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.2019年9月1日:167:66-77。
doi:10.1016/j.meth.2019.05.015。 Epub 2019年5月22日。

RNA小分子相互作用的核磁共振表征

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RNA小分子相互作用的核磁共振表征

瑞斯·汤普森等。 方法. .

摘要

天然存在的配体敏感和疾病相关非编码RNA的激动人心的发现促进了人们对理解RNA-小分子相互作用的重大兴趣。核磁共振波谱是表征分子间相互作用的有力工具。在这篇综述中,我们描述了应用核磁共振波谱研究RNA和小分子之间相互作用的协议和方法。我们回顾了RNA样品制备的协议、识别RNA-结合小分子的方法、绘制RNA-小分子相互作用图的方法、确定复杂结构和表征结合动力学。我们希望这篇综述将为简化核磁共振在研究RNA-小分子相互作用中的应用提供指导,促进对RNA功能的基本机制理解和发展RNA-靶向治疗的翻译工作。

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图1。
图1.通过核磁共振筛选小分子RNA相互作用的方法。
(A-C)对于这三个示意图,蓝色三角形表示非结合小分子,红色方形表示RNA-结合小分子。(A) 对于STD,获得了化合物鸡尾酒的初始参考光谱(顶部)。然后RNA被射频脉冲饱和,NOE饱和转移到RNA-结合小分子(中间)。从参考光谱中减去饱和光谱,得到的结果仅是由于RNA结合而饱和的小分子的强度(底部)。(B) 通过用射频脉冲使水饱和,可以获得缺少RNA的参考光谱。快速翻滚的小分子会产生负NOE(上图)。在有RNA存在的情况下重复实验。结合囊中的水分子缓慢翻滚,产生的NOE对RNA-结合小分子呈阳性(底部)。(C) 获得了RNA缺失的参考光谱。快速翻滚的小分子会产生负的分子内NOE(上图)。在有RNA存在的情况下重复实验。结合囊中的小分子缓慢翻滚,产生的分子内NOE对RNA-结合小分子呈阳性反应(下图)。(D) RNA集合是通过分子动力学模拟生成的(左)。然后将最适合RDC的构象组合成一个“NMR-filtered”集成(中间)。然后,这种数据驱动的集成被用于超高吞吐量的硅筛查(右)。
图2。
图2:RNA中可见核的核磁共振化学位移。
蓝色的水可交换可观察原子需要H2O样品条件来观察碱基配对。红色和金色的不可交换原子可以在H2O或D2O中进行研究,H2'-H5“除外,其光谱与H2O重叠,需要D2O条件。BMRB的化学位移(http://www.bmrb.wisc.edu/)核酸密度直方图(H的密度>0.05,C/N/P的密度>0.02)。
图3。
图3.NMR化学位移滴定和交换制度。
(A) 在快速交换制度下,从自由(橙色)过渡到约束(深绿色)。(B) 在中间汇率制度下,从自由过渡到约束。(C) 在缓慢的汇率制度下,从自由过渡到约束。
图4。
图4:筛选/编辑的NOESY用于RNA-基因相互作用的结构表征。
(A) 标准NOESY允许在所有近端质子之间形成NOE。(B) F1fF2e过滤标记的信号,然后编辑未标记的信号以产生从未标记配体到标记RNA的交叉峰。(C)在开发NOE后,F2f过滤标记信号,以产生标记RNA到未标记配子的交叉峰和未标记配体到未标记配体的峰。(D) F1fF2f滤光片在NOE形成之前和只产生从未标记配体到未标记配体峰后标记信号。(E) F1eF2e在NOE形成之前编辑未标记的信号,然后只产生标记RNA到标记RNA的峰值。在图中,NA是自然丰度的缩写。
图5。
图5测量配体结合动力学的核磁共振弛豫分散技术。
(A) 正在交换的自由态和束缚态的HSQC,绿色可能是核磁共振不可见状态,在HSQC中无法检测到。(B) 模拟的CEST曲线显示自由态位置的主要状态下倾,而束缚态位置的较小下倾(C)模拟的R1ρ非共振曲线显示峰值,表明束缚态位置R2值较高,而自由态在曲线的R2限值中很明显。(D) CPMG和(E)R1ρ的共振曲线表明,由于与束缚态交换,R2增加。

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引用人

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