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.2009年3月;49(3):960-8.
doi:10.1002/hep.22697。

肝硬变相关Toll样受体4单核苷酸多态性与肝星状细胞反应的功能联系

附属公司

肝硬变相关Toll样受体4单核苷酸多态性与肝星状细胞反应的功能联系

郭金生等。 肝病学. 2009年3月.

摘要

在最近的一项研究中,与主要的野生型CC等位基因(p.T399)相比,Toll样受体4(TLR4)基因的单核苷酸多态性(SNP)(c.1196C>T[rs4986791,p.T399I])表现出对纤维化进展的保护作用。本研究检测了该SNP以及另一种常见的高度共分离TLR4 SNP(c.896A>G[rs4986790,p.D299G])与肝星状细胞(HSC)反应的功能联系。与表达WT TLR4的HSC相比,来自TLR4(-/-)小鼠的HSC和用TLR4 D299G和/或T399I互补DNA重建的人类HSC系(LX-2)的HSC对脂多糖(LPS)刺激反应较低,通过LPS诱导的炎症和趋化细胞因子(即单核细胞趋化蛋白-1、白细胞介素-6)的表达和分泌、骨形态发生蛋白的下调和激活素膜结合抑制剂的表达(抑制性转化生长因子β假受体)进行评估,以及激活核因子κB(NF-kappaB)反应性荧光素酶报告子。此外,TLR4(-/-)或髓样分化因子88(-/--)(TLR衔接蛋白)小鼠HSC中的自发凋亡以及NF-kappaB、细胞外信号调节激酶(ERK)和磷脂酰肌醇3-激酶途径抑制剂诱导的凋亡显著增加,以及在表达D299G和/或T399I SNP的小鼠HSC中;这些细胞系的凋亡增加伴随着磷酸化ERK和Bcl-2的减少。

结论:与肝纤维化保护相关的TLR4 D299G和T399I单核苷酸多态性降低TLR4介导的炎症和纤维生成信号,并降低活化HSC的凋亡阈值。这些发现提供了一种机制联系,解释了特异性TLR4单核苷酸多态性如何调节纤维化进展的风险。

PubMed免责声明

利益冲突声明

潜在的利益冲突:无需报告。

数字

图1
图1
TLR4 siRNA消除LX-2细胞的LPS反应性。在用TLR4 siRNAs单独转染后,通过实时PCR或与NF共转染进行mRNA分析-κ用于NF评估的B反应性报告质粒-κB激活后,用LPS(100 ng/mL)刺激LX-2细胞12小时。(A) 转染TLR4 siRNA(TLR4-siRNA)或对照siRNA(csiRNA)的LX-2细胞中炎症细胞因子和纤维生成基因的相对mRNA表达,以应对LPS。数据是相对于不含LPS或siRNA的细胞中的表达进行描述的,这些细胞的值为1。(B) NF的折叠变化-κ转染TLR4 siRNA或对照siRNA的LX-2细胞对LPS的B反应性报告活性。数据是相对于不含LPS或siRNA的细胞中的表达进行描述的,这些细胞的值为1。TLR4 siRNA消除了LPS诱导的MCP-1和IL-6的上调以及BAMBI的下调,同时NF的反应性降低-κB活动。每列代表三个独立实验中每组n=6的平均值±SEM*P(P)< 0.05; **P(P)与对照siRNA转染细胞相比,<0.01。
图2
图2
TLR4单核苷酸多态性降低NF-κHSC对LPS刺激的B激活。一种NF-κ将B反应性报告质粒与TLR4 cDNA共转染到LX-2细胞中,或转染到与人TLR4 c DNA稳定重组的mHSC中。用LPS(100ng/mL)刺激细胞12小时。NF的激活-κ用双核糖核酸酶报告子分析系统测定B反应性报告子。(A) NF的折叠变化-κ转染TLR4 WT或SNP序列或LacZ控制载体的LX-2细胞中的B报告活性。(B) NF的折叠变化-κTLR4中的B报告人活动−/−用TLR4 WT或SNP序列或LacZ控制载体转染小鼠HSC,并在MyD88中−/−用WT人TLR4序列重组HSC。表达单个或双SNP的细胞NF较少-κB激活。每列代表三个以上独立实验中每组n=6的平均值±SEM*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的星状细胞相比,<0.05。
图3
图3
TLR4 SNP减弱NF的反应-κLPS刺激后HSC中的B靶基因。LX-2细胞或TLR4−/−用100 ng/mL LPS刺激用人TLR4 cDNA瞬时或稳定重组的mHSC株系12小时。实时定量PCR检测LX-2细胞(A)和mHSC(B)中炎性细胞因子MCP-1、IL-6和BAMBI的mRNA表达。ELISA法检测LX-2细胞(C)和小鼠HSC(D)细胞培养上清中MCP-1和IL-6蛋白分泌的平行变化。在单一或双重SNP存在的情况下,LPS暴露后MCP-1和IL-6 mRNA的折叠变化减少,而BAMBI下调的程度减弱。的更改α-用TLR4单核苷酸多态性重建后,平滑肌肌动蛋白和I型胶原mRNA在统计学上没有差异(未显示)。每列代表三个独立实验中每组n=6的平均值±SEM*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的星状细胞相比,<0.05。
图4
图4
TLR4单核苷酸多态性通过通路抑制剂降低mHSC生长并增强生长抑制。TLR4级−/−用PI3K抑制剂(LY 294002)、ERK抑制剂(PD 98059)或NF处理用人TLR4 cDNA稳定重组的mHSC株系-κB抑制剂(20μM、 10个μM、 和5μM、 分别)。DNA合成通过[H] -合并。(A) TLR4中的DNA合成−/−转染人TLR4 WT或SNP cDNA和MyD88的mHSC−/−用人TLR4 WT重组的HSC。(B)添加PI3K抑制剂、ERK抑制剂或NF后的生长减慢率-κB抑制剂。与WT TLR4细胞相比,单核苷酸多态性或双核苷酸多态性细胞的生长速度较慢,并且在路径抑制后生长减慢。每列代表三个独立实验中每组n=6的平均值±SEM*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的HSC相比,<0.05。
图5
图5
TLR4单核苷酸多态性增加mHSC的自发凋亡。在TLR4中评估自发细胞凋亡−/−通过FACS和裂解PARP的western blot分析,用人TLR4 cDNA稳定重组的mHSC株。(A) TLR4自发凋亡的FACS分析−/−人TLR4 cDNA和MyD88转染小鼠HSC−/−用WT TLR4重组HSC。(B) 通过每个细胞系的FACS分析测定细胞凋亡率(包括早期凋亡率[R3]和晚期凋亡率[R4])。(C) 每个细胞系中分离的PARP的Western blot分析(显示了代表性的Westernblot膜和相对密度定量)。每列代表三个独立实验中每组n=3的平均值±SEM*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的星状细胞相比,<0.01。表达单个或双SNP的细胞比转染WT TLR4的细胞表现出更高的自发凋亡。
图6
图6
TLR4单核苷酸多态性降低活化HSC的凋亡阈值。TLR4级−/−用TLR4 cDNA稳定重组的mHSC细胞系要么需要血清24小时,要么与途径抑制剂(包括PI3K抑制剂(LY 294002)、ERK抑制剂(PD 98059)或NF)孵育-κB抑制剂12小时(20μM、 10个μM、 和5μM、 分别)。流式细胞仪检测细胞凋亡率。在血清饥饿或通路抑制条件下,表达单一或双重TLR4 SNP的细胞比表达WT TLR4的细胞具有更高的凋亡诱导率。每列代表三个独立实验中每组n=3的平均值±SEM*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的HSC相比,P<0.01。
图7
图7
TLR4单核苷酸多态性改变mHSC中凋亡相关蛋白的水平。TLR4级−/−用100ng/mL LPS刺激用人TLR4 cDNA稳定重建的mHSC系12小时。进行凋亡调节蛋白的Western blot,包括总ERK(t-ERK)、p-ERK、总Akt(t-Akt)、p-Akt、Bcl-2和Bax(代表性的Western blotted膜和相对密度定量β-肌动蛋白)。在TLR4敲除和T399I、D299G、双重D299G/T399I SNP表达的星状细胞中,调节细胞凋亡的两个关键下游效应物(p-ERK和Bcl-2)减少。该图是三个独立实验的代表*P(P)与WT TLR4 cDNA转染的HSC相比,<0.01。#P(P)与未经LPS处理的细胞相比,<0.05。

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