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2018年2月;41(2):659-668.
doi:10.3892/ijmm.2017.3284。 Epub 2017年11月24日。

骨髓间充质干细胞条件培养液对A549细胞上皮-间充质转化的治疗作用

附属机构

骨髓间充质干细胞条件培养液对A549细胞上皮-间充质转化的治疗作用

王欣等。 国际分子医学杂志 2018年2月

摘要

肺纤维化是一种慢性肺部疾病。转化生长因子-β1(TGF-β1)/Smad3信号通路在肺纤维化的发病机制中起着重要作用。骨髓源性间充质干细胞(BMSCs)已被证明是纤维化途径分子方面的调节剂。然而,来自骨髓间充质干细胞的条件培养基(BMSCs-CM)是否抑制上皮-间充质转化(EMT)过程尚不清楚。本研究证实了BMSCs-CM通过抑制Smad3的磷酸化对人类II型肺泡上皮细胞(A549)发挥抗纤维化作用的假说。我们使用体外A549细胞通过相控显微镜检测EMT的形态学证据。将这些细胞随机分为4组:对照组、TGF-β1组、SIS3(Smad3特异性抑制剂)组和BMSCs-CM组。免疫荧光法测定E-钙粘蛋白(E-钙黏蛋白;E-cad)、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)和p-Smad3的位置。western blot检测E-cad、CK8、α-SMA、波形蛋白、p-Smad3、蜗牛1、I型胶原(COLI)和III型胶原(collagen III)的表达水平。在暴露于TGF-β1后,A549细胞显示出纺锤状成纤维细胞样形态。根据这些形态学变化,E-cad和CK8的表达水平下调,而α-SMA和波形蛋白的表达水平上调。随着这一过程,p-Smad3、Snail1、COLI和COLIII的表达水平增加。然而,BMSCs-CM组和SIS3组的细胞显示α-SMA和vimentin水平降低(TGF-β1上调),E-cad和CK8表达水平升高(TGF--β1下调)。总的来说,这些结果表明BMSCs CM抑制了EMT,这可能与TGF-β1/Smad3有关。本研究为研究肺部疾病的发病机制提供了理论依据。

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数字

图1
图1
在倒置相差显微镜下观察BMSCs的形态(放大倍率,×200)(A)原始细胞。(B) 第一代BMSC。(C) 第二通道BMSCs。(D) 第三通道BMSCs。骨髓间充质干细胞,骨髓源性间充质细胞。
图2
图2
倒置相差显微镜下观察到的细胞形态(放大倍数×200)。对照组包括具有鹅卵石样上皮形态、圆形或多边形的A549细胞。TGF-β1组包括表现出纺锤状细长成纤维细胞样形态的细胞。SIS3组和BMSCs-CM组的细胞形态相似;TGF-β1诱导的形态学改变受到抑制。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加;在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。骨髓间充质干细胞;CM,条件培养基;TGF-β1,转化生长因子-β1。
图3
图3
EMT的超微结构证据。正常A549细胞可以通过细胞质中LBs的存在来识别。TGF-β1组LBs变性、肿胀、空泡。箭头表示LB;放大倍数,×7000。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加;在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。Nu,细胞核;LB,层状体;上皮-间充质转化;转化生长因子-β1。
图4
图4
在倒置相差显微镜下观察EMT过程中细胞的迁移能力。A549电池(1×104)8日播种μm孔径的Transwell培养箱,然后用5 ng/ml的TGF-β1刺激48 h,有或没有SIS3和BMSCs-CM。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加;在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。骨髓间充质干细胞;CM,条件培养基;上皮-间充质转化;TGF-β1,转化生长因子-β1。
图5
图5
评估上皮细胞标记物E-cad和CK8以及间充质细胞标记物α-SMA和波形蛋白在A549细胞中的表达。Western blot分析检测细胞中E-cad、CK8、α-SMA和波形蛋白的水平。以β-肌动蛋白为对照的蛋白质表达密度分析。结果表明,暴露于TGF-β1后,BMSCs-CM或SIS3显著增加E-cad和CK8的表达,并降低α-SMA和波形蛋白的表达(*与对照组相比P<0.05;#与TGF-β1组相比P<0.05)。棒材标签如下:A,对照组;B、 TGF-β1组;C、 SIS3组;D、BMSCs-CM组。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加;在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。骨髓间充质干细胞;CM,条件培养基;转化生长因子-β1;E-cad、E-钙黏蛋白;α-SMA,α-平滑肌肌动蛋白。
图6
图6
通过免疫荧光染色确定,E-cad和α-SMA在A549细胞中共定位。细胞质中存在E-cad(绿色),FITC-染色;α-SMA(红色)存在于细胞质中,经TRITC染色。细胞核用DAPI(蓝色)复染。比例尺,40μm.细胞组如下:对照组,细胞在无血清DMEM中培养;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加;在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。E-cad、E-cadherin(E-钙黏蛋白);α-SMA,α-平滑肌肌动蛋白;TRITC,四甲基罗丹明异硫氰酸酯;异硫氰酸荧光素;DAPI,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚。
图7
图7
A549细胞中p-Smad3、Smad3和Snail1表达水平的评估。Western blot分析检测细胞中p-Smad3、Smad3和Snail1的水平。以β-肌动蛋白为对照的蛋白质表达密度分析。结果表明,BMSCs-CM或SIS3治疗可显著降低TGF-β1暴露后p-Smad3和Snail1的表达(*与对照组相比P<0.05;#与TGF-β1组相比P<0.05)。棒材标签如下:A,对照组;B、 TGF-β1组;C、 SIS3组;D、BMSCs-CM组。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加。在5 ng/ml TGF-β1暴露前添加BMSCs-CM、BMSCs-CM。骨髓间充质干细胞;CM,条件培养基;TGF-β1,转化生长因子-β1。
图8
图8
评估细胞中COLI和COLIII的表达水平。使用蛋白质印迹分析来检测细胞中COLI和COLIII的水平。以β-肌动蛋白为对照的蛋白质表达的密度分析。结果表明,BMSCs-CM或SIS3显著降低TGF-β1暴露后COLI和COLIII的表达(*与对照组相比P<0.05;#与TGF-β1组相比P<0.05)。棒材标签如下:A,对照组;B、 TGF-β1组;C、 SIS3组;D、BMSCs-CM组。细胞组如下:对照组,细胞培养在无血清DMEM中;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加。骨髓间充质干细胞;CM,条件培养基;转化生长因子β1;COLI、胶原蛋白I。
图9
图9
免疫荧光显示,p-Smad3在细胞中定位。p-Smad3显示为红色,经TRITC染色;用DAPI对细胞核进行反染色显示为蓝色。比例尺,50μm.细胞组如下:对照组,细胞在无血清DMEM中培养;TGF-β1,在无血清DMEM中培养的细胞,暴露于5 ng/ml TGF-;SIS3,用3μM SIS3(Smad3的特异性抑制剂),在5 ng/ml TGF-β1暴露前4 h添加。TRITC,四甲基罗丹明异硫氰酸盐;DAPI,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚。

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