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.2000年6月15日;19(12):2924-34.
doi:10.1093/emboj/19.12.2924。

蛋白激酶RSK2中一个磷酸丝氨酸调节的对接位点,可招募并激活PDK1

附属公司

蛋白激酶RSK2中一个磷酸丝氨酸调节的对接位点,可招募并激活PDK1

M Frödin先生等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

90kDa核糖体S6激酶-2(RSK2)是一种具有两个激酶结构域的生长因子刺激蛋白激酶。RSK2的C末端激酶被ERK型MAP激酶激活,导致RSK2在Ser386的疏水基序中发生自磷酸化。N-末端激酶由3-磷酸肌醇依赖性蛋白激酶-1(PDK1)通过Ser227的磷酸化激活,并磷酸化RSK的底物。这里,我们确定RSK2疏水基序中的Ser386是PDK1的磷酸化依赖性对接位点和活化剂。用生长因子处理细胞可诱导PDK1向Ser386-磷酸化疏水基序的募集,并在Ser227诱导RSK2磷酸化。RSK2-S386K突变体与PDK1无相互作用或Ser227的磷酸化。与Ser386-磷酸化RSK2的相互作用诱导PDK1的自磷酸化。添加合成磷酸化Ser386肽(RSK2(373-396))可使PDK1活性在体外增加6倍。最后,RSK2和MSK1(一种RSK相关激酶)的突变体对PDK1的亲和力增强,在体内具有组成活性,并磷酸化组蛋白H3。我们的结果表明,一种基于磷酸丝氨酸介导的PDK1向RSK2的募集的新调节机制,导致PDK1和RSK2协同磷酸化和活化。

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数字

无
图1。RSK2的结构和调节性磷酸化位点。RSK由两个激酶结构域组成,由一个调节性连接区连接。C端子尾部包含ERK的对接位置(Gavin和Nebreda,1999;Smith., 1999). 显示了五个磷酸化位点的位置以及磷酸化这些位点的激酶。Ser227、Ser369、Ser386和Thr577的磷酸化调节激酶活性,而Thr365磷酸化的作用尚不清楚(小鼠RSK2编号)。氨基酸序列显示PDK1共有磷酸化基序和带有保守残基的粗体疏水基序。比对表明,这两个基序存在于许多生长因子活化激酶中,包括RSK、MSK、p70 S6K、PKBα、PKCδ、SGK和PRK2。需要磷酸化才能激活激酶的丝氨酸/苏氨酸以红色显示。序列为人类,RSK1(大鼠)、RSK2和PKCδ(均为小鼠)除外。
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图2。RSK2缺失突变体的激酶活性体内用表达HA表位标记的全长RSK2或缺失突变体的质粒转染COS7细胞。48小时和最后3小时血清饥饿期后,裂解细胞,并用Ab将RSK沉淀到HA表位标签上,并进行激酶测定(下图)。数据表示为来自未刺激细胞的全长RSK2的百分比,是重复进行的三个独立实验的平均值±SD。RSK2的活动1–389和未刺激的RSK2是不同的(第页<0.001)与未折旧相比t吨-测试。激酶分析后,对RSK进行SDS–PAGE并用抗体免疫印迹HA表位标签(上面板)。
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图3。疏水基序在调节RSK2 N末端激酶磷酸化位点中的作用。用表达HA表位标记的野生型RSK2或突变型RSK1的质粒转染COS7细胞。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,将细胞暴露于(或不暴露于)20 nM EGF中20分钟并溶解。此后,RSK从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA表位。(A类)测定RSK的激酶活性,并将其表示为基础RSK2的百分比1–389活动。数据是重复进行的四个独立实验的平均值±SD。以下条形图的数据与未成对条形图相比有所不同t吨-测试:3对5(第页<0.001); 3对7(第页<0.05). 激酶分析后,将沉淀的RSK的等分样品进行SDS–PAGE和Abs免疫印迹,Abs在Ser386磷酸化时结合RSK2(B类),序列227(C类),Thr365(D类)或Ser369(E类),或将Ab添加到HA标签(F类).
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图4。RSK2中Ser227的磷酸化需要Ser386。用表达HA标记的RSK2或RSK2-S386K的质粒转染COS7细胞。在48小时和最后3小时血清饥饿期后,将细胞暴露于或不暴露于20nM EGF 20分钟并裂解。(A类)RSK从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签,测定其激酶活性,并以EGF刺激的野生型RSK2活性的百分比表示。数据是重复进行的三个独立实验的平均值±SD。激酶分析后,将沉淀的RSK的等分样品进行SDS–PAGE和Abs免疫印迹,Abs在Ser227磷酸化时结合RSK2(B类),Thr365(C类),369系列(D类)或将Ab标记为HA表位标签(E类).
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图5。RSK2需要Ser386才能与PDK1交互。用表达myc-PDK1和HA-RSK2或HA-RSK2-S386K的质粒共同转染COS7细胞。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,对细胞进行裂解,并对细胞裂解产物进行HA标记抗体免疫沉淀。对沉淀物的等分试样进行SDS–PAGE和用Ab对PDK1上的myc表位标签进行免疫印迹(A类)或RSK2上的HA表位标签(B类)。通过对免疫沉淀前裂解产物进行myc标记的免疫印迹,验证PDK1在细胞中的平等表达(C类)。实验进行了三次,结果相似。
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图6。PDK1通过Ser386-磷酸化疏水基序与RSK2相互作用。用表达myc-PDK1、HA-RSK2、HA-RSK2突变体、MEK-S217/221E的质粒或空载体(-)转染COS7细胞,如各面板所示。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,细胞被溶解。(A类)用Ab对细胞裂解物进行HA标记免疫沉淀,然后对沉淀的等分部分进行SDS–PAGE,并用Ab免疫印迹PDK1中的myc标记或RSK2中的HA标记。(B类)细胞裂解物在含有或不含磷酸酶抑制剂(原钒酸盐、花萼蛋白、氟化钠)的裂解缓冲液中用抗体对HA标签进行免疫沉淀。将等分的沉淀物进行SDS–PAGE和Ab免疫印迹,使其与PDK1中的myc标记、RSK2中的phosphosphoSer386或RSK2的HA标记结合。(C类)细胞裂解物经抗体免疫沉淀至RSK2的CTK结构域。将等分的沉淀物进行SDS–PAGE和Ab免疫印迹,使其与PDK1中的myc标记、RSK2中的phosphosphoSer386或RSK2的HA标记结合。实验进行了三次,结果相似。
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图6。PDK1通过Ser386-磷酸化疏水基序与RSK2相互作用。用表达myc-PDK1、HA-RSK2、HA-RSK2突变体、MEK-S217/221E的质粒或空载体(-)转染COS7细胞,如各面板所示。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,细胞被溶解。(A类)用Ab对细胞裂解物进行HA标记免疫沉淀,然后对沉淀的等分部分进行SDS–PAGE,并用Ab免疫印迹PDK1中的myc标记或RSK2中的HA标记。(B类)细胞裂解物在含有或不含磷酸酶抑制剂(原钒酸盐、花萼蛋白、氟化钠)的裂解缓冲液中用抗体对HA标签进行免疫沉淀。将等分的沉淀物进行SDS–PAGE和Ab免疫印迹,使其与PDK1中的myc标记、RSK2中的phosphosphoSer386或RSK2的HA标记结合。(C类)用Ab对细胞裂解物进行免疫沉淀至RSK2的CTK结构域。将等分的沉淀物进行SDS–PAGE和Ab免疫印迹,使其与PDK1中的myc标记、RSK2中的phosphosphoSer386或RSK2的HA标记结合。实验进行了三次,结果相似。
无
图7。在生长因子处理的细胞中招募PDK1至RSK2。如图所示,COS7细胞与表达激酶缺陷型(KD)myc-PDK1和HA-RSK2或HA-RSK2-S386K的质粒共转染。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,将细胞暴露于或不暴露于20 nM EGF中25分钟,然后溶解。将细胞裂解物与HA标签上的Ab进行免疫沉淀。将等分的沉淀物进行SDS–PAGE并用抗体对PDK1中的myc标记进行免疫印迹(A类)或RSK2中的HA标签(B类)。通过对免疫沉淀前裂解产物进行myc标记的免疫印迹,验证PDK1在细胞中的平等表达(C类)。实验进行了三次,结果相似。
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图8。PDK1与RSK2的Ser386-磷酸化疏水基序结合后的自磷酸化体内. (A类B类)如图所示,COS7细胞与表达野生型或突变型myc-PDK1和HA-RSK2的质粒以及MEK-S217/221E共同转染。KD表示激酶缺陷突变体。转染后48小时,细胞被血清饥饿3小时。随后,在SDS-PAGE样品缓冲液中对细胞进行裂解,并进行SDS-PACE和抗体对PDK1中myc标记的免疫印迹。实验进行了三次,结果相似。
无
图9。含有磷酸化-Ser386的RSK2肽诱导PDK1的自磷酸化在体外免疫纯化的myc-PDK1单独(不添加)或与10µM S6肽或RSK2肽残基373–396预孵育20分钟,其未磷酸化(Ser386肽)或在Ser386磷酸化(pSer386肽类)。(A类)允许PDK1在存在[γ]的情况下自动磷酸化20分钟-32P] ATP,然后对反应进行SDS-PAGE和放射自显影。(B类)允许PDK1在存在或不存在ATP的情况下自动磷酸化35分钟,然后对反应进行SDS-PAGE和抗体免疫印迹以识别PDK1中的myc标记。实验进行了两次,结果相似。
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图10。含有磷酸化Ser386的RSK2肽激活PDK1在体外免疫纯化的myc-PDK1单独(不添加)或与10µM S6肽、Ser386肽或pSer386肽类预先孵育20分钟。(A类C类)然后用[γ]孵育PDK1 10分钟-32P] ATP和2微克RSK21–373KD或0.5µg RSK21–360作为底物,如每块面板所示,然后对反应进行SDS–PAGE和放射自显影。(B类)(A)中PDK1活性通过定量加入RSK2的放射性测定1–373KD使用荧光成像仪。数据表示为pSer386肽存在时PDK1活性的百分比,是三个独立实验的平均值±SD。以下条形图的数据与未成对条形图相比没有差异t吨-测试:1对2或3(第页>0.2)。条形图1和条形图4中的数据与未成对数据相比有所不同t吨-测试(第页<0.001).
无
图11。RSK2和MSK1的组成活性突变体。用表达HA-标记野生型或突变型RSK2或MSK1和myc-标记PDK1的质粒转染COS7细胞,如每个面板所示。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,将细胞暴露于(或不暴露于)20 nM EGF中20分钟并溶解。(A类)用抗体从细胞裂解液中沉淀RSK2至HA标签,并进行激酶分析(下面板)。数据表示为EGF-刺激的全长RSK2活性的百分比,是重复进行的3-4个独立实验的平均值±SD。以下条的数据与未干燥的相比有所不同t吨-测试:3对6(第页<0.05);3对7(第页<0.01). 激酶分析后,沉淀物用抗体对HA标签进行免疫印迹(上面板)。(B类)MSK1从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签,测定其激酶活性,并以EGF刺激的野生型MSK1活性的百分比表示(下表)。数据是重复进行的四个独立实验的平均值±SD。激酶分析后,用抗体对MSK进行HA标签免疫印迹(上面板)。(C类)MSK1突变体从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签。用抗体对PDK1中myc标记或MSK1中HA标记的沉淀进行免疫印迹。通过对免疫沉淀前裂解产物进行myc标记的免疫印迹,验证PDK1在细胞中的平等表达。实验进行了三次,结果相似。(D类)MSK1突变体从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签,并进行激酶分析(下面板)。数据以CA-MSK1活性的百分比表示,是重复进行的三个独立实验的平均值±SD。激酶分析后,沉淀物用抗体对HA标签进行免疫印迹(上面板)。
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图11。RSK2和MSK1的组成活性突变体。用表达HA-标记野生型或突变型RSK2或MSK1和myc-标记PDK1的质粒转染COS7细胞,如每个面板所示。在48小时和最后3小时的血清饥饿期后,将细胞暴露于(或不暴露于)20 nM EGF中20分钟并溶解。(A类)用Ab将RSK2从细胞裂解物中沉淀到HA标签上,并进行激酶测定(下图)。数据表示为EGF-刺激的全长RSK2活性的百分比,是重复进行的3-4个独立实验的平均值±SD。以下条的数据与未干燥的相比有所不同t吨-测试:3对6(第页<0.05);3对7(第页<0.01). 激酶分析后,沉淀物用抗体对HA标签进行免疫印迹(上面板)。(B类)MSK1从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签,测定其激酶活性,并以EGF刺激的野生型MSK1活性的百分比表示(下表)。数据是重复进行的四个独立实验的平均值±SD。激酶分析后,用抗体对MSK进行HA标签免疫印迹(上面板)。(C类)MSK1突变体从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签。沉淀用Ab对PDK1中的myc标签或MSK1中的HA标签进行免疫印迹。通过对免疫沉淀前裂解产物进行myc标记的免疫印迹,验证PDK1在细胞中的平等表达。实验进行了三次,结果相似。(D类)MSK1突变体从带有Ab的细胞裂解液中沉淀到HA标签,并进行激酶分析(下面板)。数据以CA-MSK1活性的百分比表示,是重复进行的三个独立实验的平均值±标准差。激酶分析后,沉淀物用抗体对HA标签进行免疫印迹(上面板)。
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图12。 体内RSK2和MSK1的核靶向、组成活性突变体对组蛋白H3和CREB的磷酸化。用表达HA标记野生型或突变型RSK2或MSK1的质粒转染COS7细胞。NLS,核定位序列。在24小时和最后3小时血清饥饿期后,将细胞暴露于或不暴露于20 nM EGF 25分钟。细胞在SDS–PAGE样品缓冲液中进行裂解,并用Abs对Ser10磷酸化的组蛋白H3进行免疫印迹(A类),到HA标签(B类)或至Ser133磷酸化的CREB(C类).
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图13。PDK1和RSK2的招募和协调激活模型。(1) 静止细胞包含一个由非活性RSK和ERK预先形成的复合物。(2)刺激Ras–ERK途径导致ERK催化的连接物和CTK磷酸化,导致疏水基序(蓝框)中Ser386处RSK2的自磷酸化。(3) 疏水基序中Ser386的磷酸化产生一个对接位点,允许PDK1和RSK2之间形成复合物。(4) PDK1与Ser386-磷酸化疏水基序的相互作用刺激PDK1活性和自身磷酸化。PDK1局部浓度的增加和激酶活性的结合确保了Ser227的有效磷酸化,从而导致RSK的完全激活。

类似文章

引用人

工具书类

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