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.2008年6月20日;30(6):678-88.
doi:10.1016/j.molcel.2008.06.001。

JNK1介导的Bcl-2磷酸化调节饥饿诱导的自噬

附属公司

JNK1介导的Bcl-2磷酸化调节饥饿诱导的自噬

魏永杰等。 分子电池. .

摘要

饥饿诱导自噬,以维持几乎所有真核生物的细胞内环境稳定。然而,饥饿诱导自噬的机制尚不完全清楚。在哺乳动物细胞中,抗凋亡蛋白Bcl-2在非神经支配状态下与Beclin 1结合并抑制其自噬功能。这里我们表明饥饿诱导非结构环的残基T69、S70和S87处细胞Bcl-2的磷酸化;Bcl-2与Beclin 1的解离;和自噬激活。相反,缺乏磷酸化位点非结构环的Bcl-2病毒在饥饿期间无法与Beclin 1分离。此外,应激激活的信号分子c-Jun N末端蛋白激酶1(JNK1)(而非JNK2)介导饥饿诱导的Bcl-2磷酸化、Bcl-2与Beclin 1的分离和自噬激活。总之,我们的研究结果表明,JNK1介导的Bcl-2多位点磷酸化通过破坏Bcl-2/Beclin 1复合物刺激饥饿诱导的自噬。这些发现定义了细胞用于调节自噬活动以响应营养状态的机制。

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图1
图1。饥饿调节细胞而非病毒Bcl-2和Beclin 1之间的相互作用
(A) Flag表位标记的KSHV vBcl-2与Beclin 1在HeLa细胞或MCF7中的共免疫沉淀。贝克林1用表达Flag-vBcl-2的质粒转染细胞,并在正常培养基(正常)或HBSS中培养4小时(饥饿)。(B) Myc表位标记的细胞Bcl-2与Beclin 1在HeLa细胞或MCF7中的共同免疫沉淀。贝克林1用表达Myc-Bcl-2的质粒转染细胞,并在正常培养基(正常)或HBSS中培养4小时(饥饿)。
图2
图2。饥饿刺激Bcl-2多位点磷酸化
(A) 人类Bcl-2和KSHV vBcl-2的基于结构的序列比对。每个序列的残留物编号显示在校准块中。黄色、粉红色和红色背景表示序列保守性增强,相同的残基用粗体白字突出显示。α-螺旋和线圈二级结构,由BH域彩色编码,显示在每个排列上方。红色三角形表示人类Bcl-2非结构环内的磷酸化位点。(B–C)P检测32HeLa细胞和MCF7中磷酸化内源性Bcl-2的代谢标记。贝克林1MCF7中的细胞(B)或磷酸化Bcl-2。贝克林1转染野生型或突变型Myc-Bcl-2(C)的细胞。细胞在正常培养基(饥饿-)或HBSS中培养4小时(饥饿+)后溶解,用抗Bcl-2(B)或抗Myc(C)免疫沉淀,用SDS-PAGE分离,并用所示抗体进行放射自显影或Western blot分析。(D) 使用MCF7中磷酸特异性抗人Bcl-2(Ser70)抗体检测磷酸化Bcl-2。贝克林1转染野生型或突变型Myc-Bcl-2的细胞。细胞在正常培养基(饥饿-)或HBSS中培养4小时(饥饿+),然后裂解。更快的迁移带表示Bcl-2丝氨酸70上的单侧磷酸化,较慢的迁移带(箭头)表示多位点磷酸化。
图3
图3。Bcl-2磷酸化位点突变改变Bcl-2/Beclin 1结合的调控
(A和B)在MCF7中与Beclin 1共免疫沉淀Bcl-2。贝克林1细胞(A)或HeLa细胞(B)转染表达野生型或指定突变型Myc-tagged Bcl-2的质粒,并在正常培养基(饥饿-)或HBSS中生长4小时(饥饿+)。(C) MCF7中Beclin 1与嵌合病毒/细胞Bcl-2构建物的共免疫沉淀。贝克林1用表达嵌合体的质粒转染带有野生型或指示突变细胞Bcl-2环插入物的细胞,并在正常培养基(饥饿-)或HBSS中培养4小时(饥饿+)。
图4
图4。Bcl-2磷酸化位点突变改变自噬调节
(A) MC7饥饿期间GFP-LC3染色的代表性图像。贝克林1细胞与GFP-LC3共转染并显示质粒。箭头表示含有GFP-LC3点的代表性细胞(即自噬体结构)。(B和C)MCF7自噬的光镜定量。贝克林1用GFP-LC3和质粒共转染的细胞在x轴下显示。In(B)质粒表达野生型或指示突变细胞Bcl-2。In(C)质粒表达嵌合病毒/细胞Bcl-2,其中vBcl-2的氨基酸24-34被来自野生型或指示突变细胞Bcl-2的氨基酸25-95取代。所示结果代表每件样品中超过100个细胞的三份样品的平均值±SEM。在三个独立的实验中也得到了类似的结果。
图5
图5。内源性jnk1型是饥饿诱导的Bcl-2磷酸化、Bcl-2/Beclin 1复合物分解和自噬所必需的
(A和B)MCF7中活性JNK(A)和活性P38(B)的Western blot分析。贝克林1在正常培养基(饥饿-)或HBSS中培养4小时(饥饿+)的细胞,使用多克隆山羊抗JNK抗体通过免疫沉淀法检测活性JNK,然后使用兔多克隆Thr183/Tyr185磷酸化特异性JNK免疫印迹分析(a,上图)。通过兔多克隆磷酸化P38 MAP激酶(Thr180/Tyr182)抗体(B,上面板)检测到活性P38。用兔多克隆JNK和P38 MAP激酶抗体分别检测JNK总量和P38(A–B,下表)。(C) Beclin 1联合免疫沉淀与野生型(WT)中Bcl-2(顶面板)、Bcl-2磷酸化(第四面板)和JNK磷酸化(第一面板)的比较,jnk1型−/−jnk2型−/−MEFS在正常培养基(饥饿-)或HBSS中生长4小时(饥饿+)。其他面板表示通过Western blot分析使用所示抗体在细胞裂解液中检测到的Beclin 1(第二面板)、Bcl-2(第三面板)、JNK1(第六面板)和JNK2(底部面板)的总量。(D) WT中p62/SQSTM1水平的比较,jnk1型−/−jnk2型−/−在正常培养基(饥饿-)或在HBSS中生长4小时(饥饿+)期间的MEFS。Actin显示为加载控件。
图6
图6。组成活性和显性负性JNK1调节Bcl-2磷酸化、Bcl-2与Beclin 1的结合和饥饿诱导的自噬
(A) 组成活性JNK1和显性阴性JNK1.对MCF7中Bcl-2磷酸化(上面板)和Bcl-2与Beclin 1共同免疫沉淀(第二面板)的影响。贝克林1细胞在正常培养基(饥饿-)或HBSS中生长4小时(饥饿+)。下面板表示通过Western blot分析使用指示抗体在细胞裂解液中检测到的Beclin 1(第三面板)、Bcl-2(第四面板)、MKK7-JNK1(第五面板)或活性MKK-JNK1(MKK-P-JNK1)(第六面板)的总量。(B) MCF7中GFP-LC3染色的代表性图像。贝克林1细胞与GFP-LC3共转染并显示质粒。箭头表示含有GFP-LC3点的代表性细胞(即自噬体结构)。(C和D)MCF7自噬的光镜定量。贝克林1与GFP-LC3和质粒共同转染的细胞显示在x轴下方。所示结果代表每件样品中超过100个细胞的三份样品的平均值±SEM。在三个独立的实验中也得到了类似的结果。
图7
图7。饥饿和JNK1通过内质网定位的Bcl-2池的多位点磷酸化和内质网Bcl-2/Beclin-1复合物的破坏来调节自噬
(A) 营养条件和组成活性JNK1对WT Bcl-2 MEF或AAA Bcl-2 EMF中Bcl-2磷酸化(第五组)和Beclin 1与Bcl-2(上组)共同免疫沉淀的影响。正常介质中的增长表示为“饥饿-”,HBSS中的增长则表示为“饥荒+”。其他面板表示通过Western blot分析使用所示抗体在细胞裂解液中检测到的Beclin 1(第二面板)、Bcl-2(第三面板)或Flag-MKK7-JNK1(第六面板)的总量或抗Bcl-2免疫沉淀的Bcl-2的总量(第四面板)。(B) 与GFP-LC3和质粒共同转染的WT bcl-2 MEFs和AAA bcl-2 MEFs自噬的光镜定量显示在x轴下方。实心条代表正常培养基中的生长,开放条代表HBSS中四小时的生长(营养缺乏)。所示结果代表每件样品中超过100个细胞的三份样品的平均值±SEM。在三个独立的实验中也得到了类似的结果。(C) 营养条件和组成活性JNK1对WT Bcl-2 MEF中重膜(HM,线粒体)、轻膜(LM,ER)或胞浆(Cytol)组分中Bcl-2磷酸化(顶面板)和Beclin 1与Bcl-2(第二面板)共同免疫沉淀的影响。正常介质中的增长表示为“饥饿-”,HBSS中的增长则表示为“饥荒+”。其他面板表示通过Western blot分析使用所示抗体在细胞裂解液中检测到的Beclin 1(第三面板)、Bcl-2(第四面板)、Flag-MKK7-JNK1(底部面板)、Calreticulin(ER标记,第五面板)或Tim 23(线粒体标记,第六面板)的总量。

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