0.01;NS;n≥35)。平均值显示为水平条。(K(K))纯樱桃斑点的定量分析(*,<0.01 vs空向量;#<0.01; n≥35)。平均值和SD显示为水平条。(L(左))S498A突变增强了自噬通量。在Bafilomycin A1(exp1)或E-64/Pepstatin A(exp2)存在或不存在的情况下,用Torin1处理用UVRAG构建物重建的HEK293T细胞。(M(M))定量分析溶酶体抑制剂诱导Torin1处理细胞中LC3-II水平增加的倍数。数据为平均值±SD(*,<0.05; n=5)。另请参见图S6。
图7
图7。预防UVRAG Ser498磷酸化增强EGFR降解,减少EGFR信号传导,抑制癌细胞增殖和肿瘤生长
(A类)S498A突变增强EGFR降解。用空载体(−)或UVRAG构建物稳定转导的HEK293T细胞隔夜缺乏血清,并处理EGF。WB分析细胞裂解液中EGFR水平。(B类)EGFR水平相对于时间零点时的EGFR水平。数据为平均值±SD(n=4)。(C类)S498A突变抑制EGFR信号。HEK293T细胞,如(A)所示转导,隔夜无血清,并用EGF处理。通过WB分析pERK1/2(Thr202/Tyr204)或pAKT(Thr308)。()S498A突变抑制癌细胞增殖。用空载体(−)或UVRAG构建物稳定转导的HCT116细胞在DMEM中培养。用血细胞仪计数活细胞数。数据为平均值±SD(n=3)。(电子)使用MTT分析活细胞。数据为平均值±SD(n=3)。(F类)S498A突变显著抑制癌细胞的锚定非依赖性生长。使用按(D)制备的HCT116细胞。数据显示为平均值±SD(*,<0.01 vs空向量;#<0.01; n=3)。(G公司)S498A突变显著抑制小鼠肿瘤生长。数值代表平均值±SD(*,=0.012; n=5)。(H(H))分析肿瘤重量与全身重量的关系。数值代表平均值±SD(*,<0.01; n=5)。()UVRAG S498磷酸化在自噬体和内体成熟中的调节作用。另请参见图S7。

中的注释

  • ZMP:单碳代谢的主调节器。
    Ducker GS,Rabinowitz JD。 Ducker GS等人。 分子细胞。2015年1月22日;57(2):203-4。doi:10.1016/j.molcel.2015.01.012。 分子细胞。2015 PMID:25616065 免费PMC文章。

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