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.2006年2月;26(3):843-51.
doi:10.1128/MCB.26.3.843-851.2006。

MBD2/NuRD和MBD3/NuRD是两种不同的复合物,具有不同的生化和功能特性

附属公司

MBD2/NuRD和MBD3/NuRD是两种不同的复合物,具有不同的生化和功能特性

泽维尔·勒·盖泽内克等。 分子细胞生物学. 2006年2月.

摘要

人类基因组包含许多甲基CpG结合蛋白,这些蛋白将DNA甲基化转化为生理反应。为了深入了解MBD2和MBD3的功能,我们首先应用了蛋白质标签和质谱。我们证明MBD2和MBD3组装成相互排斥的独特Mi-2/NuRD类复合物,称为MBD2/NuRD和MBD3/NuRD。我们确定DOC-1是一种假定的肿瘤抑制因子,是MBD2/NuRD和MBD3/NuRD的一种新的核心亚单位。PRMT5及其辅因子MEP50被鉴定为特定MBD2/NuRD相互作用物。PRMT5与MBD2富含RG的N末端稳定而特异地结合并甲基化。染色质免疫沉淀实验表明,PRMT5和MBD2在体内以甲基化依赖的方式被招募到CpG岛,PRMT底物H4R3在这些位点被甲基化。我们的数据表明,MBD2/NuRD和MBD3/NuRD是不同的蛋白质复合物,具有不同的生化和功能特性。

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数字

图1。
图1。
TAP-MBD2和TAP-MBD3组装成功能类似Mi-2/NuRD的复合体。(A) 来自表达TAP-MBD2或TAP-MBD3的稳定细胞系的全细胞提取物的超6凝胶过滤。使用ProtA抗体通过Western blotting分析组分。列的空隙显示在分数7和8之间。(B) 重组组蛋白重组的核糖体模板被乙酰化酿酒酵母SAGA或NuA4复合物,然后在不存在或存在胰蛋白酶大豆琼脂的情况下与TAP-MBD2或TAP-MBD3复合物孵育(38)。H3或H4乙酰化的量分别使用双乙酰化组蛋白H3 Lys-9、14或四乙酰化H4的抗体通过Western blotting测定。MBD2和MBD3复合物与核小体模板的结合通过使用Myc和HDAC2抗体的Western blotting进行测定。(C) 如前所述,使用纯化MBD2和MBD3复合物在GAM12探针上进行电泳迁移率变化分析(27)。移动的甲基化探针用箭头表示。自由探头用星号表示。
图2。
图2。
MBD2和MBD3相互排斥。(A) 来自HEK 293细胞的纯化的MBD2和MBD3复合物的银染凝胶。MBD3用箭头表示。(B) 使用MBD3抗体通过Western blotting分析纯化的TAP-MBD2和TAP-MBD3复合物以及从HEK 293或HeLa细胞中提取的全细胞提取物。(C) 分别使用Strep-tachin或IgG珠免疫沉淀MBD2和MBD3。途径:1、对stII-3HA-MBD2-ProtA-Myc-MBD3提取物进行链霉菌纯化;2、HEK 293野生型提取物的链球菌纯化;3、用stII-3HA-MBD2 ProtA-Myc-MBD3提取物纯化IgG;4、用HEK 293野生型提取物纯化IgG;5、输入HEK 293提取物;6,输入stII-3HA-MBD2 ProtA-Myc-MBD3提取物。用HA或ProtA抗体通过Western blotting分析洗脱的蛋白质。用HDAC1抗体探测印迹显示HDAC1与MBD2和MBD3共沉淀。(D) 内源性MBD2和MDB3的免疫沉淀。使用针对MBD3(IBL,日本)或MBD2(Upstate Biotechnology)的抗体对HeLa细胞的全细胞提取物进行免疫沉淀。使用相同的抗体进行蛋白质印迹。
图3。
图3。
PRMT5与MBD2的N-末端RG-丰富重复序列相互作用并甲基化。(A) 纯化的TAP-MBD2和TAP-MBD3复合物使用PRMT5抗体通过Western blotting进行分析。(B) 带有RG重复序列的MBD2序列带下划线。(C) 纯化MBD2复合物与S公司-[14C] 腺苷蛋氨酸。甲基化蛋白质用箭头表示。自由标签用星号表示。使用IgG珠纯化MBD2复合物。左侧面板描述了纯化MBD2复合物的Western blot分析,或使用抗ProtA-辣根过氧化物酶抗体的293对照纯化。箭头显示TAP标记的MBD2。(D) (左面板)重组GST-RG(n)和GST-MBD2的体外甲基化S公司-[14C] 腺苷甲硫氨酸和纯化的PRMT5/MEP50馏分(中间面板)或纯化的MBD2复合物(顶部面板)。GST-PAH2作为阴性对照。(右面板)重组GST-RG(n)、缺乏RG拉伸的GST-MBD2和存在S公司-[14C] 腺苷甲硫氨酸和纯化的PRMT5/MEP50馏分(中间面板)或纯化的MBD2复合物(顶部面板)。自由标签用星号表示。底部面板中显示了GST-PAH2、GST-RG(n)、GST-MBD2、GST MBD2(缺少RG拉伸)和GST-MBD3的加载控制。(E) 来自HEK 293细胞的纯化N-末端截短MBD2复合物的银染色凝胶。该表显示了FT-MS/MS分析,包括所有识别的蛋白质及其各自的肽数量和序列覆盖率。
图4。
图4。
MBD2招募PRMT5到染色质。(A) ChIP实验中使用的引物集的示意图。外显子用黑色矩形表示。CpG岛以灰色表示。底漆对用箭头表示。(B) MCF7细胞MBD2、MBD3、PRMT5和MTA2的ChIP分析。显示了控制BMX区域的相对占用率。数值是三个独立的染色质分离的ChIP实验结果的平均值和标准偏差。(C) 5-氮杂胞苷处理的MCF7细胞的ChIP分析。用抗MBD2、MBD3、MTA2、PRMT5和抗二甲基组蛋白H4(Arg3)的抗体进行免疫沉淀。显示了在控制BMX区域上的相对占有率。数值是三个独立的染色质分离的ChIP实验结果的平均值和标准偏差。

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引用人

参考文献

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