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.2009年12月15日;125(12):2863-70.
doi:10.1002/ijc.24748。

Akt介导的NFkappaB调控及NFkappa B对PI3K和Akt致癌性的重要性

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Akt介导的NFkappaB调控及NFkappa B对PI3K和Akt致癌性的重要性

董白等。 国际癌症杂志. .

摘要

丝氨酸/苏氨酸激酶Akt(小鼠胸腺瘤病毒akt8癌基因的细胞同源物),也称为PKB(蛋白激酶B),由磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)的脂质产物激活。Akt磷酸化许多控制细胞存活、增殖和运动的蛋白质靶点。先前的研究表明,Akt通过诱导κB抑制剂(IkappaB)的磷酸化和随后的降解来调节核因子κB(NFkappaB)的转录活性。我们在这里显示,NFkappaB驱动的转录在肉豆蔻酰化Akt(myrAkt)转化的鸡胚成纤维细胞(CEF)中增加。因此,Akt和Akt抑制剂的显性负突变体均抑制NFkappaB依赖性转录。在Akt转化的细胞中,IkappaB蛋白的降解强烈增强,NFkappaB-超表达物Ikappa BSR的引入导致NFkappa B活性的丧失,干扰了PI3K-和Akt诱导的CEF致癌转化。在Akt转化细胞中,丝氨酸534处NFkappaB p65亚单位的磷酸化也上调。我们的数据表明,Akt对NFkappaB的刺激依赖于S534处p65的磷酸化,由IKK(IkappaBkinase)α和β介导。Akt在T23上磷酸化IKKalpha,该磷酸化事件是IKKalbha和β在S534磷酸化p65的先决条件。我们的研究结果证明了IKK复合物在具有组成型Akt活性的细胞中的NF-κB激活中的两个独立功能:IkappaB的磷酸化和随后的降解以及p65的磷酸化。数据进一步支持了NFkappaB活性对PI3K和Akt诱导的致癌转化至关重要的结论。

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数字

图1
图1
Akt促进NFκB驱动的转录。(A) 使用DMSO方法用载体控制或myrAkt转染CEF。2至3代后,将100 ng p5×κB萤火虫报告质粒和5 ng pRL-CMV转染细胞雷尼利亚荧光素酶结构。将Akt突变体(T308A/S473A,Akt-AA)瞬时转染到0.5μg(Akt-AA-1)和1μg(Ekt-AA-2)的Akt转化CEF中。48小时后,用双荧光素酶报告试验测定荧光素素酶活性。(B) 来自(A)的细胞裂解液中磷酸化Akt(S473)、磷酸化4EBP1(S65)和肌动蛋白的Western分析。(C) 在用DMSO、Akti-IV(62.5nM)或Akti-V(2μM)预处理4 h的P3K转化细胞中进行NFκB驱动的荧光素酶转录检测。通过Western blotting(D)检测S473的总Akt和磷酸化Akt。(E) 在人类BT-20乳腺癌细胞中进行了NFκB驱动的报告细胞分析。用100 ng p5×κB萤火虫报告质粒和5 ng pRL-CMV转染细胞雷尼利亚荧光素酶结构。在收集细胞裂解物前2 h添加Akt抑制剂、Akti-IV(1μM)和Akti-V(2μM)。分别以0.5和1μg的浓度将Akt-AA突变体与报告质粒联合转染。(F) (E)细胞裂解物中磷酸化Akt(S473)、磷酸化4EBP1(S65)和肌动蛋白的Western blot分析。所示数据为三个实验的平均值±标准偏差(SD)。荧光素酶活性以相对单位表示(萤火虫荧光素蛋白酶活性超过雷尼利亚荧光素酶活性)。
图2
图2
IκB在Akt转化细胞中降解。用DMSO或蛋白酶体抑制剂MG132(2μM)处理转染载体控制的CEF、HA标记的myrAkt(Akt)或HA标记的Akt-T308A/S473A(Akt-AA)2 h。收集全细胞裂解物,电泳并用IκBα、磷酸-S473-Akt、HA或肌动蛋白抗体进行免疫印迹。所提供的数据代表了三个独立的实验。
图3
图3
IκBSR优先干预P3K或Akt诱导的肿瘤转化。用RCAS(B)-IκBSR或空载体转染CEF,培养10天。(A) 用抗IκBα抗体进行Western blotting证实IκBSR的表达。(B) 然后使用A亚群包膜蛋白和携带致癌基因的细胞感染致癌病毒v-src公司我的3k(PI3K),梅拉克v军。病毒稀释液(10的指数)显示在每个孔的角落。IκBSR通过我的3k梅拉克(参见表1)。实验至少重复了三次。这里提供的数据来自一个具有代表性的实验。
图4
图4
在Akt转化细胞中诱导p65磷酸化。转染载体控制或myrAkt的CEF与[32P] 正磷酸盐3小时,用被动溶解缓冲液溶解。用p65抗体免疫沉淀内源性p65。通过放射自显影检测磷酸化p65(顶部面板). Western blots证实了等量的p65负载和p50的Co-IP(中间面板). 使用抗HA抗体显示Akt的表达(底部面板).
图5
图5
Akt介导S534处的p65磷酸化。(A) 将感染载体控制、myrAkt或显性阴性Akt的CEF瞬时转染150 ng不同p65突变体和150 ng p50野生型或150 ng p65野生型和150 ng突变体,以及100 ng p5×κB和5 ng pRL-CMV报告质粒。48小时后,对细胞裂解物进行萤光素酶活性测定。所有p65或p50突变体仍然对Akt有反应,在myrAkt CEF中表现出活性增加,在Akt AA CEF中表现出活性降低,p65的S534突变体除外,其中Akt的作用被消除。(B) CEF与载体(对照)或HA-Akt和AU1-p65共同感染。传代2~3代后,用抗AU1琼脂糖免疫沉淀全细胞裂解物,电泳并用磷酸化S534-p65和p65抗体免疫印迹。使用抗HA抗体显示Akt的表达。
图6
图6
p65和IKK的磷酸化在体外体内(A)与潜在底物相比,围绕Akt和IKK共识序列的氨基酸序列的比对。预测的磷酸化位点用粗体字母表示。(B) 用HA-myrAkt转染CEF。传代2~3代后,用抗HA琼脂糖免疫沉淀Akt。使用GST、GST-IKKα(1-101或1-101/T23A)和GST-IKβ(1-101)作为底物进行放射性激酶分析,详见材料和方法(上部面板). HA-Akt和总GST或GST-IKK的水平显示为负载控制。(C) 内源性IKKα从转染myrAkt的HEK239细胞裂解物中免疫沉淀。使用GST和GST-p65(335-550或335-550/S534A)作为底物进行放射性激酶分析(上部面板). 免疫沉淀蛋白用IKKα、IKKβ或GST抗体进行免疫印迹,作为负荷对照。(D) IKKs催化p65磷酸化体内将2μg AU1-p65与2μg IKKβ和IKKα或IKK a-T23A共转染BT-20细胞。以AU1-p65和pcDNA共转染作为对照。用磷酸化S534-p65或p65抗体对α-AU1免疫沉淀蛋白进行免疫印迹。使用IKKα和IKKβ抗体对全细胞裂解物进行Western blot。
图7
图7
Akt通过IKK激活NFκB。(A) 通过myrAkt转化的CEF转染300 ng pcDNA载体(对照)或编码IKKα野生型(IKK A)或突变体T23A、S176A/S180A(AA)或T23A/S176A/S180A(AAA)的构建物,以及100 ng的p5×κB和5 ng的pRL-CMV报告质粒。48小时后,测定荧光素酶活性。(B) 将300 ng pcDNA载体(对照)或IKKα突变体T23A、AA和AAA转染BT-20细胞,如(A)所示。用FLAG或肌动蛋白抗体对总细胞裂解物进行免疫印迹。误差条表示三次转染实验的标准偏差。

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引用人

工具书类

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