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.2006年6月;26(11):4316-26.
doi:10.1128/MCB.02183-05。

多位点蛋白激酶A和糖原合成酶激酶3β磷酸化通过SCFbetaTrCP导致Gli3泛素化

附属公司

多位点蛋白激酶A和糖原合成酶激酶3β磷酸化通过SCFbetaTrCP导致Gli3泛素化

丹尼斯·坦佩等。 分子细胞生物学. 2006年6月.

摘要

Gli3是一种锌指转录因子,在蛋白质水解过程中被加工成缺乏C末端激活域的截断阻遏物。Gli3的加工受蛋白激酶A(PKA)的刺激,并受Hedgehog信号通路的抑制,Hedgehong信号通路是脊椎动物发育和疾病的主要信号通路。我们在此表明,Gli3加工需要多位点糖原合成酶激酶3beta(GSK3beta)磷酸化和SCFbetaTrCP泛素化。我们在Gli3中发现了多个与DSGX2-4S基序相关的βTrCP结合位点,这些位点与PKA和GSK3beta位点以及对加工至关重要的SCFbetaTrCP靶赖氨酸交织在一起。我们的结果支持一个简单的模型,即PKA通过GSK3beta和CK1触发Gli3磷酸化级联,从而导致SCFbetaTrCP直接结合和泛素化。还观察到βTrCP与缺乏DSGX2-4S相关基序的Gli3 N端和C端结构域的结合,这可能反映了通过Hedgehog信号的其他成分(如肿瘤抑制因子Sufu)的间接相互作用。因此,Gli3加入了一小组转录因子,其处理受到泛素-蛋白酶体途径的调节。我们的研究揭示了PKA磷酸化在Gli3加工中的作用,并将有助于分析Hedgehog信号如何实现Gli3处理的剂量依赖性调节。

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数字

图1。
图1。
PKA和GSK3β刺激截断的Gli3合成。(A) 通过PKA和GSK3β刺激刺激截断的Gli3合成。用Flag表位标记的Gli3(Flag-Gli3)、人PKA催化亚单位(PKA)、人野生型GSK3β或人显性阴性GSK3α(GSK3?R85)的表达载体转染NIH 3T3细胞,并用抗Flag抗体对细胞提取物进行免疫印迹分析。(B) LiCl抑制内源性GSK3β抑制forskolin诱导的截短Gli3合成。用Flag-Gli3表达载体转染NIH 3T3细胞。如有指示,用50μM毛喉素(FSK)单独或用50μM FSK和20mM LiCl处理细胞12小时。向对照细胞中加入相同量的FSK载体(乙醇)。(C) PKA位点附近GSK3β位点的突变抑制截短Gli3的合成。GSK3β磷酸化丝氨酸或苏氨酸残基,这些残基位于磷丝氨酸的四个N末端。GSK3β位点SXXXPS,标记为G2至G4,分别与PKA位点P2至P4相邻(29)。将Flag-Gli3指定位点的丝氨酸-丙氨酸突变体与PKA和GSK3β表达载体一起转染到NIH 3T3细胞中,并用抗Flag抗体通过免疫印迹分析细胞提取物。扫描自动放射自显影图,测量与截断的Gli3和总Gli3信号相对应的信号。截断Gli3的相对水平以每种条件下测得的总(截断+全长)Gli3信号的百分比表示。减号表示未量化截断产品的车道。在长时间接触斑点后,可以检测到低水平的加工,粗略估计低于总Gli3的3%。mG2、mP2和mP2P3分别表示G2位点、P2位点以及P2和P3位点的突变Flag-Gli3。
图2。
图2。
截短的Gli3合成需要βTrCP。(A) 野生型βTrCP的过度表达刺激转录阻断实验中截短Gli3的合成。用pBI-G-Flag-Gli3、pTet-Off和GSK3β表达载体以及对照(−)或HA表位标记的βTrCP(HA-βTrCP)表达载体转染NIH 3T3细胞。用50μM forskolin(FSK)和100 ng/ml多西环素(DOX)处理细胞,并在0 h、4 h和8 h后收集,以分析截短与全长Flag-Gli3的相对水平。(B) βTrCP下调抑制Gli3处理。将抗人βTrCP(+)或荧光素酶(−)的siRNA与Flag-Gli3、PKA和GSK3β表达载体一起转染HeLa和293T细胞。右侧面板显示siRNA对抗βTrCP对HA-βTrCP的特异性下调。将抗βTrCP(+)或荧光素酶(−)的siRNA与HA-βTrCP表达载体一起转染293T细胞。用抗HA抗体检测等量的细胞裂解物,检测HA-βTrCP和抗-β-半乳糖苷酶(βGal),作为转染和巨细胞病毒表达水平的控制。(C) MG132蛋白酶体抑制剂抑制Gli3加工。用Flag-Gli3、PKAc和GSK3β表达载体转染NIH 3T3细胞。用20μM MG132(+)或载体(−)处理细胞6 h,并通过反标记免疫印迹分析等量的细胞裂解物。
图3。
图3。
Gli3与βTrCP相互作用。(A) 内源性Gli3与HA-βTrCP相互作用。用HA-βTrCP表达载体转染C3H-10T1/2细胞。将来自四个C3H-10T1/2细胞板的细胞裂解液分成两半,并使用对照(αCtAb,对照FGF4R抗体)或抗Gli3N抗体进行平行免疫沉淀。免疫沉淀物用抗HA抗体免疫印迹法检测HA-βTrCP或用抗Gli3抗体检测内源性Gli3。IP,免疫沉淀。(B) HA-βTrCP与Flag-Gli3共免疫沉淀。将HA-βTrCP表达载体和对照Flag或Flag-Gli3表达载体与PKA和GSK3β表达载体一起转染NIH 3T3细胞,以刺激截短Gli3的合成。等量的细胞裂解物进行反标记免疫沉淀,并通过免疫印迹法进行分析。(C) Gli3与HA-βTrCP共免疫沉淀的三个不同区域。将表达载体与PKA和GSK3β表达载体一起转染NIH 3T3细胞,以刺激截短Gli3的合成。质粒混合物包含HA-βTrCP或βTrCP-myc表达结构,后者在共免疫沉淀实验中用作阴性对照。使用抗-HA抗体对细胞裂解物进行βTrCP免疫沉淀,然后进行抗Flag或抗-HA免疫印迹。在底部面板中,显示了不同的构造。指出了合成截断Gli3(垂直条)所必需的PKA位点P1至P6的位置以及负责DNA结合(ZF)的锌指区域。通过与HA-βTrCP共免疫沉淀分析推断出的βTrCP结合位点用加号表示。未显示证明Gli3ΔN包含两个与βTrCP独立结合的位点的实验(然而,Gli3中央686-1100结构域与βTrCR结合,见图5)。在PKA和GSK3β的刺激下,Gli3ΔN生成了一个截断形式,该形式不与βTrCP结合,很可能是由于缺乏N末端βTrCP相互作用域。在与Gli3位置461至880相对应的通道中,我们检测到截短产物的水平很低,这可能是由于低水平的本构加工,因此不受PKA、GSK3β或βTrCP过度表达的调节(数据未显示)。wt,野生型;Nter,N端子;Cter,C端子。
图4。
图4。
Gli3 N端和C端结构域是高效处理所必需的。使用PKA和GSK3β表达载体将所示构建物转染到NIH 3T3细胞中,并通过免疫印迹分析截短(trunc)和全长产物的相对水平,如图1图例所示。mP2P3表明PKA位点P2和P3的丝氨酸-丙氨酸突变。
图5:。
图5:。
PKA位点突变对βTrCP与Gli3中央686-1100结构域结合的影响。(A) 用HA-βTrCP、PKA和GSK3β表达载体以及野生型Gli3中央686-1100结构域、突变型Gli3-中央686-100结构域或对照(ct)表达载体转染细胞。细胞裂解物进行抗病毒免疫沉淀(IP)并进行免疫印迹分析。(B) 使用PKA和GSK3β表达载体将所示构建物转染到NIH 3T3细胞中,并通过免疫印迹分析截短产物和全长产物的相对水平,如图1图例所示。mG2、mP2和mP2P3分别表示G2位点、P2位点以及P2和P3位点的突变Flag-Gli3。
图6。
图6。
Gli3处理需要βTrCP的直接结合。(A) 与DSGX相关的四个序列基序的鉴定2-4SβTrCP结合位点位于PKA位点P1和P4之间。SCF公司βTrCP先前识别的基板包含DSGX2-4βTrCP结合所必需的磷酸化的S序列。图中下划线的序列基序β1至β4与DSGX有关2-4用黑体表示的残留物对齐的S图案。对方框所示的16氨基酸序列进行突变,以测试基序β4在βTrCP的加工和结合中的作用。(B) 基序β4突变对Gli3加工的影响。用PKA和GSK3β表达载体将指示的构建物转染NIH 3T3细胞,并通过免疫印迹分析截短和全长Gli3的相对水平。所测试的结构包含斜体所示的含有基序β4的16-氨基酸盒的突变。β-连环蛋白(βcat)βTrCP结合位点的定位使得关键丝氨酸有望在PKA磷酸化位点P4后通过GSK3β的顺序活性磷酸化(即在模拟其正常磷酸化的环境中[1])。突变的β-catenin基序不结合βTrCP(15,36)。(C) β4基序突变对βTrCP与Gli3中央686-1100结构域结合的影响。如图所示,用HA-βTrCP、PKA和GSK3β表达载体以及野生型(wt)或突变型(mut)Gli3中央686-1100域表达载体或对照表达载体(ct)转染NIH 3T3细胞。细胞裂解物进行抗病毒免疫沉淀(IP)并进行免疫印迹分析。显示了联合免疫沉淀(coIP)HA-βTrCP免疫印迹的短期和长期暴露。(D) 基序β1+β2和β3突变对Gli3在其自然背景下(上面板)或替换基序β4时(下面板)的加工的影响。用PKA和GSK3β表达载体将指示的构建物转染NIH 3T3细胞,并通过免疫印迹分析截短和全长Gli3的相对水平。mP2P3表示PKA位点P2和P3处的突变Flag-Gli3。
图7。
图7。
鉴定SCF泛素化的Gli3加工所必需的赖氨酸βTrCP(A)单个或多个赖氨酸-精氨酸突变对Gli3加工的影响。指出了赖氨酸在加工和泛素化中潜在作用的测试位置。含有βTrCP结合基序β1至β4的846至910位结构域不含任何赖氨酸。该域附近的赖氨酸由一条垂直线表示。用PKA和GSK3β表达载体将指示的构建物转染NIH 3T3细胞,并通过免疫印迹分析截短和全长Gli3的相对水平。(B) 赖氨酸773、779、784和800对Gli3ΔNΔC的泛素化至关重要[461,1100]βTrCP过度表达对其刺激。指示的Gli3或Gli3ΔNΔC[461,1100]将构建物与PKA、GSK3β、HA-ubiquitin和对照或myc-βTrCP表达载体一起转染NIH 3T3细胞。用蛋白酶体抑制剂MG132在20μM下处理细胞4小时,该抑制剂抑制如图2C所示的蛋白水解过程,有利于检测泛素化蛋白,并在95°C下在含有5%SDS的裂解缓冲液中裂解细胞10分钟。将所得提取物用抗Flag抗体进行免疫沉淀,并用抗HA抗体进行免疫印迹分析,以检测泛素化物种(右面板)或用抗Flug抗体(左面板,标记为“IP Flag,W Flag”)。(C) 赖氨酸773、779、784和800突变为精氨酸不会损害Gli3ΔNΔC的结合[461,1100]至HA-βTrCP。将表达载体与PKA和GSK3β表达载体一起转染NIH 3T3细胞。使用抗HA抗体对细胞裂解物进行βTrCP免疫沉淀(IP),然后进行抗Flag或抗HA免疫印迹。wt,野生型。
图8。
图8。
已知SCF中βTrCP结合基序的比对βTrCP基底。第一个SCFβTrCP识别的基板允许定义通用DSGX2-4S序列,其磷酸化是βTrCP结合所必需的(11)。最近确定的底物中βTrCP结合位点的比对允许提出修订的一致性βTrCP连接基序。关于hCDC25A、Per2、p100、xCDC25A和Wee1A基板,分别参见参考文献、和。
图9:。
图9:。
通过推测的GSK3β、CK1和PKA磷酸化级联实现βTrCP结合位点的磷酸化。PKA磷酸化红色箭头所示的共有RRXS位点中的丝氨酸。GSK3β将丝氨酸四个残基N端磷酸化为磷酸丝氨酸,而CK1将丝氨酸三个残基C端磷酸化成磷酸丝氨酸;二者都可以在引发(1,9,14)后对底物进行多磷酸化。因此,模体β1中的S855可以如下磷酸化:通过PKA启动S852和S855的顺序磷酸化,通过CK1实现S849(P1)磷酸化。模体β2中S856的磷酸化可能如下:PKA通过CK1启动S868,然后通过GSK3β启动S864、S860和S856。除S850和S894(用黑色箭头表示)外,β1至β4基序中的所有丝氨酸(蓝色和绿色箭头分别表示CK1和GSK3β的磷酸化)都可以很容易地提出类似的磷酸化途径。S850和S894缺少丝氨酸n个+4或n个−磷酸化启动的3个位置,其序列上下文与未启动的CK1位点的序列上下文不相似(14)。另一种候选激酶被融合。如果βTrCP可以与重叠的DSS结合,则可能不需要S850磷酸化850ASTIS图案(带S850与共识中的G/A对齐),而不是图8中提出的图案。在任何情况下,P1到P4的65氨基酸片段中的19个丝氨酸,包括βTrCP结合基序β1到β4中的大多数丝氨酸,可能在PKA启动后被GSK3β和CK1磷酸化。

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