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乳腺癌研究。2012; 14(1):R15。
2012年1月20日在线发布。 数字对象标识:10.1186/bcr3099
预防性维修识别码:项目经理3496132
PMID:22264265

原发性乳腺癌患者循环肿瘤细胞中干细胞和上皮-间质转换标记物的表达

摘要

介绍

乳腺癌中循环肿瘤细胞(CTC)的存在可能与干细胞样肿瘤细胞有关,这些细胞被认为是原发性肿瘤转移扩散的活跃来源。此外,为了能够传播和转移,CTC必须能够进行上皮-间充质转化(EMT)。我们研究了502名原发性乳腺癌患者CTC中三种EMT标志物和干细胞标志物ALDH1的表达。数据与骨髓中播散性肿瘤细胞(DTC)的存在以及患者的临床病理数据相关。

方法

共2×5 ml血液用CTC分析AdnaTest乳腺癌(AdnaGen AG)检测EpCAM、MUC-1、HER2和β-Actin转录本。另外,对回收的c-DNA进行三种EMT标记物[TWIST1、Akt2、磷脂酰肌醇激酶-3(PI3Kα)]的多重检测,并分别检测肿瘤干细胞标记物ALDH1。如果在样本中检测到至少一个标记,则认为EMT标记鉴定阳性。采用全细胞角蛋白抗体A45-B/B3免疫细胞化学法对所有患者的两次骨髓抽吸物进行DTC分析。

结果

被调查的30名健康献血者样本中,97%的EMT和95%的ALDH1转录物为阴性。在97/502(19%)名患者中检测到CTC。至少有一个EMT标记分别在29%和14%的样本中表达。有趣的是,根据CTC阳性的临界值,ALDH1阳性的5%和EMT阳性的18%患者为CTC阴性AdnaTest乳腺癌107/502(21%)的患者在BM中检测到DTC,BM状态与CTC阳性之间没有相关性(P(P)= 0.41). CTC、EMT和ALDH1的表达与任何预后临床标志物无关。

结论

我们的数据表明:(1)一部分原发性乳腺癌患者表现出EMT和干细胞特征,(2)目前使用的CTC检测方法无法有效识别经历EMT的CTC亚型。(3) 必须在前瞻性试验中进一步评估预后和治疗反应的临床相关性。

介绍

骨髓(BM)中的播散性肿瘤细胞(DTC)和血液中的循环肿瘤细胞(CTC)被认为是微小残留疾病(转移性疾病的前兆)的潜在替代标记物。它们在原发性乳腺癌患者的血液和BM中的存在是降低无病生存率和总生存率的一个强有力的独立预后因素[1-4]。此外,已经证明肿瘤细胞经常能在化疗后存活[56]并且在常规辅助化疗后持续存在于骨髓和血液中与预后不良相关[7-9].

目前讨论的关于这些细胞持续存在的一个假设是,一些DTC或CTC是癌症干细胞,被认为是原发性肿瘤转移扩散的活跃来源[1011]。对于DTC,至少有一项研究证实了一种假定的干细胞表型,显示CD44+CD24型-在所有细胞角蛋白(CK)阳性患者的骨髓中检测到细胞,而其在DTC总数中的平均发病率为72%[12].

在转移性乳腺癌患者中发现的CTC中,32%具有干细胞样表型CD44+CD24型-17%的CTC对另一个最近提出的干细胞标记物醛脱氢酶1(ALDH1)阳性[13]这与不同类型乳腺癌的预后不良有关[1415]。此外,原发性和转移性乳腺癌患者的CTC表达EGFR/HER2/PI3K/Akt通路的受体和激活的信号激酶[16]被描述为调节乳腺干/祖细胞、促进增殖和抑制凋亡的主要途径之一[17]。我们最近证明,原发性乳腺癌患者的CTC通常为三阴性[18],这与癌症干细胞理论一致[1920].

为了能够从原发肿瘤扩散和转移,肿瘤细胞必须经历表型变化,即上皮-间充质转化(EMT),这使得它们能够在不受常规治疗影响的情况下转移到形成转移的部位。对于CTC,EMT和干细胞特征最近在92例乳腺癌患者的所有阶段都有记录[21]。在转移性乳腺癌中,我们能够表明,癌症患者血液中发现的CTC的大部分具有EMT和肿瘤干细胞特征,表达EMT和癌干细胞标记物的CTC是耐药细胞群的指标,因此预后较差[22].

到目前为止,还没有大量原发性乳腺癌患者的数据。假设转移需要肿瘤干细胞或显示EMT的肿瘤细胞的传播,我们研究了(1)EMT标记物Akt2、磷脂酰肌醇激酶-3α(PI3K-α)和转录因子TWIST1的表达,以及(2)干细胞标记物ALDH1在502例原发性乳腺癌患者分离的CTC中的表达。数据与BM中DTC的存在和患者的临床病理数据相关。

材料和方法

患者群体和患者特征

这项研究在埃森的妇产科和图宾根的妇产科进行。总共对502名原发性乳腺癌患者(pT1-4、pN0-2、Mo)进行了研究。患者在诊断时的特征如表所示表11.

表1

患者临床数据

特点总计CTC位置单位:%P(P)-价值
总计5029719-
肿瘤大小
第1页32258180.32
第T2-4页1803922
节点状态
阴性34065190.79
积极的1593220
组织学
管道39278200.83
小叶的771317
其他30620
分级
G I公司9518190.68
G II公司2905318
G III类1132522
ER状态
积极的41577190.34
阴性872023
请购单状态
积极的38272190.63
阴性1202521
HER2状态
阴性43783190.50
积极的621423
DTC(故障诊断码)
阴性36769190.41
积极的1072421
IHC的子类型
(ER、PR、HER2)5814240.62
(ER、PR、HER2+)1718
(ER+和/或PR+)4248019

IGROV-细胞系

卵巢癌细胞系购自ATCC(美国组织培养收藏中心,美国马里兰州罗克维尔),并在37°C的加湿培养箱中在5%CO的环境中培养2和95%的空气。细胞系保存在添加了10%热灭活胎牛血清和1%青霉素/链霉亲和素(Biochrom KG,Seromed,Berlin,Germany)的RPMI培养基中。

健康对照

从30名年龄在23岁至73岁之间的健康献血者中总共采集了5毫升血液,用于测定ALDH1和EMT标志物的应用测试的特异性和敏感性。

BM的收集和分析

手术时从所有原发性乳腺癌患者的髂前嵴抽取10至20 ml BM,并在24小时内进行处理。所有标本均在书面知情同意后获得,并使用机构审查委员会批准的方案收集(114/2006A/05/2856)。肿瘤细胞分离和检测是根据德国老年学共识小组最近发布的标准化肿瘤细胞检测建议进行的[23]。染色程序和细胞检测的细节已在其他地方描述[18].

血液取样

在使用S-单体反应器应用治疗物质之前,收集两×5ml EDTA血液以分离CTC®(Sarstedt AG&Co.,Nümbrecht,德国),并在4°C下储存,直到进一步检查。抽血后立即或不迟于4小时处理样本。另外采集一份血清样本以测定血清肿瘤标志物。

肿瘤细胞富集/选择

采集502名患者的血样,并用CTC进行分析AdnaTest乳腺癌(AdnaGen AG,德国朗根哈根),可实现肿瘤细胞的免疫磁性富集通过上皮和肿瘤相关抗原。简言之,血液样本与一种现成的抗体混合物(针对GA733-2和MUC-1)进行培养,该抗体混合物的商业化为AdnaTest乳腺癌选择根据制造商的说明。用磁粉浓缩器(MPC)提取标记细胞。随后,根据制造商的说明,使用Dynabeads mRNA DIRECT从裂解、富集的细胞中分离mRNAMicro Kit(德国汉堡Dynal Biotech GmbH),包含在AdnaTest乳腺癌检测逆转录产生cDNA,cDNA是肿瘤细胞检测和多重RT-PCR鉴定的模板。感官说明®逆转录酶(QIAGEN GmbH,Hilden,Germany)用于逆转录,因为它的高灵敏度(推荐用于<50 ng RNA的数量)与mRNA的寡核苷酸(dT)偶联Dynabeads直接结合Micro Kit(Dynal Biotech GmbH)符合制造商说明[24].

肿瘤细胞检测

这个前列腺癌检测用于通过反转录和PCR检测免疫磁性富集肿瘤细胞中乳腺癌相关基因的表达。在多重PCR中对三种肿瘤相关转录物HER2、MUC-1和GA 733-2进行CTC分离的肿瘤相关mRNA分析,然后将样品保存在4°C。

ER和PR受体的引物来自Adnagen®AG(德国朗根哈根)。在制备cDNA后,根据AdnaTest乳腺癌检测.PCR使用HotStarTaq Master Mix(QIAGEN GmbH)进行。肌动蛋白作为PCR内阳性对照。用于嵌套式RT-PCR的热曲线如下:在95°C下变性15分钟后,通过94°C变性30秒、60°C退火/延伸30秒和72°C延伸30秒,进行37个PCR循环。随后,在72°C下终止反应5分钟,然后将样品储存在4°C下。

引物产生的片段大小如下:GA 733-2:395碱基对(bp),MUC-1:293 bp,HER2:270 bp,actin:114 bp。使用2100生物分析仪,使用DNA 1000 LabChips(安捷伦技术和专家软件包(版本B.02.03.SI307),在德国勃林根对PCR片段进行可视化。

评估为反恐委员会建立的数据

如果明确检测到至少一个肿瘤相关转录物(MUC-1、GA 773-2或HER2)的PCR片段,则认为该试验阳性。使用软件包评估安捷伦2100生物分析仪上的数据,转录物GA733-2、MUC-1和HER2的浓度大于0.15 ng/μl的峰值为阳性。

AdnaTest肿瘤干细胞/AdnaTest EMT

这两项测试都需要使用AdnaTest乳腺癌选择在单重PCR分析ALDH1和多重PCR分析EMT标记和肌动蛋白作为内部对照之前。通过使用特殊的清洗程序(AdnaWash缓冲液),污染的白细胞(每个样品约1500个)减少了10倍。这使得EMT和肿瘤干细胞表达谱能够正确分化,特异性>90%,这在健康供体样本中得到了证实。

用于EMT多重RT-PCR的热曲线如下:在95℃下变性15分钟后,通过在94℃下变性30秒、在60℃下退火/延伸30秒和在72℃下延伸45秒进行35个PCR循环。随后,在72°C下终止反应10分钟,然后将样品储存在4°C下。引物产生的片段大小分别为:Akt-2:306 bp、TWIST 1:203 bp、PI3Kα:595 bp和Actin:119 bp。

用于ALDH1单复合体PCR的热曲线如下:在95°C下变性15分钟后,通过94°C变性30秒、51°C退火/延伸30秒和72°C延伸30秒进行35个PCR循环。随后,在72°C下终止反应5分钟,然后将样品储存在4°C下。ALDH1生成的片段大小为165 bp。

原发肿瘤的免疫组织化学分析

根据WHO乳腺肿瘤分类,对502例患者中的每一例进行肿瘤类型、TNM分期和分级评估[25]第六版TNM分类系统[26]。在各大学医院的病理科中,通过免疫组织化学常规检测ER和PR受体状态。HER2表达的DAKO-Score是通过HercepTest测定的,在用HercepTest测定的2+染色的情况下进行FISH分析,如其他地方所述[27]。细节已在其他地方描述[18].

统计分析

采用χ2检验或Fisher精确检验评价DTC和CTC与临床病理因素的关系。使用SPSS 11.5版进行统计分析(SPSS Inc.,美国伊利诺伊州芝加哥)。P(P)-低于0.05的数值被认为具有统计学意义。

结果

患者特征

研究共纳入502名患者。临床数据详见表表1。1大多数患者的肿瘤小于2cm,呈结节阴性。502例患者中共有415例(82%)为ER阳性,502例中382例为PR阳性。502例患者中有62例(12%)出现HER2表达。根据ER、PR和HER2的表达将肿瘤分为亚型,424/502(85%)的肿瘤为ER和/或PR阳性,58/502(12%)为三重阴性(ER-/PR-/HER2),17个肿瘤(3%)仅表达HER2(ER-/PR-/HER2+)。

CTC与已建立的预后标志物的相关性

如果三种标记物EPCAM、MUC-1或HER2中至少有一种表达,则血样被视为CTC阳性。CTC总检出率为19%(97/502例)。CTC的存在与任何临床病理因素均无显著相关性。在107/502例(21%)患者中发现DTC。BM阳性状态与CTC阳性之间也没有相关性(P(P)= 0.41; 表11).

CTC和EMT标记物/ALDH1的相关性

进一步检查所有样本的ALDH1和EMT标记,并与CTC的存在相关。在446/502例患者中可以确定CTC检测的完整数据集、ALDH1的表达以及EMT标记物。至少有一个EMT标记在29%的样本中表达(Akt2 27%;PI3K 17%;TWIST 1%),ALDH1分别存在于14%的样本(图(图1)。1). 在CTC中+组,92名患者中有66名(72%)至少一种EMT标志物呈阳性,92名患者中有42名(46%)ALDH1呈阳性。在反恐委员会-组中,百分比分别为18%(354名患者中的63名)和5%(353名患者中有19名)(图(图2)。2). 表22显示了对CTC中单个标记分布的更详细分析+和CTC-组。在反恐委员会+EMT标记的表达率为1%(TWIST)、70%(Akt2)和52%(PI3Kα),CTC中的表达率-组的百分比分别为1%、16%和8%(表(表2)。2). EMT标记物或ALDH1阳性与任何临床病理因素无关。

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EMT标记和ALDH1的表达至少有一个EMT标记分别在29%和14%的样本中表达。

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EMT标记物和ALDH1在CTC+和CTC-患者中的表达.在反恐委员会+组中,92例患者中66例(72%)至少一种EMT标记物阳性,92例中42例(46%)ALDH1阳性。在反恐委员会-组为18%(354例中63例)和5%(19/353例)。

表2

CTC阳性和CTC阴性患者EMT标志物和ALDH1的表达

N个电子病历AKT公司PI3K系列扭转N个ALDH1位置
CTC阴性35463 (18%)57 (16%)28 (8%)2(1%)35319 (5%)
CTC位置9266 (72%)64 (70%)48人(52%)1(1%)9242 (46%)
总计446129 (29%)121 (27%)76 (17%)3 (1%)44561 (14%)

讨论

在几项临床研究中,使用美国食品药品监督管理局批准的CellSearch技术对乳腺癌中CTC的计数已经得到了很好的证实,表明在治疗开始前,原发性和转移性乳腺癌的无进展生存率和总生存率下降相关[28-31]。监测研究为乳腺癌患者的管理提供了有价值的临床信息,目前正在进行的一项前瞻性随机临床试验正在解决是否在治疗三到五周后根据CTC的持续性改变现有治疗方案的问题,而不是等待临床和转移性乳腺癌患者进展的放射学证据[SWOG S0500,clinicaltrials.gov,标识符:NCT00382018号].

尽管CTC计数对乳腺癌的预后有影响,主要是使用基于EpCAM的捕获方法,但已有研究表明,该方法无法检测到CTC的全部高度异质性人群[3233]。此外,对其生物学特征了解甚少,据推测只有少数CTC能够发展为临床上明显的转移瘤[34]。此外,目前的观点是,EMT过程,也在原发肿瘤中,在与所谓乳腺癌干细胞生成有关的转移级联的侵袭步骤中起着关键作用[35].

考虑到所有这些因素,我们应用多标记RT-PCR分析鉴定CTC相关转录物,使用抗体“鸡尾酒”捕获上皮来源的CTC。该测试程序已成功应用于妇科癌症中CTC的检测和表征,并显示出对转移性乳腺癌患者和近期原发性卵巢癌患者的预后价值,这些患者在手术前和基于铂的化疗后检测CTC与总生存率降低显著相关[18223637]。有趣的是,最近的一份出版物表明,AdnaTest通过提高整体检测率和允许评估转移性乳腺癌患者CTC中的基因组标记物来补充CellSearch系统[38]。通过对502例原发性乳腺癌患者的分析,我们利用这项技术证明,一部分患者表现出EMT和干细胞特征,而目前使用的CTC检测方法无法有效识别经历EMT的CTC亚型或显示肿瘤干细胞表型。据我们所知,这是迄今为止公布的最大的患者队列,分析了这些CTC特征。

至少有一个EMT标记分别在29%和14%的样本中表达。最近在较小患者群体中发布的数据支持我们的数据。雷蒙迪等。研究了92例乳腺癌患者在疾病各个阶段EMT和干细胞标记物的表达。使用CTC的标准定义为EpCAM+/CK+/CD45-,作者在31/92(34%)名患者中没有发现。CTC的缺失被定义为富集的EpCAM阳性部分缺乏表达。然而,在12/31(38%)的CK阴性细胞中,他们发现EMT标记物的表达,特别是波形蛋白和纤维连接蛋白。他们得出结论,目前的CTC检测方法低估了参与癌症传播的CTC中最重要的亚群,这些亚群通常具有EMT和干细胞特征[21]。这些数据与我们的研究结果相一致,表明根据CTC阳性的临界值,ALDH1阳性的5%和EMT阳性的18%患者为CTC阴性AdnaTest乳腺癌.

鲁本等。评估原发性乳腺癌患者BM中Aldeflour+上皮细胞(CD326+CD45dim)是否存在CD44+CD24lo表型。他们报告称,具有高危肿瘤特征的原发性乳腺癌患者骨髓中CD44+CD24lo癌干细胞的百分比较高。此外,接受新辅助化疗的患者比最高水平的健康献血者更有可能获得Aldeflour+上皮细胞百分比[11].

在一项包括292名转移性乳腺癌患者在内的回顾性研究中,在患者使用CellSearch系统开始新的治疗路线之前,对CTC进行了计数。36%的患者未检测到CTC。在多变量分析中,脑转移和骨受累仍是与未检测到的CTC状态相关的独立变量。此外,荷尔蒙受体阴性、肿瘤分级高、三阴性疾病和炎性乳腺癌患者检测不到CTC的可能性增加。作者认为,这些发现可能是由于CellSearch对CTC的估计不足,部分原因是CTC正在接受EMT[39]。本研究的第二个观察结果是,骨转移的缺失与CTC状态的检测不到有显著相关性。

这再次提出了一个经常被问到的问题,即检测DTC的BM分析是否可以被检测CTC的血液采样所取代。在我们目前的研究以及我们最近发表的研究中,对431名原发性乳腺癌患者的DTC和CTC进行了比较,我们记录了骨髓和血液中存在这些细胞之间的微弱一致性,结论是这些细胞的生物学可能不同[18]。这些数据与其他比较研究一致,一般来说,DTC和CTC之间的相关性很低[40-43]。简言之,CTC的检测似乎不太敏感,预后较差,原发性乳腺癌患者的预后取决于DTC而非CTC。然而,最近发表的另外两项研究发现,RT-PCR测定CTC状态所传达的临床相关信息并不亚于乳腺癌中的DTC状态[4445]。总之,血液分析可以为BM分析提供补充信息。

对这种现象有不同的解释。1) 梅戈所述的CTC缺席等。也可能取决于反恐委员会标准选择程序的不足。大多数选择程序仅基于EpCAM,这可能会在EMT过程中丢失。2) EMT细胞降解周围基质,也允许非EMT肿瘤细胞的分离和扩散。因此,DTC和CTC可能反映原发肿瘤的异质性肿瘤细胞群,包括分化的和更多的干细胞样肿瘤细胞。3) 人们还可能推测,骨转移需要不同的播散或上皮分化机制。

PTEN/Akt/mTOR途径已被描述为:1)作为调节乳腺干/祖细胞的主要途径之一,2)对常规治疗产生耐药性,3)在乳腺癌干细胞的生存和维持、促进增殖和抑制凋亡中发挥中心作用[1746]。此外,接受EMT治疗的细胞对抗癌药物产生耐药性[47].

只有少数研究涉及反恐委员会的这些方面。通过使用共焦激光扫描显微镜分析28例CK阳性和17例CK阴性患者的外周血单个核细胞胞浆,在17个CK阳性样本中的15个样本中记录到磷酸化PI-3激酶(phosphoto-PI3K)[48]。在最近的一项研究中,作者分析了32例细胞角蛋白-19 mRNA阳性的早期乳腺癌患者和16例转移性乳腺癌患者的外周血单个核细胞,并报告了磷酸化PI3K/Akt在CTC中的显著比例[16]。这些数据支持本研究的数据以及我们最近发表的转移性乳腺癌的数据,这些数据表明,CTC的大部分表达PI3K、Akt2以及转录因子TWIST和ALDH1,这与治疗耐药和预后不良有关[22].

总之,CTC中干细胞和EMT标记物的表达与常规抗癌治疗的耐药性和治疗失败有关,这突显了改进检测和消除微小残留疾病工具的紧迫性[49]。因此,对于治疗和诊断意义,强烈建议检测干细胞样细胞。维持癌症干细胞的信号通路是这些治疗的诱人靶点。临床前,依维莫司(RAD001)是一种作用于PI3K/AKT通路下游的mTOR口服抑制剂,已被证明可逆转对三苯氧胺的耐药性。在一项II期研究中,与单独使用他莫昔芬相比,RAD001联合他莫昔芬可显著提高6个月的临床受益率[50]。此外,RAD001对肿瘤干细胞具有有效的抑制作用在体外体内并且,与RAD001和多西紫杉醇或Herceptin联合治疗®可能对难治性转移性乳腺癌有效[51]。此外,针对Shh和mTOR信号抑制的联合治疗,以及标准化疗,证明能够选择性地消除癌症干细胞[52].

等。证明化疗后剩余的致瘤细胞具有增强自我更新的独特特性,如乳房球的形成和肿瘤形成倾向的增加。此外,拉帕替尼并没有导致这些致瘤细胞的增加,因此,结合常规治疗,特异性通路抑制剂可以提供消除这些细胞的治疗策略,以减少复发和提高长期生存率[53]。另一种有希望的药物是盐霉素,其全球基因表达分析表明,盐霉素治疗导致乳腺癌干细胞表达缺失[54].

结论

癌症干细胞假说是一种新的范式,通过提出癌症治疗的新靶点,可能对疾病的治疗产生重大影响。目前的癌症治疗方法已显示出在去除大部分分化癌细胞的同时未能消除导致肿瘤复发的癌干细胞的有效性。以具有干细胞自我更新特性的残留细胞为靶点,结合常规化疗,可能提供一种预防癌症复发和提高长期生存率的具体方法。

缩写

AdnaGen股份公司:AdnaTest乳腺癌; AdnaGen是一家公司:AdnaTest BreastCancer是一家商业公司;CTC试验ATCC:美国组织培养文集;BM:骨髓;CK:细胞角蛋白;CTC:循环肿瘤细胞;DTC:播散性肿瘤细胞;EMT:上皮-间充质转化;MPC:磁性粒子集中器;PI3Kα:磷酸肌醇激酶-3α。

竞争性利益

作者声明,他们没有相互竞争的利益。

作者的贡献

SKB、OH和TF对研究的概念和设计、数据采集、数据分析和解释做出了重大贡献。TF和SKB参与了手稿的起草或修订。所有作者阅读并批准了最终手稿。

致谢

这项研究的部分资金由联邦教育和Forschung部长提供(BMBF,01ES0724)。我们感谢我们的技术人员Silke Dürr-Stürzer、Gisela Köstner和Ute Kirsch提供的出色技术援助。

工具书类

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文章来自乳腺癌研究:BCR由以下人员提供BMC公司