美国国家科学院院刊。2006年5月2日;103(18): 6901–6906.
胃泌素释放肽磷酸化TNF-α转化酶诱导双调节蛋白释放和EGF受体活化
,* ,† ,† ,† ,*‡ ,§ ,‡¶ ,‖和*†‡**
吉尔·M·齐格弗里德
*药理学,以及
‡匹兹堡大学癌症研究所,匹兹堡,宾夕法尼亚州15213;
惠州风扇
§新泽西州皮斯卡塔韦市罗伯特·伍德·约翰逊医学院新泽西医科大学生理学和生物物理系,邮编08854;和
托马斯·E·史密斯加尔
*药理学和
‡匹兹堡大学癌症研究所,匹兹堡,宾夕法尼亚州15213;
戈登·米尔斯
‖德克萨斯大学安德森癌症中心分子治疗学系,德克萨斯州休斯顿,邮编77030
詹妮弗·鲁宾·格兰迪斯
以下部门†耳鼻喉科,
*药理学和
‡匹兹堡大学癌症研究所,匹兹堡,宾夕法尼亚州15213;
以下部门†耳鼻喉科,
*药理学和
¶匹兹堡大学医学院分子遗传学和生物化学
‡匹兹堡大学癌症研究所,匹兹堡,宾夕法尼亚州15213;
§新泽西州皮斯卡塔韦市罗伯特·伍德·约翰逊医学院新泽西医科大学生理学和生物物理系,邮编08854;和
‖德克萨斯大学安德森癌症中心分子治疗学系,德克萨斯州休斯顿,邮编77030
乔治·斯塔克(George R.Stark)编辑,克利夫兰诊所基金会,俄亥俄州克利夫兰,2006年3月23日批准
作者贡献:Q.Z.、V.W.Y.L.、J.M.S.、H.F.、T.E.S.、G.B.M.和J.R.G.设计研究;Q.Z.、S.M.T.和S.X.进行了研究;H.F.和T.E.S.提供了新的试剂/分析工具;Q.Z.、T.E.S.、G.B.M.和J.R.G.分析数据;Q.Z.、G.B.M.和J.R.G.撰写了这篇论文。
- 补充资料
支持信息
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摘要
G蛋白偶联受体诱导EGF受体(EGFR)信号传导,导致癌细胞增殖和侵袭。通过G蛋白偶联受体阐明EGFR激活的机制可能会发现新的信号范式。胃泌素释放肽(GRP)/GRP受体介导的自分泌途径先前在头颈部鳞癌中被描述。在本研究中,我们证明了TNF-α转换酶(TACE),一种去整合素和金属蛋白-17,经历了Src-依赖性磷酸化,调节GRP治疗后EGFR配体双调节蛋白的释放。进一步研究表明磷脂酰肌醇3-激酶(PI3-K)是c-Src和TACE的中间产物,有助于它们的结合和TACE磷酸化。磷脂酰肌醇依赖性激酶1(PDK1)是PI3-K的下游靶点,已被确定为先前未描述的激酶,在GRP治疗后直接磷酸化TACE。这些发现表明GRP-Src-PI3-K-PDK1-TACE-增白素-EGFR的信号级联具有多个相互作用点、易位点和磷酸化。此外,PDK1的敲除增强了EGFR抑制剂厄洛替尼的抗肿瘤作用,表明PDK1是改善EGFR抑制剂临床反应的治疗靶点。
关键词:G蛋白偶联受体与头颈部鳞状细胞癌
上皮性癌的特征是表皮生长因子受体(EGFR)过度表达,这一观察结果导致了阻止该生长因子受体的治疗策略的发展。在EGFR激活突变的非小细胞肺癌(NSCLC)患者群体中,EGFR靶向治疗的反应引人注目(1,2). 然而,在NSCLC和其他癌症中,没有激活EGFR突变的患者的反应频率是有限的,但并非没有(三–5). 尽管在临床前模型中观察到了强健的活性,但大多数患者的这些适度临床反应的基础尚不完全清楚。除了配体直接激活EGFR外,EGFR还可以被多种细胞类型的G蛋白偶联受体(GPCR)反式激活,包括成纤维细胞、平滑肌细胞、神经元和肿瘤细胞(6–9). EGFR激活后,肿瘤细胞表现出增殖、侵袭、生存和化疗抵抗增加(10).
GPCR诱导EGFR信号传导的机制涉及细胞内和细胞外途径(11). GPCR对EGFR的激活被认为是由Src家族激酶、磷脂酰肌醇3-激酶(PI3-K)和/或PKC信号介导的(11). 据报道,Src家族激酶可调节结肠癌细胞系Caco-2、胃上皮细胞RGM1、Cos-7细胞、GT1-7神经元细胞、肺癌细胞201T和头颈癌细胞中GPCR配体诱导的EGFR磷酸化(12–16). PI3-K也与GPCR和EGFR串扰有关(17–19). 除了参与GPCR诱导的EGFR激活的细胞内分子外,越来越多的证据表明跨膜金属蛋白酶介导EGFR脯氨酸和脱落,以响应GPCR配体(8,20–23). 累积结果表明,参与EGFR脯氨酸裂解的金属蛋白酶是细胞型和GPCR配体特异性的。据报道,基质金属蛋白酶2和9分别在乳腺癌细胞和促性腺细胞中介导雌激素受体/GPCR配体诱导的EGFR配体裂解(24,25)而去整合素和金属蛋白酶(ADAM)10与蛙皮素或溶血磷脂酸诱导的Cos-7细胞中的肝素结合EGF裂解和EGFR激活有关(23). TNF-α转化酶(TACE)已被证明能介导卡巴胆碱或溶血磷脂酸诱导的头颈部鳞状细胞癌(SCCHN)细胞原角蛋白调节素释放和下游EGFR和丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)激活(26). 然而,精确的细胞内信号级联将GPCR刺激与金属蛋白酶激活和EGFR信号耦合仍不完全清楚。
我们以前报道过Src家族激酶调节胃泌素释放肽(GRP)诱导的EGFR前体和切割,导致SCCHN下游EGFR和MAPK激活,从而促进细胞增殖和侵袭(15,27). 此外,使用2A11抗体阻断内源性GRP可降低SCCHN细胞增殖和肿瘤生长体内(28). 在这里,我们显示在GRP处理SCCHN细胞后,Src与TACE相关。这种联系伴随着Src和TACE的磷酸化和移位到细胞膜。GRP使TACE磷酸化需要Src家族激酶和PI3-Ks。进一步研究证实,磷脂酰肌醇依赖性激酶1(PDK1)是直接介导GRP诱导的TACE磷酸化的激酶。敲除PDK1可增强EGFR抑制剂的抗肿瘤作用。这些结果表明PDK1是癌症的治疗靶点,GPCR对EGFR的反式激活有助于肿瘤进展。
结果
GRP诱导TACE和c-Src关联。
我们之前证明,Src家族激酶通过促进SCCHN中栓系EGFR配体的释放,有助于GRP诱导的EGFR和MAPK活化(15). 对GPCR激活的EGFR配体裂解可由几种金属蛋白酶介导,包括ADAM家族成员(8,20,21). 许多ADAM在其细胞质结构域上富含脯氨酸残基,特别是PXXP共有序列,使其能够与多种细胞内蛋白质中的Src同源3结构域相互作用(29). 事实上,TACE已被证明有助于凝血酶和溶血磷脂酸诱导的EGFR激活(20,26). 因此,我们通过Src同源性3结构域相互作用与TACE的物理结合,检查了Src家族激酶是否有助于EGFR配体裂解。
为了测试TACE和c-Src是否可以组成性地或在GPCR激活后结合,我们用WT c-Src-表达质粒转染HEK-293细胞,然后进行共免疫沉淀。在这个模型中,c-Src转染后TACE和c-Src-关联增加,并且这种关联在TACE免疫沉淀中是特定的(图8一和b条,作为支持信息发布在PNAS网站上)。为了研究GRP在生物相关系统中对内源性TACE和c-Src相关性的影响,用GRP处理SCCHN细胞(PCI-37A和PCI-15B),然后进行TACE和c-Src联合免疫沉淀。在两种SCCHN细胞系中,GRP增加了TACE和c-Src之间的联系( 一和b条).
GRP诱导TACE和c-Src关联。(一和b条)代表性SCCHN细胞(PCI-37A或PCI-15B)用GRP(400 nM)处理10分钟,然后用TACE免疫沉淀(IP)和c-Src免疫印迹(IB)。剥离膜进行TACE免疫印迹,以确保等效负载。(c(c))将PCI-15B细胞接种在盖玻片上,然后进行血清饥饿2天。在用GRP(400nM)孵育5分钟后,用抗TACE(绿色)和抗-Src(红色)抗体对细胞进行双重染色。箭头表示在GRP刺激下TACE和c-Src重新分布到细胞膜。
据报道,GPCR激动剂血管紧张素II可诱导TACE重新分布到心尖膜,随后EGFR磷酸化(30). 接下来,我们利用共焦显微镜研究了GRP是否可以通过这些蛋白的细胞内移位来诱导TACE和c-Src的结合。在没有GRP的情况下,TACE和c-Src主要存在于细胞质中。GRP短期处理诱导Src和TACE向细胞外周的配位重新分布(c(c)). 使用EGFR细胞外抗体使细胞与TACE共染,以确认GRP治疗后TACE易位到膜(图9,作为PNAS网站上的支持信息发布)。这些结果表明,GRP诱导TACE和c-Src的结合,以及转位到细胞膜,TACE可以在细胞膜上裂解EGFR脯氨酸。
TACE是参与GRP诱导的EGFR增殖和裂解的金属蛋白酶。
TACE与凝血酶和溶血磷脂酸诱导的前两性调节蛋白裂解有关,随后在SCCHN细胞中激活EGFR和MAPK(26). 为了确定TACE在GRP诱导的EGFR和MAPK激活中的作用,用TACE小干扰RNA(siRNA)或阴性对照GFP双重体转染SCCHN细胞(PCI-37A),然后进行GRP处理。如所示一,GRP在抑制TACE表达后未能诱导EGFR和MAPK磷酸化。然而,在GFP-siRNA双转染细胞中,GRP保留了诱导EGFR和MAPK激活的能力。
TACE介导GRP诱导的EGFR激活。(一)将代表性SCCHN细胞(PCI-37A)接种在6孔板上,然后进行TACE siRNA转染或转染阴性对照GFP双链体。在血清饥饿2天后,用GRP(400 nM)处理细胞10分钟,然后按指示进行免疫印迹(IB)和免疫沉淀(IP)。(b条)根据制造商的说明,在细胞培养基上进行两性调节蛋白ELISA。TACE siRNA GRP治疗与GFP siRNA GRP治疗进行比较。累积结果来自六个独立实验(P(P)= 0.0011).
我们之前在SCCHN的研究表明,在使用GRP治疗后,会释放两种调节蛋白和TGF-α,但不会释放肝素结合的EGF或EGF(27). 为了确定TACE在GRP介导的EGFR配体释放中的作用,我们在细胞培养基中刺激GRP后进行了双调节蛋白ELISA。如所示b条,用siRNA抑制TACE表达可消除GRP诱导的两性调节蛋白释放到条件培养基中(P(P)= 0.0011). 在细胞裂解物中,与GFP siRNA转染细胞相比,TACE siRNA转导细胞中的两性调节蛋白表达更高(图10,作为PNAS网站上的支持信息发布)。这些结果表明TACE参与GRP诱导的EGFR转录激活。
GRP诱导的TACE磷酸化需要c-Src。
据报道,一种众所周知的脱落激活剂——12-肉豆蔻酸-13-乙酸酯(TPA)可诱导苏氨酸残基上的TACE磷酸化(31,32). EGF可诱导TACE丝氨酸磷酸化(33). 为了阐明GRP导致TACE重定位和随后的双调节蛋白释放的机制,我们检测了GRP处理SCCHN细胞后TACE丝氨酸和苏氨酸磷酸化。GRP最早在2分钟时刺激TACE磷酸化,在添加GRP后10分钟达到最大水平,而GRP诱导的EGFR和MAPK磷酸化在5分钟时在PCI-37A细胞中首次检测到,10分钟时达到峰值(图11,作为PNAS网站上的支持信息发布),与作用于EGFR和MAPK磷酸化上游的TACE相容。虽然在丝氨酸和苏氨酸残基上都很容易检测到磷酸化,但我们无法检测到酪氨酸残基的TACE磷酸化(数据未显示)。GRP诱导TACE磷酸化的机制尚不清楚。据报道,ADAM15经历了Src家族激酶依赖性磷酸化,这有助于ADAM15细胞质结构域和Src族蛋白之间的相互作用(34). 由于c-Src在GRP治疗后易位到质膜,其中c-Src-与TACE相关,我们假设GRP诱导的Src家族激酶激活可能有助于TACE磷酸化。通过用Src家族激酶抑制剂A-419259处理细胞,GRP诱导的TACE和c-Src关联和移位被消除,表明TACE和c-Src之间的相互作用是磷酸化依赖的(图12,作为PNAS网站上的支持信息发布)。
为了证实c-Src在GRP诱导的TACE磷酸化中的作用,用c-Src siRNA转染SCCHN(PCI-37A)细胞,然后进行GRP处理。如所示一在c-Src表达下调后,GRP未能诱导TACE磷酸化。此外,在c-Src-siRNA存在的情况下,GRP不能诱导两调节蛋白释放到培养基中(b条;P(P)= 0.0011).
Src介导GRP诱导的SCCHN中TACE磷酸化。(一)用c-Src siRNA转染PCI-37A细胞,然后血清饥饿2天,用GRP(400 nM)处理10分钟。对细胞裂解物进行c-Src表达的Western印迹和TACE免疫沉淀。免疫印迹法;IP,免疫沉淀。(b条)根据制造商的说明,在细胞培养基上进行两性调节蛋白ELISA。累积结果来自六个独立实验(P(P)= 0.0011).
PI3-K作为中间体,是GRP诱导TACE磷酸化所必需的。
由于c-Src是一种酪氨酸激酶,只在酪氨酸残基上磷酸化底物,而TACE在丝氨酸/苏氨酸残基中磷酸化,因此我们推断丝氨酸/苏氨酸激酶可能在c-Src-和TACE磷酸化之间起中介作用。据报道,Src家族激酶通过Src同源性3结构域和PI3-K的p85调节亚基之间的相互作用激活PI3-K,随后Y688磷酸化并释放p85对p110催化亚基活性的抑制(35,36). 此外,Src家族激酶可以抑制PTEN活性,也可以通过PI3-K途径增加信号传导(37). 为了检测PI3-K通路是否通过作用于Src家族激酶下游参与GRP诱导的EGFR信号传导,用Src族激酶抑制剂A-419259(100 nM)处理SCCHN细胞(PCI-37A),然后再进行GRP处理。使用磷酸化Akt作为PI3-K通路激活的替代标记,我们发现GRP诱导的PI3-K活性受到Src家族激酶阻断的抑制(一). 除了Src激酶抑制剂外,还使用了c-Src siRNA,并观察到类似的结果(图13,作为PNAS网站上的支持信息发布)。
PI3-K起中介作用,是GRP诱导TACE磷酸化所必需的。(a) PCI-37A细胞被血清饥饿2天。在用Src家族激酶抑制剂PD0180970(500 nM)预处理2 h后,用GRP或EGF处理细胞10 min。用磷酸化Akt(Ser-473)和总Akt对细胞裂解物进行免疫印迹。(b条)用p85αsiRNA转染PCI-37A细胞,然后血清饥饿2天,用GRP(400 nM)处理10分钟。对细胞裂解物进行蛋白质印迹以检测p85α表达和TACE免疫沉淀。免疫印迹法;IP,免疫沉淀。(c(c))根据制造商的说明,在细胞培养基上进行两性调节蛋白ELISA。累积结果来自四个独立实验(P(P)= 0.014).
由于GRP通过c-Src依赖的方式激活PI3-K,我们假设PI3-K可能作为TACE和c-Src.之间的中间产物。为了验证这一假设,我们用p85 siRNA转染SCCHN细胞。在p85表达下调后,GRP未能诱导TACE和c-Src关联,表明相互作用不是直接的(数据未显示)。PI3-K可能是c-Src和TACE之间的中间产物。由于PI3-K介导c-Src和TACE关联,我们假设PI3-K活性是GRP诱导细胞质域TACE磷酸化所必需的。如所示b条,GRP未能诱导p85αsiRNA-转染细胞中的TACE磷酸化,而GRP保留了刺激对照siRNA转染SCCHN细胞中TACE磷酸化合的能力。为了证实PI3-K作用于c-Src激酶下游并有助于GRP诱导的EGFR配体释放,研究了p85α在GRP诱导EGFR配子释放中的作用。p85αsiRNA消除GRP诱导的两性调节蛋白释放(P(P)= 0.014;c(c)). 在PCI-15B细胞中观察到类似结果(数据未显示)。除p85 siRNA外,还使用了两种PI3-K抑制剂,沃特曼或LY294002。这两种化合物以剂量依赖的方式抑制PI3-K,而不影响Src活性(图14一和b条,作为支持信息发布在PNAS网站上)。此外,这两种化合物都消除了GRP诱导的TACE磷酸化、EGFR配体释放和EGFR/MAPK磷酸化(图15-17,其作为支持信息发布在PNAS网站上)。因此,在SCCHN细胞中,GRP诱导的TACE磷酸化和EGFR配体释放需要PI3-K。
PDK1磷酸化物TACE对GRP的反应。
虽然PI3-K含有丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶活性,但唯一确定的PI3-K蛋白底物是PI3-K本身。因此,我们推断一种替代的中间激酶必须直接磷酸化TACE以响应GRP刺激。由于PI3-K产生的三种磷酸化磷脂酰肌醇直接或间接激活,因此有许多可能的候选物(38–40). 特别有趣的是,据报道,PDK1与这些底物的特异性对接是高效磷酸化所必需的,磷酸化定位于底物上的疏水性Phe-Xaa-Xaa-Phe(PXXP)结构域(41,42). 由于TACE在细胞质结构域上包含多个PXXP结构域,我们假设在GRP激活PI3-K后,PDK1转位到膜,在膜上识别TACE细胞质PXXP域并调节TACE磷酸化。为了测试PDK1激酶是否能磷酸化全长TACE,SCCHN(37A)细胞被血清饥饿,然后进行在体外用重组PDK1酶进行激酶测定。如所示一,PDK1诱导TACE磷酸化。在PCI-15B细胞中观察到类似结果(数据未显示)。为了证实PDK1能够在细胞内磷酸化TACE,我们纯化了一个与TACE细胞质结构域相连的GST融合蛋白(GST-TACEc)。如所示b条,PDK1激酶可以在细胞质域磷酸化TACE在体外,暗示PDK1是介导GRP诱导的TACE磷酸化的一个效应器。相反,PKC活性酶未能诱导GST-TACEc磷酸化(数据未显示)。为了研究PDK1在GRP诱导的TACE磷酸化中的需求,使用PDK1 siRNA敲低内源性PDK1表达。PDK1敲除后,GRP未能诱导TACE磷酸化(c(c)). 此外,PDK1敲除消除了GRP诱导的TACE向细胞膜的移位(图18,作为PNAS网站上的支持信息发布)。这些结果表明PDK1可以介导GRP诱导的TACE磷酸化和移位。
在SCCHN中,PDK1激酶在GRP处理后磷酸化TACE。(一)SCCHN细胞(PCI-37A)被血清饥饿2天,然后进行TACE免疫沉淀。使用PDK1酶与细胞颗粒孵育,然后在体外激酶分析。使用相同的膜来探测总TACE。免疫印迹法;IP,免疫沉淀。(b条)活性PDK1激酶与重组GST或GST-TACEc孵育,然后在体外激酶分析。用抗GST抗体对同一膜进行免疫印迹,以确保负载相等。(c(c))将PDK1 siRNA或阴性对照(GFP)siRNA转染SCCHN细胞(PCI-37A),然后用PDK1抗体免疫印迹,或用TACE免疫沉淀,然后用磷酸苏氨酸或丝氨酸抗体免疫印记。
靶向PDK1增强EGFR抑制剂的细胞毒性和抗侵袭作用。
EGFR抑制剂,包括酪氨酸激酶抑制剂厄洛替尼(OSI-774/Tarceva),在肿瘤不含激活EGFR突变的癌症患者中,导致临床反应有限(5). 由于GRP通过EGFR的反式激活刺激SCCHN生长,我们假设EGFR抑制剂的细胞毒和抗侵袭作用可以通过同时靶向PDK1而增强。埃洛替尼治疗(1μM)在24小时时导致约50%的生长抑制。当与PDK1 siRNA结合时,埃洛替尼布的细胞毒作用显著增强(一;P(P)= 0.0011). 此外,PDK1 siRNA与厄洛替尼联合使用时显著降低SCCHN细胞的侵袭能力(b条;P(P)< 0.001). 这些结果表明,PDK1阻断可以增强EGFR抑制剂的细胞毒性和抗侵袭作用。
通过联合靶向PDK1和EGFR增强抗肿瘤作用。将SCCHN(PCI-37A)细胞接种在24孔板上,然后用PDK1 siRNA或GFP双重siRNA转染。转染后24小时,向孔中添加厄洛替尼(1μM)。(一)厄洛替尼治疗24小时后进行3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基溴化四唑鎓测定。结果来自六个独立实验(P(P)= 0.0011). (b条)将细胞一式两份置于基质凝胶侵入室中,然后用PDK1 siRNA或GFP双重siRNA转染。转染后24小时,加入厄洛替尼(1μM)24小时。用光学显微镜在×400倍放大镜下计数10个代表性区域的侵入细胞。
讨论
EGFR和GPCR信号通路的整合已被证明在多种癌症模型中有助于致癌(8,16,21,24,43,44). GPCR激活EGFR的确切机制尚不完全清楚。本研究结果表明,在GPCR刺激后,c-Src被激活,导致PI3-K下游诱导。PI3-K激活后,PDK1可以磷酸化苏氨酸和丝氨酸残基上的TACE,导致TACE移位,EGFR脯氨酸(例如两性调节蛋白)裂解,以及随后的EGFR和MAPK磷酸化。该模型表明,GPCR配体诱导的双调节蛋白释放在有丝分裂信号中起着关键作用,这与之前的发现一致,即GPCR配体能诱导双调节蛋白的释放,导致EGFR反式激活增殖、运动和侵袭头颈癌细胞(20,26).
在GPCR配体刺激EGFR的背景下,TACE磷酸化的机制之前尚未确定。TACE的磷酸化可能导致其转移到靶细胞或在膜上形成Src和TACE的功能复合物。我们以前报道过Src家族激酶参与GRP诱导的SCCHN中EGFR磷酸化(15). c-Src和TACE均位于胞浆中的点状病灶中,分别通过Src N末端结构域和TACE跨膜结构域的肉豆蔻酰化,与细胞膜的c-Src和TACE结合。在本研究中,我们通过SCCHN细胞的共免疫沉淀和共聚焦显微镜证明,在没有外源性GRP治疗的情况下,TACE与细胞质中的c-Src相关。TACE与c-Src之间的相互作用可能是由肿瘤系统中GRP/胃泌素释放肽受体自分泌途径引起的(28). 在GRP治疗后,相关性显著增加,随后TACE和c-Src易位到膜。TACE向质膜的转运可能通过将其放置在靶蛋白原角蛋白的附近而在TACE功能中发挥重要作用。然而,TACE是否直接或间接介导两性调节蛋白释放尚待确定。
GRP诱导TACE与c-Src结合的机制尚不清楚,但可能涉及TACE细胞质结构域中富含脯氨酸的序列和c-Srcs的Src同源性3结构域。另外,由于p85结合TACE和c-Src(数据未显示),p85可能是TACE和c-Src之间的中间产物。一些观察结果表明,TACE与c-Src之间的相互作用具有生理意义。首先,EGFR的反式激活和下游MAPK对GRP的激活需要活性c-Src。其次,用GRP刺激SCCHN细胞导致细胞质中TACE和c-Src结合增加。第三,TACE与c-Src易位到质膜,在那里发生TACE对两性调节蛋白的裂解。最后,GRP刺激SCCHN细胞以c-Src依赖方式诱导TACE磷酸化。
GRP诱导的TACE磷酸化发生在丝氨酸和苏氨酸上,但不发生在酪氨酸残基上。因此,我们推断需要额外的信号分子来调节TACE磷酸化。据报道,PDK1可促进几种AGC蛋白激酶的激活,包括PKA、PKG和PKC(38–40). 这里我们显示,除了AGC蛋白激酶外,PDK1还可以磷酸化TACE。PDK1主要是细胞质,在基础条件下,在质膜上有一些定位(45,46). 与其他激酶不同,PDK1是一种组成性活性激酶,即使在没有外源刺激的情况下也是如此。此外,PDK1的磷酸化似乎对PI3-K的激动剂刺激具有抵抗力(39,40,47). 与之前的发现一致,在GRP治疗后,我们没有检测到PDK1磷酸化增加在体外激酶分析。然而,我们观察到PDK1 siRNA消除了GRP诱导的TACE向膜的易位。我们提出以下PDK1诱导的TACE磷酸化模型:(我)GRP诱导c-Src活化和下游PI3-K活化,产生PIP2和PIP3;(ii(ii))这些脂质分子诱导PDK1和TACE从细胞质向质膜移位;和(三)通过PDK1识别TACE细胞质结构域上的多个PXXP基序,TACE发生构象变化,这可以作为PDK1的底物。尽管之前有报道称TACE的细胞质结构域不需要用于一些跨膜分子的裂解(48)我们在这里表明,TACE细胞质域的磷酸化可能有助于EGFR配体的释放。TACE细胞质结构域激活的需求可能取决于正在研究的精确模型。
阐明GPCR/EGFR串扰的关键介质具有重要的临床意义。PDK1作为许多信号通路中枢的激酶,已被报道能使关键信号分子接近,通过易位激活细胞信号,以及核受体诱导的下游分子激活信号复合物,如NF-κB(49). 广谱激酶抑制剂staurosporine对PDK1和Akt的抑制可促进多种癌细胞的凋亡(50). 然而,由于非选择性,这种化合物对临床开发来说毒性太大(51). 7-羟基staurosporine(UCN-01)非选择性抑制PDK1,据报道可抑制肿瘤细胞生长并促进凋亡(52,53). PDK1反义寡核苷酸已显示可减少胶质母细胞瘤细胞的增殖和存活(54).
虽然PDK1和PI3-K是已知的EGFR信号通路的下游成分,但我们的证据表明,它们也可以通过介导EGFR-ligand释放作用于EGFR的上游。本研究结果表明,PDK1靶向结合EGFR阻断可能增强EGFR抑制剂的治疗效果。PDK1靶向可能阻断EGFR-依赖性和EGFR-诱导性通路,从而促进癌细胞增殖和侵袭。PDK1似乎在GPCR激活EGFR中起着关键作用,可以作为癌症治疗的靶点。
材料和方法
细胞培养。
所有SCCHN细胞系(PCI-37A和PCI-15B)均为人类来源(55–57). 细胞保存在DMEM中,在37°C和5%CO条件下,加入10%热灭活FCS(Invitrogen)2.
免疫印迹法和免疫沉淀法。
25微克蛋白质在8%SDS/PAGE中溶解。对于免疫沉淀,将200μg总蛋白与3μg抗TACE抗体(QED Biosciences,San Diego)、抗EGFR抗体(Upstate Biotechnology)或2μg抗C-Src抗体(Santa Cruz Biotechnology)在4°C下孵育2 h,然后轻轻搅拌,遵循参考文献中报告的方案。15.
支持信息。
化学品和试剂、siRNA转染、ELISA、人TACE细胞质域(TACEc)的克隆及其作为GST-TACEc融合蛋白的表达、免疫荧光显微镜分析、,在体外激酶分析,在体外细胞毒性试验、基质凝胶侵入试验和统计数据发布为支持材料和方法,作为支持信息发布在PNAS网站上。
致谢
这项工作得到了美国国立卫生研究院卓越研究专项拨款P50CA90440和R01 CA098372(发给J.R.G.)的支持。
缩写
亚当 | 一种去整合素和金属蛋白酶 |
表皮生长因子受体 | EGF受体 |
全球采购控制报告 | G蛋白偶联受体 |
玻璃钢 | 胃泌素释放肽 |
MAPK公司 | 丝裂原活化蛋白激酶 |
PDK1系列 | 磷脂酰肌醇依赖性激酶1 |
PI3-K型 | 磷脂酰肌醇3-激酶 |
SCCHN公司 | 头颈鳞癌 |
小核糖核酸 | 小干扰RNA |
TACE公司 | TNF-α转化酶 |
脚注
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