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2007年10月9日;104(41):16170-5.
doi:10.1073/pnas.0703942104。 Epub 2007年10月2日。

miR-155抑制肿瘤蛋白53诱导的核蛋白1表达,其恢复抑制胰腺肿瘤的发展

附属公司

miR-155抑制肿瘤蛋白53诱导的核蛋白1表达,其恢复抑制胰腺肿瘤的发展

Meritxell Gironella公司等。 美国国家科学院程序

摘要

胰腺癌是一种预后极差的疾病。肿瘤蛋白53诱导核蛋白1(TP53INP1)是一种促凋亡应激诱导的p53靶基因。在本文中,我们通过免疫组化分析表明,TP53INP1在胰腺导管腺癌(PDAC)中的表达显著降低,并且这种降低在胰腺癌发展早期发生。胰腺癌衍生细胞系MiaPaCa2中TP53INP1的再表达强烈降低了其在裸鼠体内形成皮下、腹腔和胰腺内肿瘤的能力。这种抗肿瘤能力至少部分归因于caspase 3介导的凋亡诱导。此外,用表达E1A/ras(V12)癌蛋白的逆转录病毒转化的TP53INP1(-/-)小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)比TP53INP(+/+)转化的MEFs或TP53INPI(-/--)转化的具有恢复TP53INP2表达的MEF产生更大的肿瘤。最后,TP53INP1的表达被PDAC细胞中过度表达的致癌微RNA miR-155抑制。TP53INP1是一个未知的miR-155靶点,具有抗肿瘤活性。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
TP53INP1在PDAC和转移中表达缺失。显示正常胰腺组织大导管上皮细胞TP53INP1阳性免疫染色(一个),粘液性囊腺瘤(B类)导管内乳头状黏液肿瘤(C类)慢性胰腺炎(D类). PDAC中未检测到TP53INP1蛋白(E类)和肝转移(F类). (G–I型). 早期病变TP53INP1阳性,PanIN-1B、PanIN-2和PanIN-3(黑色箭头)PanIN-1A(红色箭头)阴性。
图2。
图2。
TP53INP1在MiaPaCa2细胞中诱导表达并抑制皮下和腹腔肿瘤生长。(一个)TP53INP1或EGFP诱导的MiaPaCa2细胞在PonA 10μM或载体存在下培养,作为对照。16小时后,用抗EGFP抗体检测细胞TP53INP1-EGFP或EGFP的表达。(B类)将细胞注入小鼠胰腺,2周后植入PonA释放颗粒。48小时后,通过绿色荧光显示TP53INP1诱导。(C类)将TP53INP1诱导的MiaPaCa2细胞与增加浓度的PonA一起孵育48小时(上部). 用PonA 10μM处理细胞指定时间,并用Western blot分析TP53INP1的表达(下部). β-微管蛋白水平作为负荷对照。(D类)将1000万TP53INP1诱导的MiaPaCa2细胞皮下注射到携带PonA的小鼠体内(n个=6)或车辆(n个=6)释放颗粒。每周测定肿瘤体积,如SI材料和方法. (E类)车用治疗小鼠皮下和腹腔肿瘤的组织学分析。(F类)腹腔注射千万TP53INP1诱导的MiaPaCa2细胞至携带PonA的小鼠(n个=6)或车辆(n个=6)释放颗粒。展示了代表性的照片。数值表示为平均值±SE.*,P(P)< 0.05.
图3。
图3。
TP53INP1修复抑制胰腺癌模型肿瘤生长体内1800万可诱导的MiaPaCa2细胞被注射到裸体老鼠(n个=每组7个),在皮下埋植微丸释放载体后1天作为对照(V)或PonA(P)。细胞注射后19天进行胰腺肿瘤生长和扩散评估。(一个) (左侧居中)胰腺肿瘤的代表性照片。(赖特)胰腺内肿瘤体积(肿瘤大小按照SI材料和方法). (B类) (左侧)显示PonA和载体治疗动物(Sp,脾脏;Pa,胰腺)胰腺肿瘤扩散的典型图像。(居中)HES染色的胰腺和脾脏的代表性图像,来自载体和PonA处理的动物。肿瘤表面轮廓为黑色,并用箭头表示。(赖特)近端延伸指数的表示。该指数的确定如所述SI材料和方法. (C类) (左侧居中)TP53INP1诱导MiaPaCa2或EGFP诱导Mia PaCa2肿瘤的载体和PonA治疗动物胰腺肿瘤活性caspase-3免疫组织化学的代表性图像。(赖特)肿瘤表面含有活性半胱天冬酶-3的百分比。数值表示为平均值±SE.*,P(P)< 0.05.
图4。
图4。
TP53INP1的再表达降低了E1A/ras-TP53INP1的生长速度−/−MEF公司在体外体内. (一个)PCR检测原发性MEF的TP53INP1基因型。(B类)蛋白质印迹显示E1A/ras-TP53INP1中TP53INP1的恢复−/−MEF公司。通过E1A/ras-TP53INP1的转导获得TP53INP1-修复−/−带有表达TP53INP1(TP53INP2)逆转录病毒的MEF−/−加上TP53INP1)。以β-微管蛋白(β-tub)为对照。含有TP53INP1α和β转染蛋白的总细胞提取物平行迁移(M)(C类)E1A/ras-MEF的生长曲线。(D类)E1A/ras-MEF的软膏增长。(E类)皮下肿瘤生长裸体老鼠。皮下注射了一百万个细胞。肿瘤体积的测定如SI材料和方法. (左侧)E1A/ras-TP53INP1的肿瘤生长−/−MEF公司(n个=6)与E1A/ras-TP53INP1+/+MEF公司(n个= 6). 箭头对应于所示肿瘤的切除。(赖特)E1A/ras-TP53INP1的肿瘤生长−/−MEF公司(n个=6)与E1A/ras-TP53INP1−/−MEF重新表达TP53INP1(n个= 5). (F类)皮下肿瘤的典型图像。数值表示为平均值±SE.*,P(P)< 0.05.
图5。
图5。
TP53INP1是miR-155靶点。(一个)数据表示PDAC和肿瘤周围胰腺(PTP)之间的mRNA和miR-155水平比率。TP53INP1免疫组化分析如下图所示:+,阳性染色;−,阴性染色。(B类)小鼠、大鼠和人类miR-155和TP53INP1 3′UTR在不同物种中的比对。(C类)荧光素酶分析中使用的pMIR-TP53INP1载体的表示。(D类)293T细胞与pMIR-TP53INP1 3′UTR构建物共转染3′或3′5′取向,以及miR-155或miR-control的指示浓度。转染48 h后测定荧光素酶活性。(E类)用50 nM miR-155或miR-对照转染MCF7细胞。在用p53表达载体转染和γ射线照射(30 Gy)后,通过Western blot和RT-PCR评估TP53INP1水平。以β-微管蛋白水平为对照。数值表示为平均值±SE.*,P(P)< 0.05. (F类)用抗-miR-155或抗-miR对照转染Capan2细胞,并用γ射线照射(30Gy),通过蛋白质印迹评估TP53INP1水平。以β-微管蛋白水平为对照。转染有TP53INP1表达质粒的Capan2细胞作为分子量控制(M)平行迁移。(G公司)用Anti-miR-155或Anti-miR对照转染Capan2细胞24小时后检测细胞凋亡。

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