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.2006年8月8日;114(6):574-82.
doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.105.592550。 Epub 2006年7月31日。

基于药物和基因治疗的蛋白激酶Calpha/β抑制增强心肌收缩力并减轻心力衰竭

附属机构

基于药物和基因治疗的蛋白激酶Calpha/β抑制增强心肌收缩力并减轻心力衰竭

迈克尔·汉布尔顿等。 循环. .

摘要

背景:传统蛋白激酶C(PKC)亚型α作为心肌细胞Ca2+处理的近端调节器发挥作用。小鼠中PKCalpha的缺失导致肌浆网Ca2+负荷增加,Ca2+瞬变增强,收缩力增强,而心脏中PKCalphi的过度表达减弱了收缩力。从机制上讲,PKCalpha通过改变抑制剂-1的磷酸化状态直接调节Ca2+的处理,而抑制剂-1反过来又抑制蛋白磷酸酶-1的活性,从而调节磷蛋白活性,其次是肌浆网Ca2+ATP酶。

方法和结果:在本研究中,我们表明,使用Ro-32-0432或Ro-31-8220短期抑制传统PKC亚型可显著增强野生型小鼠体内或在单独的工作心脏制剂中的心脏收缩力,但在PKCalpha缺乏小鼠中没有。Ro-32-0432还增加了体内两种不同心衰模型的心脏收缩力。在因肌肉lim蛋白基因缺失而导致心力衰竭的小鼠模型中,短期或长期使用Ro-31-8220可显著增强心脏收缩力并恢复泵功能。此外,在大鼠梗死后心肌病模型中,腺病毒介导的PKCalpha cDNA显性阴性的基因治疗挽救了心衰。PKCalpha也被确定为成人心脏中表达的主要传统PKC亚型,为这些发现与人类病理生理学提供潜在相关性。

结论:PKCalpha或常规亚型的药理学抑制可能是在心力衰竭的某些阶段增强心脏收缩力的一种新的治疗策略。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突声明:

A.N.C.是宝洁制药公司的员工。与其余作者之间不存在其他重要的财务关系。

数字

图1
图1。Ro-32-0432和Ro-31-8220在心脏的功能评估
(A) 本研究中使用的Ro-32-0432和Ro-31-8220的化学结构。(B) Western blot分析磷酸化MARCKS蛋白,以分析Ro-32-0432(50 nM)和Ro-31-8220(50 nM)与载体(Veh)在感染AdPKCα并经PMA处理的培养乳鼠心肌细胞中的抑制能力。(C) 心脏收缩力(+dP/dt)的隔离工作心脏准备*P=0.0052或(D)在8×10的条件下输注溶媒(N=3)或Ro-32-0432(N=4)后产生的左心室压力−8微克/毫升*P=0.0012。通过两个样本t检验评估统计显著性。
图2
图2。PKCα是心脏中调节PKC同工酶的主要收缩性
(A) 从野生型(N=4)和PKCα−/−(N=4)小鼠中分离的工作心脏制剂。连续测量收缩率(+dP/dt),以指示的剂量(µg/ml)注入浓度增加的PMA,每次5分钟。使用重复测量方差分析评估这些数据的显著性。所有测量均为+/-扫描电镜。(B)野生型(N=6)和PKCα−/−(N=5)小鼠的分离工作心脏制剂。心脏注射溶媒(N=6)或Ro-32-0432(N=6,8×10−8µg/ml)。显著性通过方差分析(P=0.0002)进行评估,然后进行Newman-Keuls后验*与Wt车辆相比,P<0.05。
图3
图3。成人心脏PKC同工酶含量的Western blot分析
(A) Western blot panels和(B)人类心脏中指示PKC同工酶的定量按照每个蛋白的重组蛋白标准进行标准化。通过ANOVA(P<0.0001)和Dunnett的后验评估显著性*与βII、βI、γ和ε相比,P<0.01α。
图4
图4。Ro-32-0432增加Wt和衰竭小鼠的心脏收缩力
(A) 在野生型小鼠输注载药(N=5)、多巴酚丁胺(N=5,32µg/kg/min)或Ro-32-0432(N=522.5µg/k/min)后,通过有创性血液动力学对闭胸制剂的收缩性进行评估*与车辆相比,P<0.001。(B) 有创血流动力学评估MLP−/−小鼠服用溶媒(N=3)、多巴酚丁胺(N=3,32µg/kg/min)或Ro-32-0432输液(N=3.22.5µg/k/min)*与车辆相比,P<0.001。(C) 载体(N=4)、多巴酚丁胺(N=4,32µG/kg/min)或Ro-32-0432输注(N=42,22.5µG/k/min)后Gαq转基因小鼠的侵袭性血流动力学评估*与溶媒输注相比,P<0.001。通过方差分析(A、B和C的P<0.0001)评估统计学显著性,然后进行Newman-Keuls后验。
图5
图5。Ro-31-8220逆转心室功能丧失MLP−/−老鼠
(A) Wt和MLP−/−载药前超声心动图检查小鼠(N=8MLP−/−,N=8 Wt)或Ro-31-8220(N=10MLP−/−,N=9 Wt)治疗或每天以6 mg/kg/天的速度皮下注射溶媒或Ro-31-8220 6周后*P<0.05MLP−/−与给药后治疗前的Wt小鼠进行比较#P=0.008MLP−/−Ro-31-8220治疗后与MLP−/−治疗前相比,#P=0.0036与MLP−/−在车辆处理之前,或#P=0.009相对于MLP−/−车辆处理后。通过配对t检验评估同一组内比较的统计显著性,并通过Ro与载具之间的双样本t检验评估统计显著性。ANOVA用于组间的任何比较(P<0.0001),然后进行Newman-Keuls后验。(B) 在对旧Wt(N=8)和MLP−/−溶媒(N=8)或Ro-31-8220治疗(N=9)后的小鼠(14个月,N=8。通过方差分析(P=0.04)评估统计显著性,然后进行Newman-Keuls后验*P<0.05MLP−/−与Wt小鼠进行比较#P<0.05MLP−/−Ro-31-8220之后与MLP−/−车辆处理后。(C) 年一项为期3天的单独研究中的部分缩短MLP−/−用载体(N=6)或Ro-31-8220(N=5)治疗的小鼠#P=0.01MLP−/−Ro-31-8220之后与MLP−/−车辆处理后。通过双样本t检验评估统计显著性。
图6
图6。显性负性PKCα基因转移逆转大鼠冷冻梗死模型中的心力衰竭
(A) 在假手术组(N=8)、Adβgal治疗组(N=12)或AdPKCα-dn治疗组大鼠(N=7)中使用闭胸制剂对心脏收缩力(+dP/dt)和(B)左室舒张末压进行有创血液动力学评估。通过方差分析(A组P=0.0014,B组P<0.0001)和Newman-Keuls后验评估统计显著性*与假手术组相比,P<0.05 Adβgal#AdPKCα-dn与Adβgal相比P<0.05。

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引用人

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