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自然。作者手稿;PMC 2015年6月4日提供。
以最终编辑形式发布为:
2015年3月18日在线发布。 数字对象标识:10.1038/自然14344
PMCID公司:项目经理4455927
NIHMSID公司:NIHMS692348
PMID:25799988

铁下垂作为p53介导的肿瘤抑制活性

摘要

尽管p53介导的细胞周期阻滞、衰老和凋亡是癌症发展的关键障碍,但新出现的证据表明p53的代谢活性也很重要。在这里,我们发现p53通过抑制胱氨酸的表达,抑制胱胺酸的摄取,并使细胞对铁下垂敏感,铁下垂是一种非凋亡形式的细胞死亡SLC7A11型是胱氨酸/谷氨酸反转运蛋白的关键成分。值得注意的是,p533公里,一种乙酰化缺陷突变体,不能诱导细胞周期停滞、衰老和凋亡,完全保留了调节能力SLC7A11型在活性氧(ROS)诱导的应激下表达并诱导铁凋亡。对突变小鼠的分析表明,这些非标准的p53活性有助于胚胎发育以及与丧失马里兰州2此外,SLC7A11在人类肿瘤中高度表达,其过度表达可抑制ROS诱导的铁凋亡并消除p533公里异种移植模型中介导的肿瘤生长抑制。我们的发现揭示了一种基于p53调节胱氨酸代谢、活性氧反应和铁下垂的肿瘤抑制新模式。

p53肿瘤抑制途径的失活是大多数人类癌症形成的关键事件15传统上,p53的肿瘤抑制活性被认为反映了其在细胞应激下诱导细胞周期阻滞、凋亡和/或衰老的能力。然而,最近的研究表明,p53的其他非常规活性对其抑癌功能也至关重要48p53蛋白作为一种DNA结合转录因子,选择性调节某些p53转录靶基因的表达,从而实现其多种细胞结果。应激诱导的p53蛋白激活主要通过翻译后修饰实现9,我们最近对表达乙酰化缺陷p53突变体的小鼠的研究表明,乙酰化对p53介导的细胞周期停滞、凋亡和衰老有不同的调节作用10值得注意的是,突变型p533公里多肽虽然对三种传统的p53功能有缺陷,但仍保留其肿瘤抑制功能和调节代谢靶点表达的能力10表明p53介导的代谢调节在抑制肿瘤形成中起着关键作用体内.

的标识SLC7A11型作为p53靶点

为了阐明p53介导的代谢调节的确切作用,我们试图通过生成用于微阵列分析的四环素控制(tet-on)p53诱导细胞系来识别新的p53靶基因。使用Partek软件对阵列数据进行了检查,并确定了诱导细胞和非诱导细胞之间差异表达的基因(扩展数据表1).SLC7A11型编码胱氨酸/谷氨酸反转运蛋白的一种成分1113,被鉴定为一个新的p53靶基因。而四环素治疗对SLC7A11型亲代H1299细胞中的表达SLC7A11型在tet-on p53诱导系中观察到mRNA表达(扩展数据图1a)western blot分析显示,p53激活严重降低了SLC7A11蛋白水平(图1a). 人类的5′侧翼区域SLC7A11型染色体4q28-31上的基因(参考13)包含一个与一致的p53结合序列匹配的位点(图1b)在高纯度重组全长人类野生型p53与含有该位点的放射性标记寡核苷酸探针孵育后,通过电泳迁移率变化分析(EMSA)很容易鉴定出p53–DNA复合物(图1c). 此外,这种p53–DNA复合物在p53特异性抗体的存在下发生超转移,并且由于与未标记探针的竞争而显著减少。此外,对人骨肉瘤U2OS细胞(表达野生型p53)的染色质免疫沉淀(ChIP)分析表明,内源性p53多肽占据了骨肉瘤的启动子区SLC7A11型基因(图1d). 此外,当p53被nutlin-3激活时,SLC7A11的蛋白水平显著降低14或者DNA受损(图1e扩展数据图1b). 相反,在p53敲除条件下,SLC7A11下调被完全消除(图1e). 在表达野生型p53的其他人类癌细胞系(H460和MCF-7)中也观察到类似的结果,而在p53缺失的细胞(H1299和SAOS-2)中没有检测到明显的作用(扩展数据图1c–e). 总之,这些数据表明SLC7A11型该基因是p53介导的转录抑制的靶点。

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的标识SLC7A11型作为p53的靶点

用多西环素处理的p53稳定系tet-on细胞的Western blot和RT-PCR。VIN,vinculin(车辆识别号)。b条,p53在人身上的结合位置和序列示意图SLC7A11型基因。将确定的p53结合序列与一致序列进行比较(R,A/G;W,A/T;Y,C/T;红色的核苷酸C和G对p53结合至关重要)。TSS,转录起始位点。面对的箭头表示在中生成探针的引物c(c)和PCRd日.c(c),使用指定的部件进行EMSA。双加号表示,与单加号相比,添加了更多竞争性冷探针(200倍于放射性标记热探针的100倍)。d日对U2OS细胞进行ChIP检测。e(电子)用nutlin处理p53基因敲除的U2OS细胞,并进行western blot分析。所有数据均代表三个独立实验。

扩展数据表1

通过微阵列分析在野生型p53诱导稳定系中鉴定p53调节基因
功能组基因符号基因名称参考序列折叠更改p值
运输代谢TIGAR公司TP53诱导的糖酵解和凋亡调节剂AY425618号4.558122.3798E-07号机组
SLC7A11型溶质载体家族7,(阳离子氨基酸转运体,y+系统)成员11AB026891号-2.666077.0681电子05
GLS2级谷氨酰胺酶2(肝脏、线粒体)AF110330型17.00114.8505E-09
赛斯1田菁1AF033122型9.781172009年9月9日
抽头1转运体1,ATP结合盒,B亚家族(MDR/TAP)AB012644号2.957287月1604E-08日
PANK1系列泛酸激酶1AY027661号5.726881.456E-06型
酸性磷酸酶2类似于碱性神经酰胺酶2;碱性神经酰胺酶2ENST00000340967标准5.346871.1182E-05号
SESN2号机组田菁2BC013304号2.592327.8217E-06号
CHAC1ChaC,阳离子转运调节物同源物1(大肠杆菌)BC001683号4.817064.0584E-08(电子版)
ORAI3公司ORAI钙释放酶激活的钙调节剂3BC015555号3.231297.6884E-06型
ABHD4型含4的脱水解酶结构域AK293198公司10.36181.1017E-09
ALDH1L2型醛脱氢酶1家族,L2成员AK300373公司13.02476.7912E-08号
ANK1型锚蛋白1,红细胞M28880型2.729173.7932E-06号
BCAT1公司支链氨基转移酶1,细胞溶质ENST00000261192号-2.640273.6497电子-07
CMBL公司羧甲基丁烯酸酶同源物(假单胞菌)ENST00000510532号机组5.00884.8907E-07号
DGKA公司双酰甘油激酶,α80kDaBC023523号5.925235.4931电子07
FDXR公司铁氧还蛋白还原酶AK298908公司7.052751.1567E-09号机组
PHGDH公司磷酸甘油脱氢酶AF171237型-1.310445.8696E-05号
GPT2项目谷丙转氨酶(丙氨酸氨基转移酶)2AL833351号2.785799.8714E-07号机组
KLHL24型kelch-like 24(果蝇)AK0000662.503941.6715E-06型
轻轨P1低密度脂蛋白相关蛋白1(α-2-巨球蛋白受体)阿克1228403.527841.1368E-08号机组
TM7SF2型跨膜7超家族成员2AF096304型6.939212.5897E-08
细胞周期与增殖CDKN1A/p21细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂1A(p21,Cip1)AK298901公司10.92251979年9月3日至09日
基站2BTG家族,成员2BC105948号14.95626.8143E-09
GADD45A公司生长停滞和DNA损伤诱导,αBC011757号2.933571.0756E-07号
CAV1型小窝蛋白1,小窝蛋白,22kDa290871肯尼亚先令2.650422047E-07年3月3日
CCNK公司细胞周期蛋白KBT006950型2.900749.9132E-07号机组
DUSP1型双特异性磷酸酶1AK298047公司3.064486.6673E-10号机组
PLK2号机组polo-like激酶2(果蝇)阿克2972985.307462.2421电子08
PLK3号机组polo-like激酶3(果蝇)AJ293866型18.20639.4625E-10型
RB1型视网膜母细胞瘤1299179肯尼亚先令2.697571.4404E-07号机组
SFN公司分层蛋白AF029082型3.455917.6309E-06页
TRIM22阀内件含三分基序22AK298934公司2.818655.2447E-05号
FBXW7型F-box和WD重复域包含7AF411971年3.236979.4834E-06号
ZMAT3公司锌指,苦参素3型AF355465型5.736076.5446电子-08
CCNE2公司细胞周期蛋白E2AF102778型-10.55639.6454E-09号
MNS1型减数分裂特异性核结构1恩斯特00000260453-2.973740.00015946
细胞凋亡BAX基因BCL2相关X蛋白L22474号1.887263.7902E-06号
TP53输入1肿瘤蛋白p53诱导核蛋白1AF409115型12.37112006年6月29日至09日
TP53I3型肿瘤蛋白p53诱导蛋白3ENST00000407482号15.1262.3803E-09型
TNFRSF10D公司死亡域AF021233型2.821974.2642E-07号
AIFM2型凋亡诱导因子,线粒体相关,2AF337957型2.99525.8401电子07
亚太地区1凋亡肽酶激活因子1AF013263型10.2862106年4月10日-10日
CASP6公司caspase 6,凋亡相关半胱氨酸肽酶BC000305号9.600752.8464E-08型
GDF15年生长分化因子15AB000584号13.12491.1527E-08号
PCBP4公司聚(rC)结合蛋白4AF176330型4.506939.552E-09号
性能参数PERP,TP53凋亡效应器BC010163型3.028631.9567E-08型
RPS27升核糖体蛋白S27-likeBC003667号3.538521.0771电子05
SCN3B公司钠通道,电压门控,III型,βBC117282号8.946594.3472E-08号
DDIT3公司DNA损伤诱导转录物3BC003637号2.633170.0001017
其他DRAM1(DRAM1)DNA损伤调节自噬调节剂1BC018435号3.673237.8723E-08号机组
MDM2型MDM2癌基因,E3泛素蛋白连接酶AF092845型7.4467354175E-08年
RRM2B型核糖核苷酸还原酶M2 B(TP53诱导型)恩斯特000003959104.536174.0021电子07
XPC公司色素沉着性干皮病,互补组CENST00000285021号机组2.724014.349E-05号
普卡B1蛋白激酶,AMP激活,β1非催化亚单位AK301165号3.355151.2744E-07号机组
ANKRA2公司锚蛋白重复序列,家族A(RFXANK样),2AF251051型12.56152.8927E-06型
APOBEC3C公司载脂蛋白B mRNA编辑酶,催化多肽样3CAF165520型4.858863.1852E-08号机组
ARID5B型AT富交互域5B(类似MRF1)AK296921公司3.568293.3834E-07号
骨形态发生蛋白6骨形态发生蛋白6AK300628公司-3.882077.2324E-07号
C4或F21第4染色体开放阅读框21AK090556公司-3.975721.401E-06年
C5ORF28型第5染色体开放阅读框28BC013351号-3.035535.0792电子05
加利福尼亚州1钙结合和螺旋结构域1AB040969号5.947563.9553E-08号机组
FERMT1型发酵素家族同源物1(果蝇)AB105105型4.288176.2732E-07版
服务贸易总协定GATS,基质抗原3对链124689肯尼亚先令4.135251.1626E-07号机组
MR1型主要组织相容性复合体,l类相关AF010446型4.568142.5677E-07型
PCDHB11型原钙粘蛋白β11BC112132号4.267813.3776E-05号
PCDHB14型原钙粘蛋白β14AF152493型2.765331839年4月5日
PLXNB2系列丛蛋白B2AK056543公司2.79781076E-08年1月1日
程序内皮蛋白C受体(EPCR)BC014451号3.279976.7976电子-08
VCAN公司云芝属植物ENST00000343200号15.27052.7969E-07号
WDR63型WD重复域63ENST00000294664(英语)19.34662008年4月1日
ZNF702P型锌指蛋白702假基因编号_0035783.998243.3623E-05号

p53对SLC7A11表达的调节3公里

我们之前的研究表明p533公里保持调节代谢目标的能力10测试p53的作用3公里为了调节SLC7A11的表达,我们建立了一个tet-on H1299细胞系,其中p533公里四环素可诱导表达。与我们之前的研究一致10,p533公里能够激活TIGAR和MDM2的表达,但不能激活p21(也称为CDKN1A)或PUMA(也称为BBC3)的表达。值得注意的是,在p53后的不同时间点,SLC7A11水平显著降低3公里诱导(图2a). 染色质免疫沉淀(ChIP)分析显示p533公里蛋白质能够结合SLC7A11型基因(图2b). 为了在更多生理环境下证实这一发现,我们检测了SLC7A11型小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)转录物来源于第53页+/+,第53页3公里/3公里第53页−/−老鼠。定量逆转录聚合酶链反应(RT–qPCR)分析显示SLC7A11型表达显著增加(~4倍)第53页−/−与野生型MEF相关的单元格(图2c扩展数据图1f). 然而,SLC7A11型转录水平在第53页3公里/3公里细胞,表明p533公里可以抑制SLC7A11型以类似于野生型p53的方式表达。此外,ChIP分析显示小鼠p53被招募到小鼠第7a11页野生型和p53中RE3位点对应引物的启动子区域3公里MEF,但不在p53-全部MEF中(扩展数据图1g,h). 这些数据表明乙酰化缺陷突变型p533公里保留其调节SLC7A11表达的能力体内.

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第53页3公里在调节中SLC7A11型和胱氨酸摄取活性

,Tet-on p533公里用强力霉素处理稳定的细胞,然后进行western blots和RT-PCR。b条,对野生型p53(p53重量)和p533公里稳定细胞系上的tet。c(c),信使RNA水平为第7a11页通过RT-PCR和Hprt(小时)作为内生控制。d日,测定p53中胱氨酸摄取活性(c.p.m.,每分钟计数)3公里稳定的细胞系。显示了两次技术复制的平均值±s.d。e(电子)在每个基因型的三个单独胚胎的MEF中测量胱氨酸摄取水平(c.p.m.)。所有数据独立重复三次,并显示代表。

胱氨酸摄取和铁下垂的调节

SLC7A11是质膜转运蛋白(x个c(c)系统)调节Na+-细胞外胱氨酸与细胞内谷氨酸的相互作用1113为了了解p53介导的SLC7A11表达抑制的功能后果,我们首先检查了p53激活对细胞摄取-[14C] -胱氨酸。事实上,tet-on p53的胱氨酸摄取水平3公里-四环素治疗后诱导细胞减少(图2d). 为了在更生理的环境中研究这种影响,我们还检查了第53页+/+,第53页3公里/3公里第53页−/−MEF公司。如所示图2e,胱氨酸摄取在第53页−/−MEF水平比第53页+/+MEF,验证了p53缺失促进细胞摄取胱氨酸。然而,我们没有检测到胱氨酸摄取在第53页3公里/3公里MEF细胞,提示p533公里保留抑制胱氨酸摄取的能力体内.

值得注意的是,最近的研究表明,SLC7A11的表达对铁下垂也至关重要,铁下垂是一种涉及代谢功能障碍的铁依赖性非凋亡细胞死亡15为此,我们通过用铁凋亡诱导剂橡皮素治疗早期传代MEF来检测p53是否影响细胞对铁凋亡的敏感性。虽然橡皮素在两种细胞中都诱导了高水平的细胞死亡(>48%)第53页+/+第53页3公里/3公里MEF,在p53-null细胞中仅观察到低水平(~20%)(图3a扩展数据图2a). 此外,在动力学分析中,很容易在两者中检测到细胞死亡第53页+/+第53页3公里/3公里治疗后6小时出现MEF(图3b). 虽然在p53-null细胞中也检测到一小部分细胞死亡,但对p53-nll细胞与第53页+/+第53页3公里/3公里暴露于不同浓度的橡皮素后,MEF在不同时间点非常明显(图3b扩展数据图2b). 通过对经橡皮素处理的细胞进行透射电镜观察,我们观察到线粒体萎缩,膜密度增加,但没有明显的DNA断裂(III和IV,图3c),TNF-α处理后凋亡细胞的特征形态学特征(扩展数据图2c). Western blot分析表明,橡皮素诱导的细胞死亡也未能诱导PARP1裂解和caspase 3激活,TUNEL分析证实了铁下垂中DNA片段缺失(扩展数据图2d–f).

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p53在细胞凋亡中的作用

,经4μM擦除处理8h的MEF代表性相控图像(放大倍率,×10)。b条,4μM橡皮素在24小时内诱导细胞死亡的动力学。显示了两个重复实验的平均值±标准差。PI,碘化丙啶。c(c),用二甲基亚砜(DMSO)或erastin处理野生型MEFs,并进行透射电子显微镜检查。箭头,原子核;箭头,线粒体。d日用橡皮素和特异性细胞死亡抑制剂处理MEF 8 h,并测定细胞死亡百分比(两个技术复制品的误差条,s.d.)。3-MA,3-甲基腺苷。所有数据均代表三个独立实验。

为了证实橡皮素诱导的细胞死亡模式,我们用铁抑制素-1(ferr-1)处理细胞,ferr-1是一种特异性铁下垂抑制剂15值得注意的是,ferr-1完全挽救了这两种细胞的死亡第53页+/+第53页3公里/3公里MEF公司(图3d). 相反,其他形式的细胞死亡抑制剂,包括自噬(3-甲基腺苷)、凋亡(Z-VAD-FMK)和坏死性凋亡(坏死抑制素-1),未能抑制橡皮素诱导的细胞死亡(图3d扩展数据图2g)尽管它们具有抑制自噬、坏死和凋亡的能力,但在相同的MEF中(扩展数据图3a–e). 此外,一些额外的铁沉降抑制剂15也被证明能有效阻断p53介导的细胞凋亡第53页3公里/3公里MEF公司(扩展数据图3f). 总之,这些数据表明p533公里保留调节细胞摄取胱氨酸和促进铁下垂的能力。

SLC7A11在细胞凋亡和肿瘤抑制中的作用

先前的研究表明SLC7A11型在几种人类癌症中观察到过度表达1618在对20对人类肿瘤与邻近正常组织进行分析后,我们观察到SLC7A11型约70%的人类癌症样本(8/10结肠肿瘤样本、3/5肝脏肿瘤样本和3/5肾脏肿瘤样本)过度表达(扩展数据图4a–c). 为了进一步评估其在肿瘤发生中的作用,我们使用共焦显微镜在这些组织切片上对SLC7A11进行了免疫荧光染色分析。如所示图4a膜标记物(ATP1A1)(绿色)和SLC7A11(红色)均主要定位于质膜上。更重要的是,尽管ATP1A1(绿色)在正常和癌组织中的水平相似,但与邻近的正常细胞相比,恶性细胞中的SLC7A11水平(红色)明显更高(另见扩展数据图4d). 尽管SLC7A11型所有p53突变肿瘤中的水平都升高,SLC7A11型表达野生型p53的肿瘤也发生上调(扩展数据图4e)这表明其他因素也可能影响人类癌症中SLC7A11的表达。

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p53介导的细胞凋亡的调控SLC7A11型

,配对结肠癌和邻近正常组织SLC7A11的代表性免疫荧光染色。H&E、苏木精和伊红(放大倍数,×20)。左上角的数字是来自一名结肠癌患者的正常/癌症组织对的特定组织识别号。b条,Tet-on p533公里用过表达SLC7A11的对照或质粒转染细胞,然后按指示进行处理。显示了两个技术复制的细胞死亡定量(平均值±标准差)。c(c),tet-on p53的西方bot分析3公里有或无SLC7A11过度表达的细胞。VIN,vinculin(车辆识别号)。d日,来自tet-on p53的异种移植瘤3公里中显示的单元格c(c).e(电子),确定肿瘤重量(误差条,来自四个肿瘤的s.d.)。独立实验重复了三次,并显示了具有代表性的数据。

为了探讨p53介导的SLC7A11和铁凋亡在人类癌细胞中的作用,我们首先检测了橡皮素对tet-on p53的影响3公里-可诱导H1299细胞。正如预期的那样,在缺乏p53的情况下,这些细胞对擦除素介导的铁下垂具有很强的抵抗力3公里感应(图4b扩展数据图5a); 相反,在四环素诱导p53后,观察到高水平的细胞死亡(>80%)3公里在橡皮素的存在下。再次,p53诱导的铁凋亡活性3公里在ferr-1的存在下被抑制(扩展数据图5b). 值得注意的是,SLC7A11过度表达将这些细胞从p53中拯救出来3公里-依赖性铁下垂(图4b)也废除了p533公里-菌落形成的介导性减少(扩展数据图5c–e). 这些数据表明,SLC7A11在人类肿瘤样本中过度表达,异位表达SLC7A1可以抑制p53诱导的铁凋亡3公里在人类癌细胞中。

为了验证p53介导的对SLC7A11表达的影响在调节肿瘤抑制活性中的作用,而不依赖于细胞生长停滞、凋亡和衰老,我们测试了SLC7A1过度表达是否影响p53诱导的肿瘤生长抑制3公里在异种移植瘤模型中。根据p533公里四环素诱导的表达(图4c)p53-null H1299细胞的生长显著降低(图4d,III vs.I)在异种移植瘤生长试验中;然而,p53的抑瘤作用3公里在SLC7A11过度表达的情况下基本上被废除(图4d,IV与III,另见图4e). 这些数据表明,SLC7A11的表达对p53诱导的肿瘤生长抑制活性至关重要3公里.

p53在胚胎发育中的代谢调控

几项研究表明,p53在细胞凋亡、细胞生长停滞和衰老中的典型活性是在第53页+/+百万平方米−/−小鼠胚胎,在发育的E3.5–E5.5天死亡1924为了评估p53的非规范性活动是否与该表型有关,第53页3公里/3公里百万平方米+/−对小鼠进行杂交,并对其后代进行基因分型。考虑到p533公里突变体未能诱导p53介导的细胞周期阻滞、凋亡或衰老10,我们惊讶地发现第53页3公里/3公里百万平方米−/−这些杂交后代中的幼崽(扩展数据图6a、b). 因此,通过定时杂交获得的胚胎第53页3公里/3公里百万平方米+/−对小鼠进行了检查。到E7.5天,第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎p53染色显著升高,但发育结构基本正常(图5a),表明p533公里突变引发了胚胎发育的实质性拯救。正如预期,尽管p53高3公里表达式,第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎没有显示出凋亡水平的增加,正如没有裂解caspase-3染色所示(图5a)和负TUNEL信号(扩展数据图6c、d). Ki67和BrdU染色的水平也表明第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎(图5a扩展数据图6d). 进一步分析证实了p53的高水平3公里蛋白,缺乏裂解的胱天蛋白酶-3,并且缺乏p21或PUMA的诱导第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎(扩展数据图6e,f). 此外,我们没有检测到任何细胞对衰老相关β-半乳糖苷酶活性呈阳性染色第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎(扩展数据图6g–i)表明这些胚胎中没有衰老细胞。

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p53介导的胚胎发育代谢调控

对E7.5胚胎进行代表性苏木精和伊红(H&E)和免疫组织化学染色,显示基因型(放大倍率,×20)。b条,信使RNA表达水平第7a11页在具有指定基因型的E9.5胚胎中(误差条,s.d。;n个=3用于第53页3公里/3公里百万平方米+/+n个=所有其他基因型为5)。c(c),用二甲基亚砜或ferr-1处理的E14.5胚胎的代表性形态(放大倍数,×1.5)。d日,信使RNA表达水平第2部分确定方法与b条所有数据均独立重复至少三次,并显示代表性数据。

然而,第7a11页mRNA表达在第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎(图5b)到E11.5天第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎变得非常明显(扩展数据图7a). 探讨p53介导的铁粒细胞凋亡是否与胚胎发育缺陷有关第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎,我们在E5.5天将铁下垂抑制剂ferr-1注入腹腔,并在E14.5天收集胚胎。如所示图5c,铁-1-处理第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎在E14.5(II)天表现出明显的器官发生,例如眼睛形成和肢体分化,而在未经治疗的时候第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎被大量切除(我也看到扩展数据图7b). 康复者的身体尺寸(从头部到尾部)第53页3公里/3公里百万平方米−/−经过ferr-1治疗后,胚胎也显著增大,眼睛结构也显著改善(扩展数据图7c、d). 最近的一项研究确定PTGS2的上调是脱铁性贫血的潜在分子标记25。如所示图5d,第2部分第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎;相反,第2部分中的级别未受影响第53页−/−百万平方米−/−胚胎,表明第2部分上调第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎依赖p53。综上所述,这些数据表明,p53介导的代谢调节和铁中毒细胞死亡的作用对观察到的胚胎发育缺陷起着关键作用第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎。

ROS反应中p53介导的铁下垂

为了在更生理的环境中评估铁下垂的调节,我们检测了p53是否3公里-ROS应激反应涉及介导的铁中毒细胞死亡。ROS处理方法已在前面描述26,27。如所示图6a,两个p53均未观察到明显的细胞死亡3公里诱导或单独ROS治疗。然而,值得注意的是,p53的结合3公里诱导和ROS处理诱导了大量细胞死亡,并被ferr-1特异性抑制(图6a扩展数据图8a)或SLC7A11过度表达(图6b). 这些数据表明p53的激活3公里在ROS应激下导致细胞铁质降解死亡,与细胞周期阻滞、衰老和凋亡无关。

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p53介导的ROS脱铁反应

,Tet-on p533公里用强力霉素和ROS以及特异性细胞死亡抑制剂处理细胞24小时。Nec-1、坏死抑制素-1(放大倍数×10)。b条,Tet-on p533公里用过表达SLC7A11的对照或质粒转染细胞,然后用强力霉素和活性氧处理16小时。显示了两个技术复制品的细胞死亡定量(平均值±标准日)。c(c)图像采集时,用nutlin和ROS处理p53敲除的U2OS细胞24小时。d日、由野生型或第7a11页-BAC转基因小鼠。VIN,长春花。e(电子)用ROS或橡皮素处理来自指定基因型的MEF 8小时,显示了两个技术复制品的细胞死亡定量(平均值±标准差)。所有实验均独立进行了三次,并显示了具有代表性的数据。

最近的研究表明,野生型p53蛋白可以被nutlin-3在人类肿瘤中激活(参考14). 在大多数人类癌细胞中,nutlin-3介导的p53激活可诱导可逆的细胞周期阻滞,但不会导致细胞死亡28,29这可能会限制其在癌症治疗中的疗效。因此,我们检测了Mdm2抑制是否可以调节p53介导的人类癌细胞中的铁凋亡。正如预期的那样,nutlin-3对U2OS细胞的治疗诱导了高水平的p53表达,但没有引起细胞死亡,而ROS单独治疗也未能引起细胞死亡反应,因为ROS没有诱导强烈的p53激活(图6c扩展数据图8b、c). 然而,在与nutlin和ROS联合治疗时观察到大量细胞死亡(图6c). 细胞死亡反应是p53依赖性的,因为它在内源性p53被敲除后被废除(图6c扩展数据图8c)细胞死亡再次被铁凋亡抑制剂ferr-1挽救(扩展数据图8d). 有趣的是,尽管DNA损伤剂如足叶乙甙和阿霉素也能在U2OS细胞中诱导高水平的细胞死亡,但铁-1处理不能抑制DNA损伤诱导的细胞死亡(扩展数据图8e,f)表明p53介导的铁下垂是由ROS特异性诱导的,而不是由DNA损伤诱导的。

最后,为了评估SLC7A11在更多生理条件下对铁下垂的调节,我们构建了过度表达SLC7A1的BAC转基因小鼠(第7a11页细菌人工染色体,第7a11页-巴克)(扩展数据图9). 虽然第7a11页-BAC小鼠需要进一步分析,我们从这两种小鼠中导出了MEF第7a11页-BAC小鼠及其对照鼠。如所示图6d,SLC7A11蛋白水平在第7a11页-BACMEF相对于控制MEF。值得注意的是,ROS或橡皮素治疗在野生型MEF中诱导了高水平的铁下垂,但在第7a11页-BAC小额金融机构(图6e). 总的来说,这些数据表明p53介导的铁中毒是由ROS特异性诱导的,SLC7A11的水平对p53介介导的铁中毒反应至关重要。

讨论

虽然人们普遍认为p53介导的细胞周期阻滞、凋亡和衰老都是肿瘤抑制的主要机制,但越来越多的证据表明,p53的其他活性,如代谢调节,也对肿瘤抑制至关重要10虽然已经确定了一些p53的代谢靶点,如TIGAR、GLS2和SCO23037目前尚不清楚p53的代谢功能如何影响其抑瘤活性。这里我们显示,通过转录抑制SLC7A11型p53是胱氨酸/谷氨酸反转运蛋白的一种成分,它抑制胱氨酸类物质的摄取,并使细胞对非凋亡形式的细胞死亡铁下垂敏感。此外,p53基因3公里突变体在p53依赖性细胞周期阻滞、凋亡和衰老方面存在缺陷,它保留了抑制SLC7A11表达的能力,从而调节胱氨酸代谢和铁中毒细胞死亡。使用第53页3公里/3公里百万平方米−/−突变小鼠,我们进一步表明p53功能的这一方面对胚胎发育和与丧失百万平方米铁下垂与代谢功能障碍相关,代谢功能障碍导致细胞溶质和脂质活性氧的产生,而不依赖线粒体15,25.通过压制SLC7A11型转录,p53激活降低胱氨酸的摄取,从而限制细胞内谷胱甘肽(GSH)的产生,GSH是主要的细胞抗氧化剂。因此,ROS诱导的p53活化细胞的铁下垂敏感性显著增加。值得注意的是,SLC7A11在许多类型的人类癌症中过度表达,并且SLC7A1的水平对铁中毒反应的敏感性至关重要。通过使用p533公里在异种移植瘤模型中发生突变,我们表明SLC7A11的高水平表达导致p53诱导的肿瘤生长抑制活性显著减弱3公里与细胞周期阻滞、凋亡和衰老无关。

我们的数据表明p53介导的转录抑制SLC7A11型对ROS诱导的铁下垂至关重要。尽管如此,额外的p53靶基因可能有助于这种新的p53反应。未来的研究需要阐明p53的其他代谢靶点在调节铁凋亡中的作用。有趣的是,以前的研究表明,p53通过上调代谢靶点(如TIGAR(也称为C12或f5)和GLS2)来改善氧化应激,这些代谢靶点可降低细胞内ROS水平3037然而,我们发现高水平的活性氧可以触发p53介导的铁凋亡(图6),与观察到的脱铁性贫血的特征是致命的铁依赖性脂质ROS积累一致15,25虽然许多研究表明活性氧在新陈代谢和致瘤基因中都存在,但细胞对活性氧反应的机制尚不清楚。然而,p53对细胞活性氧水平的不同影响表明了一个有趣的模型。作为对低或基础活性氧水平的反应,p53可能阻止细胞积累致命的活性氧水平,同时也允许中度氧化损伤的存活和修复。然而,为了应对较高或不适当的活性氧水平(如癌细胞中的活性氧),p53可能反而通过铁下垂促进无法出售的癌细胞的清除。这个模型让人联想到p53对细胞对DNA损伤的不同反应16在这种情况下,p53激活促进细胞存活和基因毒性损伤的修复(通过促进细胞周期检查点和DNA修复的靶基因),以应对低水平的DNA损伤;然而,严重的DNA损伤后,p53介导的高水平凋亡细胞死亡会永久清除受损细胞。总之,我们的研究结果表明,p53介导的对胱氨酸代谢、ROS反应和脱铁细胞死亡的影响代表了一种新的肿瘤抑制机制。

方法

细胞培养和稳定系

细胞之前从美国型培养物收集中心(ATCC)获得,并保存在含有5%CO的37°C培养箱中2所有使用的培养基都补充有10%的FBS、100单位/ml青霉素和100μg ml−1链霉素。在DMEM培养基中培养H1299、U2OS和MCF7细胞;McCoy的5A培养基中的SOAS-2细胞。根据标准程序从第13.5天的胚胎中产生MEF。用于MEF的FBS经过热灭活,并添加1%的非必需氨基酸。为了产生可诱导的稳定系,将野生型和3KR(K117R、K161R和K162R)小鼠p53互补DNA克隆到tet-on pTRIPZ诱导表达载体(Thermo Open Biosystems)中。在使用Lipofectamine 2000(Invitrogen)进行转染之前,所有序列都已得到确认,然后使用嘌呤霉素(1μg ml−1)在含有10%不含四环素的FBS的DMEM培养基中。为了诱导p53的表达,0.1μg/ml−1向培养基中添加强力霉素。为了产生稳定敲除p53的细胞,用GIPZ短发夹RNA(shRNA)非沉默对照或针对TP53(Thermo Scientific)的shRNA感染U2OS细胞,靶序列如下:3LHS_333919、TACACATGTTGTAGTG和3LHS_33.3920、TCTCTCTGCGCCG。然后用嘌呤霉素(1μg ml)筛选细胞−1)持续2周。

微阵列和统计分析

用强力霉素(0.1μg ml)诱导小鼠野生型p53稳定细胞−1)提取总RNA前0或24小时。RNA通过RNeasy柱(Qiagen)进一步纯化,并按照制造商的说明处理用于表达微阵列(Affymetrix人类基因ST 1.0)。每种条件都有技术副本。阵列数据通过Partek软件(第6.6版)进行分析,并选择差异表达的基因(错误发现率校正P(P)值小于0.05)扩展数据图1.双尾学生的t吨-测试用于两组和a组之间的比较P(P)小于0.05的值被认为具有统计学意义。没有使用统计方法预先确定样本量。

质粒和转染

全长cDNASLC7A11型通过PCR从人类HeLa Marathon-Ready cDNA(Clonetech)中扩增并克隆到TOPO(Invitrogen)或pCIN4-HA表达载体中。根据制造商的协议,使用Lipofectamine 2000(Invitrogen)进行质粒转染。

染色体免疫沉淀分析法

该程序基本上如前所述执行38稍作修改。简言之,将细胞在室温下用1%甲醛交联10分钟,并通过添加甘氨酸至0.125M的最终浓度进行中和。用冷PBS洗涤两次后,收集细胞并将其悬浮在冷裂解缓冲液中(10 mM Tris-Cl,pH 8.0,85 mM KCl,0.5%NP40,5 mM EDTA,0.25%triton和1×蛋白酶抑制剂)。在冰上孵育10分钟后,收集细胞核并将其重新悬浮在LB3缓冲液中,然后进行声波处理,以获得200-500个碱基对的DNA片段。将涂有特定抗体或IgG对照物的磁珠添加到裂解液中并培养过夜。第二天,用洗涤缓冲液(50 mM HEPES,pH 7.5,500 mM LiCl,1 mM EDTA,1%NP-40和0.7%Na-deoxycholate)洗涤珠子七次,用TE缓冲液洗涤一次,然后从珠子中洗脱蛋白质-DNA复合物。在55°C下反向交联过夜后,提取DNA并通过PCR、2%琼脂糖凝胶电泳或定量PCR进行分析。

肿瘤样本的RNA提取、RT-PCR和测序

根据制造商的方案,使用TRIzol(Invitrogen)分离总RNA。按照制造商的方案,通过M-MuLV逆转录酶和随机引物9(NEB)逆转录1微克总RNA。使用Advantage 2 PCR试剂盒(Clontech)在每个引物对的PCR周期线性范围内进行半定量RT-PCR。使用7500快速实时PCR系统(Applied Biosystems)和标准协议进行定量PCR。为了确定p53突变状态,提取RNA并对每个患者肿瘤样本进行RT-PCR。使用标准程序对全长p53 PCR产物进行凝胶纯化和测序。

PCR引物

对于RT-PCR:人类SLC7A11型正向,TCATTGGAGCGAATCTTCA,反向,TTCAGCATAAGTCCA;人类GAPDH正向,ATCAATGGAAATCCCATCACA,反向,GACTCCACGACGTACTCAGCG;鼠标第7a11页正向,CCTCTGCCAGCTTATTGTT,反向,CCTGGCAAAACTGAGGAAAAT;鼠标Hprt公司向前,TCCTCCTCAGACCGCTTTT,向后,CCTGGTTCCATCGCTAATC。定量RT-PCR:人类SLC7A11型正向,ATGCAGTGGCAGTGACCTTT,反向,GGCAAAAGATCGGAACTG;人类GAPDH公司,与RT-PCR所用引物相同;鼠标第7a11页正向,TGGGTGAACTGTCGTAAT,反向,AGGATGAGTGCCAAAATGC;鼠标第2部分正向,GGGAGTCTGGAACATTGTGAA,反向,GTGCACATTGAAGTAGGTGGACT;鼠标彪马前进,ACGACCTCAACGCAGTACG,后退,GAGGAGTCCACATGAGAGTG;鼠标Hprt(小时),与RT-PCR所用的引物相同。对于ChIP–PCR:人类SLC7A11型正向、AGGCTTCTCATGTGGCTGAT、反向、TGCATCGTGCTCAATTCT(使用相同的引物生成EMSA探针);人类第21页正向,CTTTCACCATTCCCTACCC,反向,AATAGCCACCCCTCTTCT;人类ChIP控制区正向,AGGAGAGGACTTCGACAACCG,反向,CAGGTCCTTCCCATGCTTCC;鼠标第7a11页p53 RE1正向,TGCCGACTGATAGCTGAG,反向,AAAACTTCAAAGTGGTTAAAA;鼠标第7a11页p53 RE2正向,GTTCTGGGAAAATGCTTTGGA,反向,CGTGGAAGGCTCCG TATTTA;鼠标第7a11页p53 RE3正向,GTCATCGGATCAGCATCTT,反向,ACACACACCCAGA。

蛋白质印迹和抗体

使用含有10mM Tris-Cl、pH 8.0、150mM NaCl、1%Triton X-100、1%脱氧胆酸钠、1mM EDTA、0.05%SDS和新鲜1×蛋白酶抑制剂的RIPA缓冲液从细胞中裂解蛋白质。在聚丙烯酰胺凝胶中均匀加载和分离蛋白质之前,使用生物-Rad蛋白质分析法通过Bradford方法测定浓度。然后将蛋白质转移到Hybond ECL膜(GE healthcare),并与针对SLC7A11(ab37185,abcam)、p53(人类:Do-1,SantaCruz;小鼠:CM5,Leica生物系统)、MDM2(Ab5,Millipore)、TIGAR(E-2,Santa Cruz)、PUMA(H-136,Santa Cruz),p21(SX118,Santa Cruz)和裂解caspase 3(9664,Cell Signaling)、,LC3B(3868,细胞信号传导)、PARP(9532,细胞信号转导)、β-肌动蛋白(A3853,Sigma-Aldrich)、维库林(V9264,Sigma Aldrich,维库林)和血凝素(11867431001,罗氏)。在与ECL(GE healthcare)或SuperSignal West Dura试剂(Thermo scientific)孵育后,使用HRP结合的二级抗体,并在放射自显影胶片上检测western blot信号。

集落形成分析

用空载体或标记p53转染H1299细胞3公里,血凝素标记的SLC7A11表达质粒。转染后48小时将细胞分裂,以每皿1000个细胞的密度接种到10厘米的培养皿中,并在G418(600μg/ml−1)为期12天。然后将细胞固定在冰镇甲醇中,并用结晶紫溶液染色。使用ImageJ统计可见菌落的数量。

电泳迁移率变化分析

从转染的293细胞中纯化标记野生型p53蛋白。含有p53结合位点的DNA探针SLC7A11型PCR扩增,用γ标记-32P-dATP通过T4激酶(NEB)纯化,并使用Bio-Spin 30柱(Bio-Rad)纯化。蛋白质-DNA结合反应(总计20μl)包含20 mM HEPES、pH 7.6、80 mM NaCl、0.1 mM EDTA、12.5%甘油、2mM MgCl2、2 mM亚精胺、0.7 mM DTT、200 ngμl−1牛血清白蛋白,20 ngμl−1剪切鲑鱼精子DNA、10-20 fmol DNA探针和200 ng Flag–p53。在超位移分析中,向反应中添加200 ng抗p53 pAb421抗体(Millipore)。使用超过100或200倍的非放射性标记探针与32P标记的放射性探针。

药物、细胞死亡抑制剂和活性氧治疗

除非另有说明,否则所有药物均从Sigma-Aldrich订购。Ferrostatin-1来自Xcess Biosciences。药物或细胞死亡抑制剂的使用浓度如下:nutlin-3a,10μM;铁-1,2μM;3-甲基腺苷,2 mM;坏死抑素-1,10μg ml−1; Z-VAD-FMK,10μg ml−1; DFO,100μM;U0126,5μM;β-ME,50μM和NAC,1 mM。ROS由叔丁基过氧化氢(TBH)生成。实验中使用的TBH浓度如所示图6为:60μM图6a,100μM用于图6b,350μM图6c和200μM图6e橡皮素为1μM。当加入含有TBH的培养基时,细胞约50%融合。在开始橡皮素或TBH治疗的同时添加特定的细胞死亡抑制剂。

细胞死亡分析

对于涉及p53激活的细胞死亡分析,p53被强力霉素(在tet-on稳定细胞中)或胡桃素(在癌细胞中)预先激活24小时,然后用橡皮素或TBH治疗。对于细胞死亡的量化,将细胞进行胰蛋白酶化,用台盼蓝染色,然后用血球仪按标准程序计数。染色为蓝色的细胞被视为死亡细胞。通过碘化丙啶染色和FACS分析进一步证实了细胞死亡的定量。

胱氨酸摄取测定

在六孔板中培养的细胞在预先加热的钠中清洗两次+-含有137 mM氯化胆碱、3 mM氯化钾、1 mM氯化钙的自由摄取缓冲液2,1 mM氯化镁2,5毫微米d日-葡萄糖,0.7 mM K2高性能操作4和10 mM HEPES(pH 7.4)。然后在37°C的1 ml摄取缓冲液中培养细胞10分钟。用含有-[3,3′-14C] 胱氨酸(0.2μCi ml−1)(PerkinElmer),并在37°C下孵育3分钟。然后用冰镇吸收缓冲液清洗细胞三次,然后添加600μl NaOH(0.1M)以溶解细胞。将细胞裂解物(80μl)加入1ml闪烁液中,并进行放射性14在闪烁计数器中获得每分钟C计数(CPM)。

免疫荧光、免疫组织化学、TUNEL、BrdU分析和透射电镜

将来自定时繁殖的冷冻人类癌症组织或固定小鼠蜕膜切割为5μm,并根据标准程序使用针对人类SLC7A11(编号12691,细胞信号技术)、小鼠p53(CM5,徕卡)、BrdU(Ab6326,Abcam)、Mki67(Ab15580,Abcan)和裂解caspase3(9664,细胞信号)的抗体进行免疫染色。根据制造商的说明(Promega),使用DeadEnd TUNEL系统进行TUNEL分析。在第E7.5天以100μg BrdU/g体重向怀孕小鼠腹腔注射BrdU(BD Pharmagen)。2小时后,收集胚胎并在4°C的10%福尔马林中固定过夜。胚胎用石蜡包埋,采集连续切片进行BrdU染色。纽约大学显微镜中心使用标准程序进行了透射电子显微镜检查。对于每个感兴趣的结构,至少采集了20幅图像,并显示了具有代表性的图像。

衰老相关β-半乳糖苷酶活性测定

根据公布的程序检测衰老相关β-半乳糖苷酶活性39简言之,胚胎用0.2%戊二醛固定在PBS中,并在添加2 mM MgCl的PBS中清洗2然后在X-gal溶液(1 mg ml)中对胚胎进行染色−1X加仑,5 mM K铁(CN)6,5毫微米K4铁(CN)6和2 mM氯化镁2在PBS中)在37°C下过夜。然后将胚胎在10%福尔马林中过夜固定。

第7a11页-BAC转基因小鼠的产生

第7a11页-BAC转基因小鼠通过原核注射小鼠BAC(RP24-42E11,仅含有第7a11页基因)在哥伦比亚大学转基因小鼠共享资源中使用标准程序。共确定了三名创始人,并确认了种系传播。

救援第53页3公里/3公里百万平方米−/−老鼠

定时繁殖设置为第53页3公里/3公里马里兰州2+/−交叉。从第E5.5天开始,将二甲基亚砜对照品或铁-1(每20 g体重100μl 100μM溶液)注射到怀孕小鼠的腹腔内,每天注射一次。在第E14.5天收集胚胎并成像。使用从卵黄囊中提取的DNA确定基因型。本研究中使用的所有小鼠均为C57bl/6j和SV129菌株的混合物。本研究中执行的所有程序均由哥伦比亚大学动物护理和使用委员会批准。

小鼠异种移植

汇集的稳定细胞系来自H1299 tet-on p533公里通过转染对照载体或过表达载体的细胞SLC7A11型细胞由G418(1 mg ml)选择−1)2周,然后使用或不使用强力霉素(0.5μg ml−1)40小时。电池(1.5×106)然后以1:1的比例(体积)与Matrigel(BD Biosciences)混合,并皮下注射到裸鼠体内(NU/NU,Charles River)。给小鼠喂食对照食物或含有盐酸多西环素的食物(哈伦,625 mg kg−1). 注射后四周,对小鼠实施安乐死,并从皮肤下解剖肿瘤。

扩展数据

扩展数据图1

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SLC7A11型p53下调小鼠p53表达及p53结合位点的鉴定第7a11页基因

,信使RNA水平SLC7A11型在用强力霉素(0.1μg ml)处理的tet-on野生型p53稳定细胞系和亲代H1299细胞中−1).b条,用阿霉素(0.2μg ml)处理U2OS细胞−1)mRNA定量。c(c)用阿霉素(0.2μg ml)处理骨肉瘤细胞系U2OS(p53野生型)和SAOS-2(p53无效)细胞−1)测定mRNA水平。d日用阿霉素(0.2μg ml)处理肺癌细胞系H1299(p53缺失)和H460(p53野生型)细胞−1)RT-PCR检测mRNA表达。e(电子),用阿霉素(0.2μg/ml)处理乳腺癌细胞系MCF7−1)在指定的持续时间内,使用RT-qPCR测量mRNA表达。(f),RT-qPCR用于测定第7a11页在具有指定基因型的MEF中。,示意图,表示小鼠上潜在的p53结合位置和序列第7a11页基因。TSS,转录起始位点;浅蓝色盒子,5′-UTR。小时,对用坚果素(10μM)处理6 h的MEF进行ChIP–qPCR。所有qPCR在两个技术重复中进行,显示平均值±标准差。所有实验均独立重复三次。

扩展数据图2

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MEF中橡皮素诱导细胞死亡的特征

,量化细胞死亡,如所示图3a误差条是两个技术副本的s.d。b条,在具有指定基因型的MEF中,橡皮素(1μM)在24小时内诱导的细胞死亡动力学。进行了技术复制,并显示了平均值±标准差(n个= 2).c(c),用TNFα(20 ng/ml)处理的野生型MEFs的透射电子显微镜图像−1)和CHX(5μg ml−1)16小时,箭头指向碎片核。d日用小鼠TNFα(20 ng ml)治疗野生型MEF−1)和CHX(5μg ml−1)或橡皮素(1μM)8小时,然后进行蛋白印迹。e(电子),TUNEL分析是使用野生型MEF进行的d日.(f),TUNEL信号的量化e(电子).显示了十个随机显微镜视图的平均值±标准差(放大倍数,×20)。在拍摄图像之前,用橡皮素(4μM)和特异性细胞死亡抑制剂处理显示p53状态的MEF 8小时(放大倍数×10)。3-MA,3-甲基腺苷。所有实验至少重复了三次,并显示了具有代表性的数据。

扩展数据图3

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细胞死亡抑制剂的有效性

,野生型MEF细胞在缺乏葡萄糖、丙酮酸钠或-谷氨酰胺加或不加3-甲基腺苷(2 mM)2小时,然后进行蛋白印迹。b条用TNFα(20 ng ml)处理野生型MEF 48 h−1)、SMAC模拟物(100 nM)和Z-VAD-FMK(10μg ml−1)在存在或不存在坏死抑制素-1(10μg/ml)的情况下诱导坏死−1)(放大倍数,×10)。c(c),量化细胞死亡,如所示b条PI,碘化丙啶。显示了两个技术复制品的平均值±标准差。d日用TNFα(20 ng ml)处理野生型MEF 48 h−1)、SMAC模拟物(100 nM)和坏死抑制素-1(10μg ml−1)在有或无Z-VAD-FMK(10μg ml)存在的情况下诱导细胞凋亡−1)(放大倍数,×10)。e(电子),量化细胞死亡,如所示d日显示了两个技术复制品的平均值±标准差。(f),第53页3公里/3公里用橡皮素(4μM)和各种化学物质处理MEF 24小时,然后测定细胞死亡百分比;两个技术复制品的误差条。二甲基亚砜;DFO、去铁胺;U0126,1,4-二氨基-2,3-二氰基-1,4-双[2-氨基苯硫代]丁二烯;β-ME,β-巯基乙醇;N-乙酰NAC--半胱氨酸。所有实验均独立重复三次。

扩展数据图4

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SLC7A11在人类癌症患者肿瘤中过度表达

a–c,定量RT-PCR用于测定SLC7A11型来自结肠的配对正常组织和癌组织(),肾脏(b条)和肝脏(c(c)); 正常组织中的平均表达水平在每种类型的癌症中标准化为1。显示了两个技术复制品的平均值±标准差。d日SLC7A11在成对患者癌症和邻近正常组织冰冻切片上的代表性heamotoxylin和eosin(H&E)和免疫荧光染色。放大倍数,×20。N、 正常组织;C、 癌组织。蓝色,DAPI;绿色,抗ATP1A1;红色,抗SLC7A11。e(电子),对结肠癌样本进行DNA测序,并鉴定出特定的突变。独立实验重复了三次,并显示了具有代表性的数据。

扩展数据图5

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p53诱导的细胞死亡3公里橡皮素是铁凋亡和SLC7A11过度表达对菌落形成的影响

,中处理的细胞培养物的代表性相位对比图像图4b(放大倍数,×10)。b、 第53页3公里按指示处理tet-on稳定系细胞,并量化细胞死亡百分比(DFO,去铁胺;U0126,1,4-二氨基-2,3-二氰基-1,4-双[2-氨基苯硫代]丁二烯;β-ME,β-巯基乙醇;NAC,N-乙酰基--半胱氨酸)。显示了两个技术复制品的平均值±标准差。c、 24小时后用所示质粒转染H1299细胞,然后进行western blot。HA、血凝素d、转染到c.e的10-cm平板中的集落形成试验的代表性图像,集落形成分析的量化如d.所示。对照平板中形成的集落数量标准化为100,显示了两个技术复制品的平均±s.d。所有实验都重复了三次,并显示了具有代表性的数据。

扩展数据图6

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第53页3公里/3公里百万平方米−/−小鼠胚胎致死

,Mdm2状态基因分型的代表性凝胶图像第53页3公里/3公里背景老鼠。b条,从中回收的活胚胎和幼崽数量摘要第53页3公里/3公里百万平方米+/−杂交育种。c(c)显示基因型E7.5胚胎的血红素和曙红(H&E)、p53免疫组化染色和TUNEL分析(放大倍率×20)。d日TUNEL或BrdU阳性细胞的百分比通过计数三个不同胚胎每个切片中的100个细胞来确定。误差线,s.d。;N.S.,不显著。e(电子)用E9.5胚胎的全胚胎提取物进行western blot。作为阳性对照,使用辐照(IR)野生型小鼠胸腺蛋白裂解物(8Gy)。(f),信使RNA表达水平彪马使用具有指定基因型的E9.5胚胎通过RT–qPCR进行测定(n个=3用于第53页3公里/3公里百万平方米+/+n个=5,用于第53页3公里/3公里百万平方米−/−; 误差线,s.d。;N.S,不显著)。,使用指定基因型的E9.5小鼠胚胎进行的整体衰老相关β-半乳糖苷酶染色的代表性图像(放大倍率,×2)。小时,与中的协议相同用于染色对照野生型胚胎和表达β-半乳糖苷酶的HAUSP杂合敲除物的胚胎40(放大倍数,×2)。,使用与(放大倍数,×10)。

扩展数据图7

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Ferrostatin-1部分挽救第53页3公里/3公里百万平方米−/−老鼠

,所示基因型E11.5小鼠胚胎的代表性形态(放大倍数,×3)。b条,从第53页3公里/3公里百万平方米+/−交叉注入或不注入ferr-1。星号标记的虚线突出显示了死者的尸体第53页3公里/3公里百万平方米−/−胚胎,进一步解剖后解体(放大倍数×1.5)。c(c),头尾长度第53页3公里/3公里百万平方米−/−对胚胎进行测量并与第53页3公里/3公里百万平方米+/+控件(n个=每组4第53页3公里/3公里马里兰州2−/−含或不含铁-1处理的胚胎;误差条,s.d.)。d日,眼部结构的代表性苏木精和曙红(H&E)染色第53页3公里/3公里百万平方米+/+第53页3公里/3公里百万平方米−/−小鼠胚胎(放大倍数,×20和×40,如图所示)。

扩展数据图8

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nutlin/ROS协同作用下的铁下垂

,细胞死亡百分比如所示图6a被量化。显示了两个技术复制品的平均值±标准差。b条对p53稳定敲除的U2OS细胞进行nultin(10μM)处理24 h,然后添加ROS(叔丁基过氧化氢,350μM)4 h。进行蛋白质印迹。c(c),量化细胞死亡,如所示图6c显示了两个技术复制品的平均值±标准差。d日U2OS细胞首先用胡桃素(10μM)处理24 h,然后用活性氧(叔丁基过氧化氢,350μM)和指示的细胞死亡抑制剂处理;24h后定量细胞死亡。两个技术复制品的误差条,s.d。e(电子)用DNA损伤剂(足叶乙甙,20μM;阿霉素,0.2μg ml)处理U2OS细胞−1)48小时,无论是否存在铁-1(2μM)(放大倍数,×10);细胞死亡在(f)显示平均值±标准差(n个=2个技术副本)。所有数据独立重复三次。

扩展数据图9

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BAC转基因小鼠的制备第7a11页过度表达

,显示生成过程的示意图第7a11页-BAC转基因小鼠。b条、小鼠周围BAC的快照第7a11页基因。BAC(RP24-242E11),仅包含第7a11页选择基因进行注射。c(c)BAC构建物两端的PCR鉴定创始者(编号21和编号22)为BAC转基因阳性小鼠。d日,在c(c).NC,无模板控件。e(电子)、来自3周龄对照和第7a11页-用western blots对BAC转基因小鼠进行裂解和检测。(f),将具有指定基因型的MEF细胞作为图6e持续2 h,通过RT-qPCR测定mRNA水平。显示了两个技术复制品的平均值±标准差。,中处理的细胞代表性图像图6e(放大倍数,×10)。

致谢

这项工作得到了美国国立卫生研究院国家癌症研究所的支持,获得了W.G颁发的5R01CA172023、5RO1CA166294、5RO1A 169246、5RO1 CA085533和2P01CA080058等奖项。此外,美国国立癌症研究所还向R.B.和W.G授予了2P01CA 097403等奖项。内容完全由作者负责,不一定代表国家卫生研究院的官方观点。L.J.和S.-J.W.得到了NIH癌症生物学培训拨款T32-CA09503的支持。我们感谢S.Mendrysa提供Mdm2突变小鼠。

脚注

在线内容方法以及任何其他扩展数据显示项和源数据都可以在论文的在线版本中获得;这些章节独有的参考文献仅出现在在线论文中。

作者贡献实验由L.J.、N.K.和W.G.构思和设计。实验主要由L.J和N.K.进行。一些实验是在T.L、S.-J.W.、T.S.、H.H.和R.B.的帮助下进行的。论文由J.L.、N.K、R.B.和W.G撰写。

作者信息可以通过登录号为GSE57841的NCBI基因表达综合数据库(GEO)访问微阵列数据。

作者声明没有相互竞争的经济利益。

欢迎读者对该论文的在线版本发表评论。

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