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.2000年3月1日;19(5):979-88.
doi:10.1093/emboj/19.5.979。

PDK1激酶结构域中与PIF和PKA C末端残基相互作用的口袋的鉴定

附属公司

PDK1激酶结构域中与PIF和PKA C末端残基相互作用的口袋的鉴定

R M Biondi公司等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

3-磷酸肌醇依赖性蛋白激酶-1(PDK1)磷酸化并激活AGC亚家族的许多蛋白激酶。PDK1的激酶域通过疏水基序与蛋白激酶C相关激酶-2(PRK2)的一个区域相互作用,称为PDK1相互作用片段(PIF)。在这里,我们在PDK1激酶结构域的小叶中发现了一个疏水口袋,与ATP和底物结合位点分离,与PIF相互作用。据预测,构成该疏水囊的残基突变会破坏或显著降低PDK1对PIF的亲和力。PIF增加了PDK1磷酸化合成十二肽(T308tide)的速率,与PKB的PDK1磷酸化酶位点周围的序列相对应。该肽是PDK1的不良底物,但包含与PIF的PDK1-结合基序融合的T308肽的肽是PDK1的极为优越的底物。我们的结果表明,PDK1激酶结构域上的PIF-结合囊作为一个“对接位点”,使其能够与底物相互作用并增强其磷酸化。

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数字

无
图1。PDK1与PKA野生型和突变型C末端片段的双杂交相互作用。(A类)用融合到Gal4 DNA-结合域(GBD)的表达PDK1的载体,以及编码PIF或野生型的C-末端26残基或PKA(PKA)C-末端片段的指示突变体的载体,转化Y190酵母菌株计算机断层扫描残基129-350)融合到Gal4激活域(GAD)。作为对照,酵母也与单独的GBD结构域和单独的GAD结构域共同转化。酵母在30℃下培养过夜,并在30℃进行4小时的β-半乳糖苷酶过滤提升试验。GBD–PDK1和GAD–PKA之间的相互作用计算机断层扫描诱导β-半乳糖苷酶的表达,该酶在过滤提升分析中被检测为蓝色。(B类)PKA的C端77个氨基酸的氨基酸序列与AGC亚家族激酶的等效区域对齐。相同的残留物用黑色背景上的白色字母表示,类似的残留品用灰色方框表示。疏水基序中的芳香残基以红色表示。
无
图2。C端Phe-Xaa-Xaa-PKA残基与PKA激酶结构域上的疏水囊相互作用,预计在PDK1中保守。(A类)PKA–PKI–ATP三元配合物(Zheng)的带状结构.,1993年);PKI以黄色显示,ATP分子突出显示。C端Phe347和Phe350以红色显示。T环中磷酸化-Thr197(PDK1磷酸化位点)的位置显示。(B类)与PKA的C末端Phe-Xaa-Xaa-Phe残基相互作用的PKA激酶结构域上疏水口袋的详细结构。Lys76(相当于PDK1中的Lys115)显示为绿色,Leu116(相当于PDF中的Leu155)显示为黄色,Phe347和Phe350显示为红色,某些胺残基显示为蓝色。(C类)PDK1激酶结构域的结构按照材料和方法中的描述进行建模。PDK1的区域相当于PKA的疏水囊,称为PIF-结合囊。强调了预测与PIF结合有关的残基,包括Q150的酰胺残基。(D类)PDK1的氨基酸残基在PIF-结合囊和PKA的等效区域周围的排列。相同的残留物用黑色背景上的白色字母表示,类似的残留品用灰色方框表示。PKA上与C末端Phe-Xaa-Xaa-Phe基序相互作用的残基用星号标记。
无
图3。PDK1的PIF-结合囊中保守残基突变对PDK1与PIF相互作用能力的影响。用表达GST–PIF和野生型Myc-PDK1或PDK1指定突变体的DNA构建物瞬时转染293细胞。在转染后36小时,通过谷胱甘肽-Sepharose珠亲和层析对细胞进行裂解并纯化GST-PIF。在10%SDS–聚丙烯酰胺凝胶上电泳每种蛋白质的2μg小份,并用考马斯蓝染色(A类E类)或使用抗Myc抗体进行免疫印迹检测Myc-PDK1(B类F类)。为了确定野生型PDK1和突变蛋白的表达水平相似,在10%SDS–聚丙烯酰胺凝胶上电泳10μg总细胞裂解液,并使用抗Myc抗体进行免疫印迹(C类G公司)。显示了每个条件的副本。在三到五个单独的实验中也得到了类似的结果。(D类H(H))如材料和方法中所述,在BiaCore仪器上进行表面等离子共振测量,以测量野生型和突变型GST–PDK1制剂与24残基合成肽的相互作用,24残基的合成肽序列包含PIF上PDK1结合位点,称为PIF肽(Balendran.,1999年a)。PIFtide固定在SA传感器芯片上,并以40 nM的浓度注入野生型(wt)或PDK1的指示突变体。所有数据均为代表性实验的单次测定,该实验重复至少三次,结果相似。为了清楚起见,与第一次和最后10秒注入相关的体折射率变化已被去除。
无
图4。PDK1的Leu155突变体在双杂交系统中不与PIF或PKA的C端片段相互作用。将表达野生型PDK1或PDK1指示突变体的载体与编码PRK2(PIF)26个C末端残基或PKA(PKA)C末端片段表达的载体融合到Gal4 DNA-结合域(GBD),转化Y190酵母菌株计算机断层扫描残基129-350)融合到Gal4激活域(GAD)。作为对照,酵母也与仅表达GAD和GBD域的载体共转化。酵母在30℃下培养过夜,并在30℃进行4小时的β-半乳糖苷酶过滤提升试验。GBD–PDK1与GAD–PIF或GAD–PKA之间的相互作用计算机断层扫描诱导β-半乳糖苷酶的表达,在过滤提升试验中检测为蓝色(图中显示为黑色)。
无
图5。PDK1野生型和PIF-结合口袋突变体对PKB Thr308的磷酸化作用。GST-PDK1的野生型或突变型在293细胞中表达,并通过谷胱甘肽-Sepharose珠亲和层析纯化。在存在或不存在含有100μM磷脂酰胆碱、100μM磷脂酰丝氨酸和10μM磷脂囊泡的情况下,将每个GST融合蛋白(0.2 ng)与GST–S473D-PKBα和MgATP在30°C下孵育30分钟-1-硬脂酰-2-花生四烯醇--铂族锡(3,4,5)PGST–S473D-PKBα比活性的增加是相对于省略PDK1的对照培养基测定的(六次测定的平均值,三次独立实验)。GST–S473D-PKBα的基本活性为1.5 U/mg。在所用条件下,已验证GST–473D-PKBβ的激活与添加到分析中的PDK1量成正比(数据未显示)表示省略了PDK1。
无
图6。PDK1通过与PIFtide的相互作用被激活和稳定。(A类)在野生型(wt)PIF肽(•)或突变型D978A-PIF肽浓度增加的情况下测量GST-PDK1活性(○), 如材料和方法中所述,使用名为T308肽的合成肽底物。使用Kaleidrograph软件将数据拟合成双曲线。PDK1 50%活化所需的浓度为0.14μM(wt-PIFtide)和1.1μM(D978A-PIFtied)。所示试验一式三份,每次试验之间的差异<5%。在两个进一步的实验中也得到了类似的结果。(B类)野生型GST-PDK1(圆圈)或GST-PDK1的L155D突变体(正方形)在存在(封闭符号)或不存在(开放符号)100μM PIF潮汐的情况下培养,然后在指定温度下加热2分钟,快速加热至0°C(见材料和方法),2分钟后,以T308tide为底物,在30°C下检测10分钟。在30°C下培养获得的PDK1活性为100%。所示分析重复进行,在两个单独的实验中获得类似结果。
无
图7。PIF肽对PDK1 PIF口袋突变体的影响。在不存在(虚线条)或存在2 mM PIFtide(虚线条状)或35μM PIFtade(填充条状)的情况下,使用T308肽对GST–PDK1的野生型和指示突变体进行分析。在所用条件下,PDK1对T308肽的磷酸化与时间呈线性关系(数据未显示)。(A类)PDK1突变体在缺乏PIFtide和(B类)被高浓度PIFtide激活的突变体。试验一式三份进行,三份样品之间的差异<10%。在三个单独的实验中也得到了类似的结果。
无
图8。PDKtide作为PDK1的底物远远优于T308tide,因为它与PDK1中的PIF-结合囊相互作用。(A类)以PDK肽的指示浓度作为底物,检测His-PDK1的活性(▵)或T308潮汐(○). (B类)在PDK肽(25μM,▴) 或T308肽(100μM,•),前提是PIF肽的指示浓度。该试验一式三份,三份样品之间的差异小于5%。在三个单独的实验中获得了类似的结果

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