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.2008年11月;19(11):4651-9.
doi:10.1091/mbc.e08-03-0312。 Epub 2008年9月3日。

Atg4B突变体阻碍LC3旁系同源物的脂质化并导致自噬体闭合缺陷

附属公司

Atg4B突变体阻碍LC3旁系同源物的脂质化并导致自噬体闭合缺陷

藤田直男等人。 分子生物学细胞. 2008年11月.

摘要

在自噬过程中,一种泛素样分子LC3/Atg8与磷脂酰乙醇胺(PE)结合,并与形成自噬体相关。在哺乳动物细胞中,多个Atg8同源物(称为LC3副产物)的存在阻碍了LC3副物脂质化的遗传分析。在这里,我们表明Atg4B(一种处理前LC3副logue的蛋白酶)的非活性突变体的过度表达抑制LC3副Logue的自噬降解和脂质氧化。抑制作用是由游离LC3副产物在与Atg4B突变体的稳定复合物中的隔离引起的。在突变过表达细胞中,Atg5-和ULK1-阳性中间自噬结构积累。这些膜结构的长度与对照细胞相当;然而,有相当一部分人没有被关闭。这些结果表明,LC3副产物的脂质化参与了哺乳动物细胞自噬体形成的完成。这项研究也为今后各种各样的自噬研究提供了强有力的工具。

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图1。
图1。
表达Atg4B的细胞C74A号表现出自噬降解受阻。(A) 稳定表达GFP-LC3的MCF7细胞被携带mStrawberry(Mock)、mStrawberry-Atg4B的腺病毒感染重量(WT)或mStrawberry-Atg4BC74A号(C74A)并孵育40 h。然后将细胞在HBSS中培养2 h,固定,并使用荧光显微镜进行观察。棒材,10μm。(B) 用携带GFP(−)、3x标记的野生型Atg4B(WT)、Atg4B的腺病毒感染PC12细胞C74A号(CA)或Atg4BC74S公司(CS)。细胞在生长或饥饿培养基中培养,用每种抗体通过Western blotting检测裂解产物。顶部面板,防旗;中间面板,抗LC3;底部面板,抗α-微管蛋白。(C) 293A细胞稳定表达空载体(Mock)或mStrawberry-Atg4BC74A号(附件4BC74A号)在生长培养基(F)、HBSS(S)或含100 nM沃特曼蛋白(W)的HBSS中培养2 h。使用每种抗体通过Western blotting检测细胞裂解物。从顶部面板,抗RFP、抗p62、抗LC3和抗α-微管蛋白。(D) 稳定表达空载体(Mock)或抗LC3 shRNA(LC3 KD)的293A细胞在HBSS中培养2h并收集。使用每种抗体通过Western blotting检测细胞裂解物。从顶部面板,抗LC3、抗GABARAP和抗α-微管蛋白。(E) mStrawberry-Atg4B模型C74A号-表达(Atg4BC74A号)或LC3-敲除(LC3-KD)293A细胞在生长培养基(F)、HBSS(S)或含100 nM沃特曼蛋白(W)的HBSS中培养2 h。按照材料和方法.
图2。
图2。
Atg4B的影响C74A号Atg16L复合体过度表达。(A) 293A细胞稳定表达空载体(Mock)或mStrawberry-Atg4BC74A号(附件4BC74A号)在生长培养基或HBSS中培养2小时,并使用每种抗体进行蛋白质印迹。从顶部面板,抗RFP、抗Atg5、抗LC3、抗α-微管蛋白。抗RFP抗体与mStrawberry反应。(B) 稳定表达空载体或mStrawberry-Atg4B的293A细胞的细胞溶胶部分C74A号用体积排阻色谱法分离。使用所示抗体对组分进行蛋白质印迹。显示了分子质量标准的位置。Vo,空隙率。
图3。
图3。
过量Atg4B之间形成稳定络合物C74A号和LC3阻止访问Atg7。(A) 293A细胞稳定表达空载体(Mock)或mStrawberry-Atg4BC74A号(附件4BC74A号)用Myc-LC3-HA(WT)或Myc-LC3转染G120A型-HA(GA)。转染后36小时,细胞在生长培养基或HBSS中培养2小时,并进行Western blotting。从顶部面板,抗RFP、抗Myc和抗α-微管蛋白。(B) 用携带3xFlag标记的野生型Atg4B(WT)、Atg4B的腺病毒感染PC12细胞C74A号(CA)或Atg4BC74S公司(CS)。孵育40小时后,用抗Flag M2缀合的琼脂糖珠对细胞裂解物进行免疫沉淀。使用每种抗体通过蛋白质印迹检测共免疫沉淀的分子。从顶部面板,反旗帜、反LC3和反GATE16。显示了总细胞裂解物(输入)和免疫沉淀蛋白(IP)。(C) 293A细胞稳定表达空载体(Mock)或mStrawberry-Atg4BC74A号(附件4BC74A号)如图所示,转染GFP-LC3和Myc-Atg7。转染后36小时,使用每种抗体通过Western blotting检测细胞裂解物。从顶部面板,抗RFP、抗myc、抗GFP和抗α-微管蛋白。
图4。
图4。
外源性LC3以剂量依赖的方式抑制Atg4B突变体对LC3脂质氧化的抑制作用。(A) NIH3T3细胞感染不同数量的携带mStrawberry-Atg4B的逆转录病毒C74A号筛选出稳定的转化子。将稳定细胞在HBSS(饥饿)中培养1 h,并使用每个抗体通过Western blotting检测细胞裂解物。从顶部面板,抗Atg4B、抗RFP、抗LC3和抗α-微管蛋白。(B) 稳定表达mStrawberry-Atg4B的NIH3T3细胞C74A号感染不同数量的携带GFP-LC3的逆转录病毒,然后选择双稳定的转化子。亲本NIH3T3细胞和稳定的转化子在HBSS(饥饿)中培养1 h,并使用每个抗体通过Western blotting检测细胞裂解物。从顶部面板,抗RFP、抗GFP、抗LC3和抗α-微管蛋白。
图5。
图5。
Atg4B的影响C74A号GFP-Atg5阳性膜结构过度表达。(A和B)稳定表达GFP-Atg5或同时表达GFP-Attg5和mStrawberry-Atg4B的NIH3T3细胞C74A号在生长培养基(F)、HBSS(S)或含100 nM沃特曼(W)的HBSS中培养1小时,然后固定。通过共焦激光扫描显微镜(FV1000,奥林巴斯)(A)从间隔0.3μm的连续光学切片获得三维图像堆栈。棒材,10μm。GFP-Atg5点在100多个细胞中计数。所示值为平均值±SD(B)。(C) 稳定表达GFP-Atg5或同时表达GFP-Attg5和mStrawberry-Atg4B的NIH3T3细胞C74A号在HBSS中生长1 h,并通过延时视频显微镜直接观察。对50多例患者测量了每一GFP-Atg5点的持续时间。所示数值为平均值±标准差。
图6。
图6。
Atg4B自噬膜的超微结构分析C74A号-过度表达的细胞。稳定表达空载体(Mock)(A–E)或mStrawberry-Atg4B的NIH3T3细胞C74A号(F–J)在HBSS中培养1h,固定,并进行常规电子显微镜分析。(B–E)模拟细胞中的典型自噬结构;隔离膜(B)、自噬体(C–E)。(G–J)mStrawberry-Atg4B中的典型自噬结构C74A号-表达细胞;隔离膜(G和H)、闭合双膜结构(I和J)。图中显示了电子致密结构(黑色箭头)、闭合自噬膜(白色箭头)和开放自噬薄膜(白箭头)的示例。条形,500 nm。(K) 模拟和mStrawberry-Atg4B中自噬结构的数量C74A号-表达细胞。▩, 开放自噬结构;■, 封闭的自噬结构。数据是代表性实验的三倍平均值±SD。(五十) 开放结构与总自噬结构的比率。数据是代表性实验的三倍平均值±SD*p<0.05。(M) 模拟和mStrawberry-Atg4B中自噬膜的长度C74A号-表达细胞。▩, 开放自噬结构;■, 封闭的自噬结构。对于自噬膜的长度测定,使用ImageJ版本1.40(http://rsb.info.nih.gov/ij/). 所示值为平均值±标准差。每个结构至少检查了20个样本*p<0.05;NS,不显著。(N) 模拟和mStrawberry-Atg4B中开放与闭合自噬结构的长度之比C74A号-表达细胞*p<0.05。(O) 同时表达GFP-Atg5和mStrawberry-Atg4B的NIH3T3细胞C74A号在HBSS中生长1小时并固定。使用抗GFP抗体通过金增强免疫金电镜检查GFP-Atg5的定位。条形,500 nm。

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