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.2019年4月;568(7752):351-356.
doi:10.1038/s41586-019-1100-z。 Epub 2019年4月10日。

亚硝化应激导致射血分数保持不变的心力衰竭

附属公司

亚硝化应激导致射血分数保持不变的心力衰竭

加布里埃尔·G·希亚塔雷拉等。 自然. 2019年4月.

摘要

射血分数保持性心力衰竭(HFpEF)是一种常见的高发病率和高死亡率综合征,目前尚无循证治疗方法。在这里,我们报告了通过结合高脂肪饮食和使用Nω-硝基-L-精氨酸甲酯(L-NAME)-概括了人类HFpEF的许多系统和心血管特征。在我们的啮齿类动物模型和HFpEF患者的心肌中,一种未折叠蛋白反应效应器(X-box-binding protein 1(XBP1s)的剪接形式)的表达降低。从机理上讲,XBP1的减少是由于诱导型一氧化氮合酶(iNOS)活性的增加和内切酶肌醇需要蛋白1α(IRE1α)的S-亚硝化作用,最终导致XBP1剪接缺陷。iNOS的药理学或遗传学抑制,或XBP1s的心肌细胞限制性过表达,均改善了HFpEF表型。我们报道iNOS驱动的IRE1α-XBP1通路的失调是HFpEF心肌细胞功能障碍的关键机制。

PubMed免责声明

利益冲突声明

竞争利益声明。G.G.S.、T.G.G.和J.A.H.是2017年6月提交的专利申请(PCT/US/2017/037019)的共同发明人(2016年6月临时提交)。该专利涉及用于建立HFpEF模型的饮食。

数字

扩展数据图1
扩展数据图1。不同饮食方案五周或十五周后小鼠的系统和心脏表型。
,不同实验组小鼠在饮食五周或十五周后的体重(BW)(每个时间点每组10只小鼠)。b条,五周或十五周饮食后的腹膜内葡萄糖耐量试验(ipGTT)(五周n=10只/组;十五周n=5只/组)。c(c),条形图描述了5周和15周时间点ipGTT实验曲线下的面积(五周n=10只/组;十五周n=5只/组)。d日收缩压(SBP)和电子治疗5周或15周后,不同实验组的舒张压(DBP)(每个时间点每组10只小鼠)。(f)、左室射血分数百分比(LVEF%),,LV整体纵向应变(GLS),小时,二尖瓣E波与A波比值(E/A),,二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),j个,湿肺和干肺重量之比(LW),k个、心脏重量与胫骨长度之比(HW/TL)和,饮食五周后小鼠运动疲劳试验期间的跑步距离(LVEF%、E/A比率、E/E’比率、HW/TL比率、跑步距离和LW湿/LW干比率,每组10只小鼠。LV GLS,每组5只小鼠)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。a、 c-l公司单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。b条,双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。a、 c-l公司方括号上方的数字表示有效P(P)值。b、 持续五周15’ ***P(P)=0.0003 CHOW与HFD***P(P)=0.0004 CHOW vs.HFD+L-NAME;30’ ***P(P)=0.0008 CHOW与HFD**P(P)=0.006 CHOW vs.HFD+L-NAME;45’ *P(P)=0.010 CHOW相对于HFD***P(P)=0.0008 CHOW vs.HFD+L-NAME;60’ *P(P)=0.049 CHOW与HFD**P(P)=0.0096 CHOW与HFD+L-NAME相比。十五周, 15’ **P(P)=0.008 CHOW与HFD****P(P)<0.0001 CHOW vs.HFD+L-NAME;30’ **P(P)=0.005 CHOW与HFD****P(P)<0.0001 CHOW vs.HFD+L-NAME;45’ **P(P)=0.009 CHOW与HFD****P(P)<0.0001 CHOW vs.HFD+L-NAME;60’ *P(P)=0.028 CHOW与HFD**P(P)=0.0020 CHOW vs.HFD+L-名称。
扩展数据图2
扩展数据图2。不同饮食方案五周后小鼠的心脏形态和血管特征。
、不同实验组小鼠左心室横切面苏木精伊红(H&E)、麦胚凝集素(WGA)、马森三色(MT)和凝集素染色的代表性图像。图像是四个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。比例尺:H&E为500μm;比例尺:WGA、MT和凝集素为50μm。b条,心肌细胞横截面积的WGA定量(每组4只小鼠)。c(c),MT染色横切面的纤维化面积百分比(每组4只小鼠)。d日,心肌毛细血管密度(每组4只小鼠)。电子、不同实验组小鼠的主动脉脉搏波速度(PWV)(n=5只/组)。(f),CHOW(顶面板)和HFD+L-NAME(底面板)小鼠在基础状态下(左侧面板–异氟烷,Iso 1.5%)和充血刺激后(右侧面板–Iso 3%)冠状动脉血流的典型脉搏波多普勒描记。这些图片代表了五只独立的老鼠。冠状动脉血流储备(CFR)定量(每组5只小鼠)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b-d、e、g单因素方差分析后进行Sidak的多重比较检验。方括号上方的数字表示有效P(P)值。
扩展数据图3
扩展数据图3。不同饮食方案五周后小鼠骨骼肌的组织学和功能分析。
CHOW和HFD+L-NAME小鼠比目鱼肌和腓肠肌/跖肌(G/P)的苏木精和曙红(H&E)、小麦胚芽凝集素(WGA)、异染ATP酶(ATPase)、马森三色(MT)和苦味酸红(PSR)染色的代表性图像。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。比例尺:50μm。b条CHOW和HFD+L-NAME小鼠比目鱼肌肌球蛋白亚型(MyHC-1、MyHC-2A、MyHC-2-X)和G/P的mRNA水平(每组5只小鼠)。c(c),CHOW和HFD+L-NAME小鼠分离比目鱼肌的松弛曲线(每CHOW组5只小鼠;每HFD+L-NAME组6只小鼠)。体内前肢d日,后肢电子以及不同实验组小鼠的握力测量(n=8只/CHOW组;n=4只/HFD组;n=3只/L-NAME组;n=6只/HFD+L-NAME小组)。(f)CHOW和HFD+L-NAME小鼠比目鱼肌的最大强直应激(n=5只/CHOW组;n=6只/HFD+L-NAME组)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b、 c、f双尾未成对学生的t吨-测试(CHOW vs.HFD+L-NAME soleus;CHOW对HFD+L-NAME G/P)。d、 e(电子)单因素方差分析后进行Sidak的多重比较检验。方括号上方的数字表示有效P(P)值。
扩展数据图4
扩展数据图4。20周龄ZSF1-O型大鼠不同饮食方案5周后成年小鼠心室肌细胞收缩力、功能特征和IRE1α-Xbp1s轴。
,基线肌群长度(每CHOW组4只小鼠,35个细胞;每HFD组3只小鼠,30个细胞;每个L-NAME组3只鼠,30个电池;每个HFD+L-NAME小组3只小鼠和31个电池)。b条,达到峰值的时间(每个CHOW组4只小鼠,36个细胞;每个HFD组3只小鼠,30个细胞;每L-NAME组3只鼠,30个电池;每HFD+L-NAME小组3只小鼠和31个细胞)。c(c)最大返回速度(每个CHOW组4只小鼠,36个细胞;每个HFD组3只小鼠,29个细胞;每L-NAME组3只鼠,30个细胞;每组HFD+L-NAME,3只小鼠和31个细胞)。d日,与基线相关的肉瘤长度变化(Δ)(每CHOW组4只小鼠,36个细胞;每HFD组3只小鼠,30个细胞;每个L-NAME组3只鼠,30个电池;每个HFD+L-NAME小组3只小鼠和31个电池)。电子最大离开速度(每CHOW组4只小鼠,35个细胞;每HFD组3只小鼠,30个细胞;每个L-NAME组3只鼠,29个细胞;每组HFD+L-NAME,3只小鼠和28个细胞)。(f),起搏期间心肌细胞收缩/舒张的典型轨迹。每个轨迹描述一个代表每个实验组平均值的细胞。,体重(BW),小时,左心室射血分数百分比(LVEF%),,二尖瓣E波与A波比值(E/A),j个,二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),k个、心脏重量与胫骨长度(HW/TL)比值,以及,20周龄Wistar Kyoto(WKY)和ZSF1肥胖大鼠的肺重量(LW)/TL比率(BW、LVEF%、E/A比率、E/E'比率和LW/TL比率n=5只/组;HW/TL比率n=5只/WKY组和n=4只/ZSF1肥胖组)。,WKY和ZSF1-O型大鼠LV样本中剪接(s)和未剪接(u)Xbp1转录物的电泳分析。采用经膜霉素处理的新生大鼠心室肌细胞(TUN)作为阳性对照(n=3只/组)。n个WKY和ZSF1-Obese大鼠(每组5只大鼠)的Xbp1s的LV mRNA水平。o(o)WKY和ZF1-肥胖大鼠(每组5只大鼠)LV样本的pIRE1α、IRE1β和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。第页,pIRE1α和IRE1β蛋白带之间的密度分析比率(每组5只大鼠)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。a-e公司单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。g-l、n、p双尾未成对学生的t吨-测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图5
扩展数据图5。严重横主动脉收缩一周后,小鼠的功能特征和未折叠蛋白反应激活。
,实验设计。将C57BL/6N雄性小鼠暴露于假手术(对照组)或严重横贯主动脉缩窄(sTAC)手术(填充三角),一周后进行评估(空三角)。b条、左室射血分数百分比(LVEF%),c(c),二尖瓣E波与A波比值(E/A),d日,二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),电子、湿肺重量与干肺重量之比(LW)和(f),假对照组和sTAC小鼠的心脏重量和胫骨长度(HW/TL)之比(n=5只/组)。假手术组和sTAC小鼠LV Xbp1s mRNA水平(假手术组n=4只小鼠;sTAC组n=5只小鼠)。小时假手术和sTAC小鼠LV样本中GRP94、GRP78和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。箭头表示调节带。假手术小鼠和sTAC小鼠LV切片的KDEL(Lys-Asp-Glu-Leu)序列免疫荧光染色。赫斯特染色细胞核。比例尺:50μm。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b至g双尾未成对学生的t吨-测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图6
扩展数据图6。横主动脉收缩后小鼠的功能特征和IRE1α-Xbp1s轴,以及心肌细胞限制型Xbp1s转基因小鼠的表型。
,实验设计。将C57BL/6N小鼠暴露于假手术(对照组)或横主动脉缩窄(TAC)手术(填充三角形),并随访5周(空三角形)。b条,二尖瓣E波与A波比值(E/A),c(c),二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),d日、左室射血分数百分比(LVEF%),电子、心脏重量与胫骨长度之比(HW/TL),以及(f)、不同实验组小鼠肺重量与体重(LW/BW)的比值(E/A比值、E/E'比值和LVEF%n=10只/Pre-TAC组、TAC 1wk组和TAC 3wk组;n=5只/TAC 5wk组小鼠;HW/TL比值和LW/BW比值n=10两只/TAC 1wk和TAC 3 wk组鼠;n=6只/Pham和TAC 5wks组鼠)。假手术和TAC 3周后LV Xbp1s mRNA水平(每组5只小鼠)。小时、假手术组和TAC 3周组小鼠(每组3只小鼠)LV样本的pIRE1α、IRE1β和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。,实验设计。对照(CTR)和Xbp1s转基因小鼠(TG)暴露于CHOW或HFD+L-NAME饮食(绿色填充三角形)。五周后,进行超声心动图评估,并从饮用水中去除多西环素(Doxy)以诱导转基因表达(灰色填充三角形)。转基因诱导两周后(蓝色填充三角形),对小鼠进行功能分析和组织收获。j个随着时间的推移,不同实验队列的LVEF%(n=5只小鼠/CHOW CTR和CHOW TG组;n=7只小鼠/HFD+L-NAME CTR和HFD+L-NAME TG组。在所有三个时间点对每只小鼠进行分析)。k个喂食CHOW或HFD+L-NAME饮食七周的CTR和Xbp1s TG小鼠的LV Xbp1smRNA水平(每组3只小鼠)。,LV mRNA水平无核功率放大器正常灌注压突破基因和研究结束时,HW/TL(每个CHOW CTR和CHOW TG组5只小鼠;每个HFD+L-NAME CTR和HFD+L-NAME TG组7只小鼠)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b-f型,单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。双尾未成对学生的t吨-测试。j-m公司双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图7
扩展数据图7。不同饮食方案五周后小鼠的心肌亚硝化应激和炎症标记物。
,顶部:CHOW和HFD+L-NAME小鼠血浆样本中的细胞因子/趋化因子抗体阵列,目视评估不同含量的细胞因子。每个图像代表两个独立执行的实验,结果相似。底部:抗体阵列膜代表的细胞因子和趋化因子列表。b条CHOW和HFD+L-NAME小鼠(每组5只小鼠)的左心室(LV)TNFα、IL1β和IL6 mRNA水平。c(c)CHOW和HFD+L-NAME小鼠LV样本中的iNOS和GAPDH。感染小鼠iNOS腺病毒(AdiNOS;100倍感染)的新生大鼠心室肌细胞被用作iNOS带的阳性对照。箭头表示调节带(每组3只小鼠)。d日不同实验组小鼠eNOS的LV mRNA水平(每CHOW组4只小鼠;每HFD、L-NAME和HFD+L-NAME组6只小鼠)。电子、不同实验组小鼠(每组3只小鼠)的nNOS、eNOS和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。(f)CHOW和HFD+L-NAME饮食五周后野生型(WT)和iNOS敲除(iNOS KO)小鼠LV样品中亚硝基半胱氨酸(Cys-SNO)和GAPDH蛋白的免疫印迹图像(W/B:无阻断。-Asc:无抗坏血酸。GSNO:S-亚硝基谷胱甘肽)(每组3只小鼠)。,Cys-SNO/GAPDH蛋白质之间的密度分析比率(n=3只小鼠/组)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b条,双尾未成对学生的t吨-测试。d日单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。,双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图8
扩展数据图8。心肌细胞中iNOS过度表达可降低IRE1α激活和Xbp1s水平,而不会影响心肌细胞的生存能力。
感染α-半乳糖苷酶腺病毒(AdLacZ)或iNOS腺病毒(AdiNOS)增加感染倍数(MOI)24小时的新生大鼠心室肌细胞iNOS和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。b条,随着AdlacZ或AdiNOS的MOI增加24小时转导的新生大鼠心室肌细胞中iNOS mRNA水平(n=4个生物独立实验)。c(c),随着AdlacZ或AdiNOS MOI增加24小时转导的新生大鼠心室肌细胞中亚硝酸盐/硝酸盐浓度(n=4个生物独立实验)。d日24小时内,随着AdlacZ或AdiNOS的MOI增加,新生大鼠心室肌细胞乳酸脱氢酶(LDH)释放(n=3个生物独立实验)。电子用AdlacZ或AdiNOS转导的NRVM中Cys-SNO、iNOS和GAPDH蛋白24小时(100 MOI)的免疫印迹图像。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。(f)在存在或不存在衣霉素(TUN)的情况下,随着AdlacZ或AdiNOS的MOI增加转导的新生大鼠心室肌细胞中pIRE1α、IRE1β、iNOS和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。图像代表了三个独立进行的实验,结果相似。在TUN存在或不存在的情况下,用100 MOI的AdlacZ或AdiNOS转导24小时的新生大鼠心室肌细胞的Xbp1s mRNA水平(n=3个生物独立实验)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b-d,克单因素方差分析后进行Sidak的多重比较检验。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图9
扩展数据图9。不同饮食方案五周后iNOS基因敲除小鼠的表型。
野生型(WT)和iNOS敲除(iNOS KO)小鼠的DNA基因分型。该签名用于基因分型。b条,实验设计。将WT和iNOS KO小鼠暴露于CHOW或HFD+L-NAME饮食中五周(填充三角形)。随后,对小鼠进行功能分析和组织收获(空三角形)。c(c)、左室射血分数百分比(LVEF%),d日,体重(BW),电子,收缩压(SBP),(f)、舒张压(DBP)和、不同实验组小鼠的腹腔内葡萄糖耐量试验(ipGTT)(LVEF%n=10只/组;BW、SBP、DBP和ipGTT n=5只/组)。小时,描绘ipGTT实验曲线下面积的条形图(每组5只小鼠)。、不同实验组小鼠(n=5只/组)的心脏重量与胫骨长度之比(HW/TL)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。c-i型双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。c-f、h、i方括号上方的数字表示有效P(P)值。, 15’ ***P(P)=0.0002周重量vs.HFD+L名称重量****P(P)<0.0001 CHOW WT vs.HFD+L-NAME iNOS KO;30’ ***P(P)=0.0002周重量vs.HFD+L名称重量****P(P)<0.0001 CHOW WT vs.HFD+L-NAME iNOS KO;45’ ****P(P)<0.0001 CHOW重量vs.HFD+L名称重量***P(P)=0.0002 CHOW WT vs.HFD+L-NAME iNOS KO;60’ ****P(P)<0.0001 CHOW重量vs.HFD+L名称重量****P(P)<0.0001 CHOW WT vs.HFD+L-NAME iNOS KO;120英寸**P(P)=0.010周重量vs.HFD+L名称重量**P(P)=0.007周重量vs.HFD+L名称iNOS KO。凝胶源数据见补充图1。
扩展数据图10
扩展数据图10。iNOS抑制剂治疗小鼠的功能特征和Xbp1s心肌水平。
,实验设计。将C57BL/6N小鼠暴露于CHOW或HFD+L-NAME饮食(棕色填充三角形)中五周,然后以80 mg/kg体重或载量每天两次的剂量(蓝色填充三角形)腹腔内(i.p.)注射L-N6-(1-亚氨基乙基)赖氨酸(L-NIL),持续三天。之后,对小鼠进行功能分析和组织收获(红色填充三角形)。b条,用溶媒或L-NIL治疗的HFD+L-NAME小鼠的尿亚硝酸盐/硝酸盐浓度(每组5只小鼠)。c(c)收缩压(SBP),d日、舒张压(DBP),电子,左心室射血分数百分比(LVEF%),(f),二尖瓣E波与A波比值(E/A),,二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),小时、运动疲劳试验期间的跑步距离、不同实验组小鼠Xbp1s的LV mRNA水平(亚硝酸盐/硝酸盐水平、SBP、DBP、LVEF%、E/A、E/E'和跑步距离n=5只小鼠组;Xbp1s水平n=3/组)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。b条双尾未成对学生的t吨-测试。c-i型双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。
图1
图1。对小鼠进行为期15周的HFD+L-NAME饮食方案,总结了临床HFpEF的关键变化。
,实验设计。C57BL/6N小鼠维持不同的饮食方案(填三角形),并随访15周(空三角形)。b条,典型的左心室(LV)M型超声心动图描记。这些图片代表了15只独立的老鼠。c(c),左心室射血分数百分比(LVEF%)(每组15只小鼠)。d日,LV全局纵向应变(GLS)(每组10只小鼠)。电子,代表性的脉冲波多普勒(顶部)和组织多普勒(底部)跟踪。这些图片代表了15只独立的老鼠。(f),二尖瓣E波和E’波的比值(E/E’)(n=15只/组)。,湿肺重量与干肺重量之比(LW)(n=15只/组)。小时,心脏重量与胫骨长度之比(HW/TL)(每组n=15只小鼠)。,运动疲劳试验期间的跑步距离(n=8只/组)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。c(c),d日,f-i型单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。
图2
图2。IRE1α-Xbp1s信号通路在实验中不活跃,人HFpEF和心肌细胞中Xbp1s过度表达可改善实验性HFp EF
、不同实验组小鼠(n=5只/组)的Xbp1s、Bip、ATF6、ATF4、CHOP的左心室(LV)mRNA水平。b条CHOW和HFD+L-NAME小鼠(每组3只小鼠)LV样本中PERK、ATF6和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。c(c),CHOW和HFD+L-NAME小鼠LV样本中剪接(s)和未剪接(u)Xbp1转录物的电泳分析。用膜粘连蛋白处理的新生大鼠心室肌细胞(TUN)作为阳性对照。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。d日CHOW和HFD+L-NAME小鼠中Xbp1s、Bip、CHOP的成年小鼠心室肌细胞(AMVMs)mRNA水平(每CHOW组4只小鼠;每HFD+L-NAME组5只小鼠。AMVMs是从单个小鼠中分离出来的)。电子CHOW和HFD+L-NAME小鼠(每组3只小鼠)LV pIRE1α、IRE1β和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。(f),pIRE1α和IRE1α蛋白带之间的密度分析比率(每组n=3只小鼠)。非衰竭(CTR)、HFpEF和HFrEF受试者(CTR组n=15名受试者、HFpEF组n=13名(Xbp1s)和n=14名(Xbp1u)受试者和HFrEF组n=15名)的人心肌活检中Xbp1和Xbp1u的mRNA水平。小时,CTR、HFpEF和HFrEF受试者(每组8名受试者)人心肌活检中pIRE1α和IRE1β蛋白的免疫印迹图像。,pIRE1α和IRE1β蛋白带之间的密度分析比率(n=8名受试者/组)。j个,二尖瓣E波和A波的比值(E/A)和k个对照组(CTR)和Xbp1s转基因小鼠(TG)的二尖瓣E波和E’波(E/E’)的比值随时间的推移而喂食CHOW或HFD+L-NAME饮食(n=5只小鼠/CHOW CTR和CHOW TG组;n=7只小鼠/HFD+L-NAME CTR和HFD+L NAME TG组。在所有三个时间点对每只小鼠进行分析)。、运动疲劳试验期间的跑步距离,研究结束时湿肺重量与干肺重量(LW)的比值(n=5只小鼠/周CTR和周TG组;n=7只小鼠/HFD+L-NAME CTR和HFD+L-NAME TG组)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。a、 g、i单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。d日,(f),双尾未成对学生的t吨-测试。j-m公司双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
图3
图3。HFpEF和心肌细胞中iNOS依赖性IRE1α亚硝化。
、不同实验组小鼠左心室iNOS mRNA水平(每CHOW组4只小鼠;每HFD、L-NAME和HFD+L-NAME组6只小鼠b条,iNOS CHOW和HFD+L-NAME小鼠的成年小鼠心室肌细胞(AMVM)mRNA水平(每组n=5只小鼠。AMVM从单个小鼠中分离)。c(c)WKY和ZSF1-O基础大鼠(每组5只)的iNOS的LV mRNA水平。d日非衰竭(CTR)、HFpEF和HFrEF受试者的人心肌活检中iNOS mRNA水平(每个CTR组11名受试者,每个HFpEF-组11名受试者,每HFrEF-组10名受试人)。电子CHOW或HFD+L-NAME饮食五周后,野生型(WT)和iNOS敲除(iNOS KO)小鼠LV样品中S-亚硝基IRE1α(SNO-IRE1)、IRE1β和GAPDH蛋白的免疫印迹图像。图像是四个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。(-Asc:不含抗坏血酸,+Asc:含抗坏他酸GSNO:S-亚硝基谷胱甘肽)(f),各组SNO-IRE1α+抗坏血酸蛋白带密度分析(每组4只小鼠)。α-半乳糖苷酶腺病毒(AdLacZ)或iNOS腺病毒(AdiNOS)感染增加24小时后转导的新生大鼠心室肌细胞的Xbp1s mRNA水平(n=4个生物独立实验)。小时用腺病毒转导IRE1α野生型(AdIRE1 a-WT)或在两个靶亚硝化位点(AdIREαM1+M2)和AdlacZ或AdiNOS突变的AdIRE1-α野生型腺病毒转染24小时的新生大鼠心室肌细胞中SNO-IRE1和IRE1 a蛋白的免疫印迹图像(-Asc:无抗坏血酸。GSNO:S-亚硝基谷胱甘肽)。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。,SNO-IRE1α和IRE1β蛋白带强度之间的密度分析比值(n=3个生物学独立实验)。j个用AdIRE1αWT或AdIRE1-αM1+M2和AdlacZ或AdiNOS转导24小时的新生大鼠心室肌细胞的Xbp1s mRNA水平(n=5个生物独立实验)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。a、 d、g、i、j单向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。b、 c(c)双尾未成对学生的t吨-测试。(f),双向方差分析,然后是Sidak的多重比较测试。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。
图4
图4。iNOS基因抑制改善HFpEF表型并恢复HFpEF中IRE1α-Xbp1s信号通路。
,二尖瓣E波与A波比值(E/A),b条,二尖瓣E波与E’波的比值(E/E’),c(c)、运动疲劳试验期间的跑步距离,以及d日,野生型(WT)和iNOS敲除型(iNOS KO)小鼠在五周CHOW或HFD+L-NAME饮食后的湿肺和干肺重量(LW)之比(E/A比率,E/E'比率n=10只/组;跑步距离和LW湿/LW干比n=5只/组)。电子,对CHOW或HFD+L-NAME饮食五周后WT和iNOS KO小鼠左心室(LV)样本中剪接(s)和未剪接(u)Xbp1转录物的电泳分析。用膜粘连蛋白处理的新生大鼠心室肌细胞(TUN)作为阳性对照。图像是三个独立执行的实验的代表,具有类似的结果。(f)Xbp1s的LV mRNA水平(每组5只小鼠)和CHOW或HFD+L-NAME饮食五周后,WT和iNOS KO小鼠LV样本中pIRE1α、IRE1β和GAPDH蛋白的免疫印迹图像(每组4只小鼠)。小时,pIRE1α和IRE1β蛋白带之间的密度分析比率(每组4只小鼠)。结果以平均值±S表示。E.M.公司。a-d、f、h双向方差分析,然后进行Sidak的多重比较检验。方括号上方的数字表示有效P(P)值。凝胶源数据见补充图1。

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