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.2006年1月10日;103(2):477-82.
doi:10.1073/pnas.0509952103。 Epub 2006年1月3日。

莱茵衣原体中用于状态转换的可移动捕光复合物II多肽的鉴定

附属公司

莱茵衣原体中用于状态转换的可移动捕光复合物II多肽的鉴定

Hiroko Takahashi先生等。 美国国家科学院程序. .

摘要

光合作用中的状态转换是光系统I(PSI)和光系统II(PSII)之间能量分配的短期平衡机制。当PSII被优先激发(状态2)时,移动捕光复合物II(LHCII)天线蛋白池被认为从PSII迁移到PSI,但LHCII蛋白和状态2 PSI之间物理关联的生化证据较弱。在这里,我们使用绿藻衣藻莱茵藻(Chlamydomonas reinhardtii),它具有很高的状态转换能力,报告了从锁定到状态1和状态2的细胞中分离出PSI-右旋复合物I(LHCI)超复合物。我们用温和的洗涤剂溶解类囊体膜,通过蔗糖密度梯度离心分离蛋白质,并对梯度组分进行凝胶过滤色谱。三种LHCII多肽仅在状态2与PSI-LHCI超复合物相关;我们将其鉴定为两个次要单体LHCII蛋白(CP26和CP29)和一个之前未报告的主要LHCII蛋白质II型,即LhcbM5。除了主要三聚体LHCII蛋白外,这三种LHCII蛋白质在过渡到状态2时被磷酸化。相应的系统发育树表明,在与PSII相关的LHCII蛋白中,这三种LHCII蛋白与PSI(LHCI)的LHC蛋白最相似。我们的结果很重要,因为CP26、CP29和LhcbM5被视为仅属于PSII复合体,现在被假设在状态转换期间在PSI和PSII之间穿梭,从而在PSI与PSII中充当三聚体LHCII蛋白的对接位点。

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数字

图1。
图1。
低温荧光光谱。荧光发射光谱C.莱因哈迪在77K下测量锁定在状态1(细线)和状态2(粗线)的类囊体膜。激发波长为440nm。光谱归一化为688 nm的发射。
图2。
图2。
在蔗糖密度梯度上分离的叶绿素-蛋白质复合物。类囊体C.莱因哈迪处于状态1的单元格(A类)和状态2(B类)溶解后进行蔗糖密度梯度离心。绿色带被指定为A-1、A-2、A-3和A-3′(顶部). 梯度分为20个部分,并进行SDS/PAGE。凝胶用库马斯亮蓝R-250染色(中部)或使用针对PsaA、PsbD(D2蛋白)、CP26、CP29或LHCII II型的抗体进行免疫印迹(底部). CP26、CP29和LHCII II型的位置中部用点表示。
图3。
图3。
A-3和A-3′的凝胶过滤色谱图。将状态1的A-3和状态2的A-3′装载到凝胶过滤色谱柱上。在280 nm处检测到蛋白质。指示了分子质量标记的位置(上部). 使用抗PsaA、CP26、CP29或LHCII II型抗体对30至68分钟的组分进行免疫印迹(下部).
图4。
图4。
处于状态1和状态2的磷酸化多肽C.莱因哈迪类囊体。用抗磷酸苏氨酸抗体对来自状态1(S-1)和状态2(S-2)类囊体的A-1和A-3′带的多肽进行免疫印迹。代表S-1中A-3′带的样品(未观察到)对应于S-2中A-3’带的当量分数。
图5。
图5。
LHC蛋白的邻接系统发育树C.莱因哈迪。构建邻接距离树时,在适当的节点上显示引导值(1000个重复的%)。整个编码区,包括转运肽,被用来排列氨基酸序列。LI-818蛋白(GenBank登录号X95326)用作外群。比例尺表示每个位点氨基酸替换的预期数量。
图6。
图6。
LHCII蛋白从状态1到状态2的迁移的拟议模型。在状态1下,两个LHCII三聚体和三个单体[CP29、CP26和LHCII II型(LhcbM5),灰色圆圈]与PSII二聚体的每一侧相结合。当PSII过度激发时,LHCII蛋白被磷酸化(星号),并从PSII中分离出来。然后,通过使用单体LHCII蛋白作为对接位点,磷酸-LHCII三聚体与PsaH亚基附近的PSI重新结合。

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引用人

工具书类

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