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生理学杂志。2009年6月1日;587(第11部分):2537–2553。
2009年4月9日在线发布。 数字对象标识:10.1113/jphysiol.2008年168252
预防性维修识别码:项目经理2714019
PMID:19359365

2+Rho激酶通过磷酸化肌球蛋白磷酸酶靶向苏氨酸-855亚基促进动脉肌源性反应

关联数据

补充资料

摘要

2+据推测,致敏作用可能导致跨壁压升高引起阻力动脉的肌源性收缩。然而,目前尚无法获得维持这一观点所需的磷酸化肌球蛋白轻链磷酸酶(MLCP)靶向亚单位1(MYPT1)和/或17kDa蛋白激酶C(PKC)增强蛋白磷酸酶1抑制剂蛋白(CPI-17)压力诱导增加的生化证据。在这里,我们确定Ca2+分别涉及Rho激酶(ROK)和PKC依赖的MYPT1和CPI-17磷酸化的致敏途径有助于大鼠大脑中动脉的肌源性反应。ROK抑制剂(Y27632,0.03–10μmol l−1; H1152,0.001–0.3μmol l−1)和PKC抑制剂(GF109203X,3μmol l−1; 哥伦布6976;10μmol升−1)抑制40-120 mmHg之间的肌源性血管收缩。开发了一种改进的、高灵敏度的三步Western blot方法,用于检测和定量MYPT1和CPI-17磷酸化。将压力从10 mmHg增加到60 mmHg或100 mmHg会显著增加MYPT1在苏氨酸-855(T855)和肌球蛋白轻链(LC)的磷酸化20). MYPT1在苏氨酸-697(T697)和CPI-17处的磷酸化不受压力影响。MYPT1-T855和LC中的压力诱发升高20磷酸化被H1152降低,但MYPT1-T697磷酸化不受影响。GF109203X对PKC的抑制不影响MYPT1或LC20100 mmHg时的磷酸化。我们的发现提供了第一个直接的生化证据,证明钙2+涉及T855(但不是T697)MYPT1的ROK依赖性磷酸化和随后LC增加的致敏途径20磷酸化有助于大脑血管中动脉直径的肌源性控制。相反,PKC抑制剂对肌源性反应的抑制不能归因于钙的阻滞2+由CPI-17或MYPT1磷酸化介导的致敏作用。

阻力动脉因跨壁压力增加而收缩,因压力降低而扩张的能力称为肌源性反应。这种机制是外周血管阻力、血压和包括脑血管在内的几个血管床区域血流控制的重要决定因素(Davis&Hill 1999年). 尽管肌源性反应已经被认识了100多年(贝利斯,1902年),我们对这一基本生理机制所涉及的基本机制的理解是不完整的。

肌源性反应是阻力动脉血管平滑肌细胞的固有特性,在没有内皮或神经元输入的情况下发生(Davis&Hill,1999年希尔等。2001). 肌源性收缩部分取决于膜电位水平(E类)血管平滑肌细胞,因为收缩钙的主要来源2+流入通过电压门控钙发生2+信道(VGCC)(Davis&Hill,1999年希尔等。20012006). 目前的一个工作假设认为,肌源性反应来自:(1)压力诱导的去极化E类由于非选择性阳离子通道(和/或氯化物和VGCC)的激活,(2)VGCC的电压依赖性激活,(3)胞浆钙的升高2+液位([Ca2+]),(4)钙2+-肌球蛋白轻链激酶(MLCK)的依赖性激活,(5)20kDa肌球蛋白轻链亚基(LC)的磷酸化20),(6)开始跨桥循环,以及(7)产生力(等。19952000Davis&Hill,1999年希尔等。20012006).

然而,一些证据表明,除了膜电位和[Ca2+]也可能有助于肌源性反应中的力产生(达安吉洛等。1997范·巴维尔等。2001拉高(Lagaud)等。2002Osol公司等。2002戈基纳等。2005). 中的标记更改E类和[Ca2+]伴随脑动脉肌源性收缩的压力<~60 mmHg(Osol公司等。2002). 然而,尽管为了保持直径恒定而增加了作用力,但这两个参数在60至140 mmHg之间都没有明显变化。同样,在较大的压力阶跃下,仓鼠颊囊小动脉的稳态收缩更大,但[Ca2+]是相似的(达安吉洛等。1997). 在升高的外[K+]解决方案,一种夹紧操作E类在去极化水平,并排除钙的变化2+通过VGCC进入(拉高(Lagaud)等。2002). 通过Y27632或RhoA和ROK的显性阴性突变体抑制PKC活性或抑制ROK来抑制肌源性反应(范·巴维尔等。2001拉戈等。2002舒伯特等。2002Yeon公司等。2002博尔兹等。2003中村等。2003Jarajapu&Knot,2005年迪布罗卡等。20052007戈基纳等。2005). 例如,Y27632导致高外[K+]或在α-毒素渗透后细胞内[Ca无变化2+](拉戈等。2002戈基纳等。2005). 综上所述,这些发现已被解释为表明钙的韩国和/或PKC依赖机制2+致敏有助于肌源性反应(舒伯特等。2008)以类似于激动剂引起的平滑肌收缩的方式(索姆利奥和索姆利欧,2003年斯瓦德等。2003平野,2007).

2+敏化是激动剂引起平滑肌收缩的现象,而[Ca几乎没有升高2+]通过改变MLCK和肌球蛋白轻链磷酸酶(MLCP)活性之间的平衡(索姆利奥和索姆利欧,2003年). LC的范围20磷酸化和随后的力生成是由MLCK和MLCP的相对活性决定的。激活G的激动剂12/13-偶联受体通过小GTPase RhoA激活ROK诱导敏化(索姆利奥和索姆利欧,2003年斯瓦德等。2003平野,2007). 韩国在苏氨酸-697(T697)和/或苏氨酸-855(T855)(可能还有CPI-17;平野,2007)以组织依赖的方式导致MLCP活性抑制(等。1999贝拉斯科等。2002穆兰伊等。2005). 2+在Gq个-苏氨酸38处的偶联受体占有率和CPI-17随后的磷酸化导致CPI-17对MLCP的抑制作用增加1000倍(林下(Hayashi)等。2001). 两种信号通路引起的MLCP活性降低改变了MLCK–MLCP平衡,有利于MLCK依赖的LC磷酸化20,在给定[Ca时产生更大的力2+]; 即力向左移动[加利福尼亚州2+]关系(索姆利奥和索姆利欧,2003年瑞士等。2003).

如果ROK-和/或PKC介导的Ca2+敏化有助于肌源性反应,MYPT1和/或CPI-17磷酸化预计会随着磷酸化-LC的增加而增加20力的产生和力的左移[加利福尼亚州2+]关系。值得注意的是,目前:(1)没有证据表明跨壁压力升高会导致阻力动脉中MYPT1或CPI-17磷酸化增加,(2)在唯一一项直接测试[Ca]生理范围内敏感性的研究中2+]使用加压、α-毒素渗透的动脉,力量不变[加利福尼亚州2+]在0和80毫米汞柱之间有明显的关系(麦卡伦等。1997). 事实上,以前的研究完全依赖于钙变化的替代性间接标记物2+灵敏度(舒伯特等。2008)例如动脉直径和体积之间关系的改变2+]用Fura-2评估(例如。达安吉洛等。1997). 在缺乏钙的直接证据的情况下2+致敏,由于抑制ROK或PKC信号而抑制肌源性收缩的可能性是不可忽视的,这是由于干扰了与肌源性反应有关的其他细胞机制所致。例如,众所周知,韩国和PKC会改变平滑肌L型钙2+、非选择性阳离子和K+通道活性,修改Ca2+处理、调节跨桥循环(通过钙调素或钙调素)和/或影响肌动蛋白细胞骨架重排(Cipolla&Osol,1998年等。2000金子等。2000Morgan&Gangopadhyay,2001年吉斯达尔等。2003Wier&Morgan,2003年沙比尔等。2004卢克纳尔等。2004威尔逊等。2005Gerthoffer,2005年维拉尔巴等。2008).

获取钙的生化证据2+肌源性反应的致敏性一直存在问题(Davis&Hill,1999年舒伯特等。20022008). MYPT1、CPI-17和LC的常规测量20由于血管较小,阻力动脉中的磷酸化是不可能的。例如,许多压力动脉造影研究中使用的大鼠大脑中动脉段(RCA)通常长0.5–1.0 mm,直径0.1–0.2 mm,壁厚为2–5个平滑肌细胞。这些片段产生的蛋白质少于1μg,且仅微量MYPT1、CPI-17和LC20标准的Western印迹技术无法检测到的。因此,肌源性动脉中磷酸化-MYPT1和磷酸化-CPI-17的准确定量需要开发一种灵敏度更高的方法,如用于测量LC20直径20μm肾传入小动脉的磷酸化(武也等。2008).

在这项研究中,我们检验了Ca2+ROK和PKC分别通过MYPT1和CPI-17磷酸化介导的致敏机制有助于RCA的肌源性反应。我们采用三步Western blot方法量化磷酸化MYPT1、磷酸化CPI-17和磷酸化-LC20在不同的椎间压力下。我们的数据提供了第一个直接的生物化学证据,证明压力升高导致T855处MYPT1的ROK依赖性磷酸化,导致LC增加20有助于肌源性反应中产生力量的磷酸化。

方法

道德认可

雄性Sprague-Dawley大鼠(250–275 g;Charles River,Montréal,Quebec,Canada)根据加拿大动物护理委员会的标准和卡尔加里大学医学院动物护理委员会审查的方案,通过吸入氟烷和放血来维持和杀死。共使用了95只大鼠。

完整的脑动脉压力肌电图

小心取出大脑,置于含有(mmol)的冰镇克雷布斯溶液中−1):氯化钠120,氯化钠25、KCl 4.8、NaH2人事军官41.2、硫酸镁41.2、葡萄糖11、氯化钙21.8(用95%空气–5%CO充气时pH值为7.42). 如前所述,从大脑中取出左右大脑中动脉(RCA),从周围组织中剥离并切割成2 mm段,以准备动脉压力肌电图检查(平面等。2005等。2006). 简单地说,大脑动脉被安装在连接到压力肌电图仪(美国弗吉尼亚州伯灵顿市Living Systems)的动脉造影室中,用于使用自动边缘检测系统(美国马萨诸塞州米尔顿市IonOptix)测量动脉直径。通过短暂地将气流通过血管腔,从所有动脉中去除内皮细胞,并通过血管舒张功能丧失至10μmol l证实−1缓激肽。让动脉在Krebs溶液中加热至37°C 30分钟,然后加压至60 mmHg,并在30–45分钟内形成活跃色调。所有动脉都要经历两个5分钟的压力步骤,从20到80 mmHg以确保形成稳定的压力依赖性肌源性收缩。出现泄漏和/或压力收缩不稳定的容器被丢弃。在肌源性收缩发展和稳定后,压力降至10 mmHg持续10分钟,然后对血管进行压力方案1、2或3。

压力协议1

通过将压力从10 mmHg增加到100 mmHg,使肌张力稳定(~5 min),然后增加ROK抑制剂的浓度(Y27632,0.03–10μmol l),确定ROK抑制剂对压力诱导收缩的浓度依赖性作用−1; H1152,1–3000毫摩尔升−1)以累积方式添加到超滤液中,在直径稳定后,根据之前的施用情况施加每个新浓度(Y27632通常为10分钟,H1152通常为5分钟)。2+-游离克雷布斯溶液(零[Ca2+]o(o))含1.0 mmol−1EGTA和10μmol l−1尼群地平用于测定100 mmHg时最大舒张动脉直径。

压力协议2

ROK和PKC抑制剂在一定压力范围内对肌源性张力的影响是通过使血管以20 mmHg的增量经受10至120 mmHg三个系列的压力步骤来确定的。第一个系列应用于正常Krebs溶液(对照)。然后将压力降至10 mmHg和H1152(0.3μmol l−1),Y27632(1μmol l−1),GF109203X(3μmol l−1)或Gö6976(10μmol l−1)在第二系列压力步骤之前将其加入到超浮体中。然后再次将压力降至10 mmHg,并用零Ca替换韩国或PKC抑制剂溶液2+在第三系列压力步骤之前进行克雷布斯溶液,以确定各压力下动脉的被动直径。主动性肌源性收缩被定义为每种压力下动脉直径在0[Ca2+]o(o)正常Krebs溶液或存在ROK或PKC抑制剂溶液。

压力协议3

磷酸-MYPT1和磷酸-LC的分析20在10分钟至10、60或100毫米汞柱的步骤之前,使用快速冷冻血管按照包括两个5分钟至80毫米汞柱的步骤和在10毫米汞柱的10分钟平衡的压力方案来完成。在CPI-17实验中,达到10、60和100 mmHg的最后步骤持续时间为3分钟。在三个实验中,在100 mmHg下0.5分钟后也对CPI-17进行了评估。在一些MYPT1实验中,300 nmol l−1在~5分钟后(即达到稳定的动脉直径后),将H1152添加到超滤液中。动脉在10%三氯乙酸(TCA)和10 mmol−1丙酮中的二硫苏糖醇(DTT)。在含有10 mmol l的冰镇丙酮中清洗动脉−1DTT和冻干过夜。在提取蛋白质之前,从冻干的血管段上解剖血管的空心端,并丢弃,以避免包括未经受试验压力的组织。

蛋白质提取

对于蛋白质提取,400μl样品缓冲液(4%SDS,100 mmol l−1DTT、10%甘油、0.01%溴酚蓝(BPB)、60 mmol l−1每个实验组将Tris-HCl(pH 6.8)添加到4-6条合并的脑血管中(每条长度约0.5 mm)。在电泳之前,样品在95°C下加热10分钟,并在4°C下翻转过夜。避免多次冷冻/解冻循环以限制蛋白质降解。从单个血管段(0.5–1 mm)提取的提取物足以对MYPT1、CPI-17或LC进行定量20通过Western blotting进行磷酸化,但至少需要三条血管才能同时检测所有三种磷酸蛋白的变化,为了确保可靠的检测,我们选择汇集4-6条血管片段。另外五张信用证20使用来自五个单独血管的样本进行杂交,以确保使用混合样本确定的变化与单个血管段中的变化相同。无明显差异,这些额外数据也包括在测定磷酸-LC的平均变化中20带压力。

LC的测量20磷酸化

未磷酸化和单磷酸化LC20用聚丙烯酰胺结合锰进行SDS-PAGE分离2+如前所述的标签(Phos-tag SDS-PAGE)(武也等。2008)经过以下改性:堆积凝胶由4.38%丙烯酰胺、0.12%组成N个N个′-亚甲基双丙烯酰胺,0.1%十二烷基硫酸钠,125 mmol−1三重HCl pH 6.8,0.1%过硫酸铵和0.17%N个N个N个′,N个′-四甲基乙二胺(TEMED)。分离凝胶由12.18%丙烯酰胺、0.32%丙烯酰胺组成N、 N个′-亚甲基双丙烯酰胺,50μmol l−1Phos-tag丙烯酰胺(日本NARD研究所有限公司),100μmol l−1氯化锰2,0.1%十二烷基硫酸钠,375 mmol l−1三重HCl pH 8.8,0.05%过硫酸铵和0.07%TEMED。在0.1%SDS中进行电泳,25 mmol l−1Tris,192毫摩尔升−1甘氨酸30 mA(~1.5 h)。电泳后,将凝胶浸泡在转移缓冲液(25 mmol l−1特里斯,192毫摩尔−1甘氨酸,10%甲醇),含2mmol−1EDTA作用15分钟,然后在不含EDTA的转移缓冲液中作用15分钟。蛋白质在4°C、27 V下转移至PVDF膜(0.2μm孔径)过夜。除非另有说明,否则以下步骤是在室温下执行的。在PBS中清洗吸水膜5分钟。LC20在PBS中的0.5%戊二醛中浸泡45分钟,交联并固定在膜上。在Tris缓冲盐水(TBS;137 mmol l−1氯化钠,3毫摩尔−1氯化钾,20毫摩尔−1Tris-HCl pH7.5),在含有0.02%吐温-20(TBST)的TBS中用0.5%I-Block(Tropix,Bedford,MA,USA)封闭膜1.5小时。为了提高检测灵敏度,使用三步Western blot协议检测LC20从脑血管,并进行如下:所有形式的LC20使用兔抗-LC检测(未磷酸化和单磷酸化)20抗体(1:1000稀释)在TBST(0.1%)中孵育2小时。将膜在TBST(0.02%)中清洗,在含有生物素结合山羊抗兔IgG(1:40 000稀释)的TBST(0.1%)中培养1 h,在TBST中再次清洗(0.02%。然后在TBST(0.02%)中清洗膜,并使用SuperSignal West Femto试剂(Pierce,Nepean,ON,Canada)检测HRP。使用化学发光成像分析仪(LAS3000mini,Fujifilm Canada,Mississauga,ON,Canada)检测并量化发射光。使用Multi-Gauge v3.0软件(Fujifilm)分析获得的图像。

MYPT1磷酸化的测量

使用大形状、20槽、1.5 mm厚、10%聚丙烯酰胺凝胶,在35 mA下用SDS-PAGE分离提取的蛋白质3.5 h。电泳后,在55kDa分子质量标记处切割凝胶。低分子量蛋白质用考马斯亮蓝-R250染色,以量化肌动蛋白。在含有25 mmol l的转移缓冲液中,在100 V下将高分子量蛋白质转移到0.2μm硝化纤维素膜上2 h−1三氯化氢,192毫摩尔−1甘氨酸、1%十二烷基硫酸钠和20%甲醇。用0.5%蓬松S在5%乙酸中染色5分钟,将转移的蛋白质固定在膜上,用蒸馏水冲洗并在Western印迹前干燥过夜。如LC所述,对磷酸化MYPT1进行蛋白质印迹20通过以下修改:在3步Western blot方案中,使用磷酸特异性兔多克隆抗体(1:1000稀释)检测T697和T855磷酸化的MYPT1。在2步Western blot方案中,封闭溶液为TBST中5%脱脂牛奶(0.05%),二级抗体(HRP-结合山羊抗兔IgG)在TBST(0.1%)(1:2000稀释)中孵育1h。

CPI-17磷酸化的测量

如上所述,在4°C的蛋白质提取缓冲液中提取来自肌电图实验的组织过夜。如LC所述,使用Phos-tag SDS-PAGE分离样品20凝胶在转移缓冲液(10 mmol l)中平衡−1含有2 mmol的3-[环己胺基]-1-丙磺酸(CAPS)-NaOH pH 11,15%甲醇)−1将EDTA和蛋白质转移到PVDF膜上,在4°C下100 V下1 h。用PBS清洗后,将膜固定在PBS中0.5%戊二醛中45 min,然后用TBS清洗两次。使用SNAP i.d.系统(Millipore)在TBST(0.1%)中用1%增强化学发光(ECL)高级封闭试剂(GE Healthcare)封闭膜。在4°C下用兔多克隆抗CPI-17(1:2000稀释度)孵育膜过夜,用TBST(0.05%)洗涤,用生物素结合的山羊抗兔IgG在TBST(0.1%)中在室温下孵育1小时,再在TBST中(0.05%在暴露于化学发光试剂之前在室温下持续30分钟,并按照LC所述进行定量20.

材料

除非另有说明,否则所有化学品均购自Sigma/VWR。吐温20和考马斯亮蓝-R250来自生物实验室(加拿大安大略州米西索加)。在T697(抗MYPT1-pT697)或T855(抗MYPT1-pT855)和CPI-17磷酸化的MYPT1特异性兔多克隆抗体从美国上游(弗吉尼亚州夏洛茨维尔,美国)购买。兔抗LC20多克隆抗体来自Santa Cruz(加利福尼亚州,美国)。生物素结合山羊抗兔IgG来自Chemicon International(Billerica,MA,USA),HRP结合山羊抗家兔二级抗体和HRP结合链霉亲和素来自Pierce Biotechnology(Rockford,CT,US)。H1152来自Calbiochem(美国加利福尼亚州圣地亚哥),GF109203X和Gö6976来自Biomol International(美国宾夕法尼亚州普利茅斯会议)。

统计分析

适用时,数值表示为平均值±s.e.m.公司。,使用n个表示给定治疗的实验次数。使用Student’st吨测试或重复测量ANOVA,然后使用Bonferroni’s事后(post-hoc)测试。A级P(P)<0.05被认为具有统计学意义。

结果

高灵敏度检测磷酸化MYPT1的方法

允许量化MYPT1、CPI-17和LC20对加压RCA中的磷酸化、最大化蛋白质提取的修饰以及每个磷酸蛋白的Western blot检测灵敏度进行了鉴定。在样品缓冲液中加入4%的十二烷基硫酸钠(而不是1%),结合过夜的端到端旋转(补充图1,仅在线提供)。该方法也适用于CPI-17和LC20与不固定或用戊二醛固定相比,用0.5%蓬松S–5%乙酸将MYPT1固定在硝化纤维素膜上(5分钟处理)提高了敏感性(补充图2). 当用0.5%I-Block封闭硝化纤维素时,也观察到灵敏度提高其他常用阻断剂(补充图3). 使用包含生物素-链霉亲和素扩增步骤的三步Western blot方案,可最大程度地提高灵敏度。例如,图1显示了使用5′-三磷酸尿苷(UTP)刺激的稀释系列(10μmol l−1)RCA提取物经过SDS-PAGE,转移到硝酸纤维素和使用磷酸特异性抗体检测磷酸-MYPT1。三步方案将磷酸-T697-和磷酸-T855-MYPT1的检测灵敏度提高了约10倍,稀释范围与0.5–3.0 mm长的加压RCA段相对应。可使用相当于一个0.5 mm加压RCA段的样品,采用三步法,对磷酸MYPT1进行常规定量。重要的是,信号强度在稀释范围内呈线性增加,当归一化为考马斯蓝染色肌动蛋白以校正蛋白质负载水平时,信号强度没有变化(图2). 由于避免了在用pan-MYPT1抗体重切前剥离硝化纤维素膜引入的蛋白质的可变损失,因此选择了对总MYPT1进行标准化的方法。

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磷酸-MYPT1-T697的线性(A–C)和磷酸-MYPT1-T855(D–F型)组织提取物的蛋白质印迹

A类D类,稀释系列为10μmol l−1UTP刺激的脑动脉提取物进行SDS-PAGE,并通过三步Western blotting检测MYPT1-T697和-T855的磷酸化。B类E类,信号强度与磷酸-T697-和磷酸-T855-MYPT1蛋白印迹和考马斯蓝染色肌动蛋白的提取物装载量绘制,显示装载的样品量与检测到的信号强度之间的线性关系(n个=3)。C类如果磷酸化MYPT1到考马斯蓝染色肌动蛋白的信号强度标准化产生了一个线性关系,没有偏离预期值(n个= 3).

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两步检测灵敏度磷酸化MYPT1的增强三步Western印迹

将UTP刺激的脑动脉提取物稀释系列(近似于指示数量的200μm×500μm加压大鼠脑动脉段产生的信号强度范围)在T697进行SDS-PAGE和MYPT1磷酸化(A类)和T855(B类)通过2步和3步Western印迹法检测(即同时暴露)。条形图显示了通过2步和3步方法检测到的每个稀释度的磷酸化MYPT1标准化为考马斯蓝染色肌动蛋白的信号强度。在三个实验中也得到了类似的结果。

抑制ROK减轻肌源性收缩

Y27632之前使用浓度为1–10μmol l−1研究韩国在肌源性反应中的作用(范·巴维尔等。2001拉高(Lagaud)等。2002舒伯特等。2002日元等。2002博尔兹等。2003中村等。2003Jarajapu&Knot,2005年迪布罗卡等。20052007戈基纳等。2005). 然而,在这个浓度范围内,它也抑制PKCδ活性(埃托等。2001威尔逊等。2005). 因为PKC与Ca有关2+致敏与肌源性反应(Davis&Hill,1999年日元等。2002舒伯特等。2008)在这里,我们还使用了更有效和选择性更强的韩国抑制剂H1152(K(K)0.0016与。9.3μmol升−1用于PKC;沙沙贵等。2002). 为了确定H1152的适当浓度,将RCA加压至100 mmHg,并以累积的方式施加H1152(图3). Y27632用于平行实验,以与H1152数据进行比较。这两种抑制剂均引起浓度依赖性血管扩张,但IC50与0.44±0.04μmol l相比,H1152在0.02±0.01时的值低于Y27632−1(图3). 1.0和10μmol l时的H1152和Y27632−1分别诱导了接近最大的扩张(分别为94.2±0.6%和92.8±1.2%)至零[Ca时观察到的被动直径2+]o(o)溶液(不添加Ca2+,1毫摩尔−1EGTA和10μmol l−1尼群地平)。

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ROK抑制扩张肌源性收缩

Y27632-的代表性痕量和浓度-响应关系(A类B类n个=5)和H1152(C类D类n个=5)100 mmHg下的膨胀。数据表示为平均值±s.e.m(标准电气).

图4表明Y27632和H1152抑制RCA的肌源性反应。每个血管段在20至120 mmHg的压力范围内经历三个连续的20 mmHg升压系列:(1)对照溶液,(2)Y27632(1μmol l l−1n个=5个血管)或H1152(0.3μmol l−1n个=5条血管)(即实现约80%的肌源性收缩抑制;图3)和(3)零[Ca2+]o(o)解决方案。代表性记录和平均数据图4结果表明,当压力超过40 mmHg时,对照溶液的直径保持不变或减小,而在Y27632或H1152中观察到膨胀。零[Ca中被动膨胀之间的差异2+]o(o)控制或存在ROK抑制剂时的直径是每个压力下主动肌源性收缩的程度(图4C类如果). 与对照组相比,Y27632和H1152的主动收缩减弱表明韩国参与了该病。

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通过抑制ROK抑制肌源性反应

Y27632的影响(A类C类n个=5)和H1152(D类如果n个=5)关于RCA肌源性反应。压力引起的动脉直径的典型变化(A类D类)和平均直径(±s.e.m.公司。)–压力关系(B类E类)对于10–120 mmHg的克雷布斯生理盐水(对照),1μmol l−1Y27632或0.3μmol l−1H1152和零[Ca2+]o(o)解,以及平均主动收缩-压力关系±Y27632(C类)或±H1152(如果). *显著不同(P(P)<0.05)。

MYPT1和LC20加压动脉中的磷酸蛋白水平升高

压力和韩国抑制对MYPT1和LC水平的影响20通过Western blot分析研究磷酸化。我们采用了直径稳定的血管段(约10分钟后),步骤为从10 mmHg到10、60或100 mmHg±H1152(0.3μmol l)−1)在闪蒸冻结之前,使用中所示的压力协议图5选择这些压力是因为10 mmHg是完全放松状态,60和100 mmHg刚好高于肌源性收缩阈值,接近RCA的生理压力上限体内(海斯塔德,2001). CPI-17磷酸化分析采用了类似的压力方案,但根据激动剂(例如。季莫普洛斯等。2007).

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用于MYPT1和LC分析的动脉压力方案和代表性直径记录20磷酸化

在不存在(对照)或存在0.3μmol l l的情况下,对常用步长为10至80 mmHg的双级压力方案(顶部)进行代表性直径测量,然后再测量到10、60或100 mmHg−1H1152闪蒸前。比例尺表示10分钟。开口和实心圆圈/正方形分别表示控制段和H1152段的直径测量时间;圆圈代表80毫米汞柱,正方形代表10毫米汞柱、60毫米汞柱或100毫米汞柱。CPI-17分析使用了类似的方案,但在10、60或100 mmHg下3分钟后,组织会瞬间冻结。箭头表示添加H1152的时间。

限制检测到的MYPT1、CPI-17和LC的变化20磷酸化,有必要确保分析中所用血管的肌生成性具有可比性。零度被动膨胀量[Ca2+]o(o)因此,由于闪冻,无法评估主动收缩的程度。因此,在初始压力阶跃至80 mmHg时,没有表现出强烈肌源性反应的血管被丢弃(参见图5). 通过比较步骤中各组的平均直径为80 mmHg和后续步骤中的平均直径10、60或100 mmHg与肌源性反应评估中获得的值,验证血管质量(图4). ROK抑制分析中使用的各组在80 mmHg下的直径相似,如图6A类(每组21–23条血管),与肌源性反应评估中观察到的血管无差异(阴影条;数据来自图4E类). 此外,10、60和100 mmHg±H1152 in时的直径图6B类与在相同条件下进行的肌源性反应实验(阴影条;数据来自图4E类). 评估CPI-17磷酸化的实验也获得了类似的结果(数据未显示)。因此,我们确信,这些实验中使用的血管的肌源性反应是可比较的。

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用于生化分析的血管平均动脉直径

A类,平均直径±s.e.m.公司。对于10、60和100毫米汞柱的最终压力组,在对照(开放条形)和含H1152(黑色条形)溶液中初始步骤至80毫米汞柱(在图5分别通过开放圆圈和填充圆圈)。阴影条是在80 mmHg的控制条件下的平均直径(数据来自图4).B类,平均直径±s.e.m.公司。在闪蒸冻结之前图5分别在10、60和100 mmHg下,通过控制(开条)和H1152处理(黑条)动脉的开口和填充方块。阴影条是指对照溶液和含H1152溶液在10、60和100 mmHg时的直径(数据来自图4)*显著不同(P(P)<0.05)。

先前在MYPT1上发现了两个韩国磷酸化位点T697和T855(等。1999河曲等。1999贝拉斯科等。2002史蒂文森等。2004穆兰伊等。2005平野,2007). 在这里,我们使用了两种仅在T697或T855磷酸化时识别MYPT1的磷酸特异性多克隆抗体(威尔逊等。2005).图7显示了磷酸化MYPT1-T697和-MYPT1-T855的代表性Western blot,以及每个样品(6个血管/通道)的相应考马斯蓝染色肌动蛋白含量,以及平均值±s.e.m.公司。标准化磷酸蛋白作为压力的函数±H1152(n个=3个斑点;来自16条血管的蛋白质)。在10 mmHg时,RCA在T697和T855都显示出MYPT1磷酸化的基础水平(图7A类D类). 与10 mmHg相比,T855的磷酸化程度在60和100 mmHg时显著增加(图7C类D类),但T697的磷酸化不受压力影响(图7A类B类). 此外,H1152显著降低了MYPT1-T855磷酸化的基础(10mmHg)和压力诱导的增加(图7C类D类). 在存在ROK抑制剂的情况下,未观察到磷酸化MYPT-T697的变化(图7A类B类).

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MYPT1磷酸化随压力和ROK抑制的变化

磷酸化T697-MYPT1的代表性三步Western blot(A类)和磷酸-T855-MYPT1(C类)以及在10、60或100 mmHg±H1152(0.3μmol l−1).B类D类表示平均水平±S.E.M.公司。(n个=3)分别将磷酸-T697-和磷酸-T855-MYPT1归一化为考马斯蓝肌动蛋白,每个印迹在10 mmHg时的对照值设置为1*显著差异(P(P)<0.05)从各压力下的控制值**显著差异(P(P)<0.05)从10 mmHg的控制值#显著差异(P(P)<0.05)与60mmHg时的值相比。

磷酸-MYPT1-T855的压力依赖性增加如图7预计会抑制MLCP活性,同时引起对H1152敏感的LC增加2060和100 mmHg时的磷酸化。图8A类(6艘船/航道)显示LC的典型Western印迹20使用Phos-tag SDS-PAGE分离磷酸化和非磷酸化蛋白质获得(武也等。2008). LC的单磷酸化(1-P)20很明显,但未检测到二磷酸化。图8B类显示平均水平±s.e.m.公司。磷酸化LC20占总信用证的百分比2010、60和100 mmHg±H1152的蛋白质(n个=8个斑点;每个压力下总共21–23个容器)。磷酸化LC20从10 mmHg时的24.3±2.6%增加到60和100 mmHg分别为39.3±2.8%和50.6±3.3%(图8B类). LC中的压力依赖性增加20用H1152处理后,60和100 mmHg时的磷酸化显著降低。

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信用证变更20加压磷酸化和ROK抑制

代表性Western印迹(A类)和平均水平±s.e.m.公司。(B类)磷酸化LC20占总信用证的百分比20在10、60和100 mmHg±H1152(0.3μmol l−1)带有未磷酸化(0-P)和单磷酸化(1-P)LC20用Phos-tag SDS-PAGE分离(n个= 8). *显著差异(P(P)<0.05)从各压力下的控制值**显著差异(P(P)<0.05)从10 mmHg的控制值#显著差异(P(P)<0.05)。

抑制PKC减轻肌源性收缩

图9表明GF109203X对PKC的抑制作用(3μmol l−1)和Gö6976(10μmol l−1)抑制肌源性反应。所使用的浓度是根据其阻断激动剂诱导的收缩来选择的(季莫普洛斯等。2007). 容器在20至120 mmHg之间经历了三系列连续压力步骤:(1)对照溶液,(2)GF109203X(n个=6艘船)或Gö6976(n个=6个容器)和(3)零[Ca2+]o(o)解决方案。图9结果表明,这两种PKC抑制剂均能阻断压力诱导的动脉直径维持,并减少主动性肌源性收缩。

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PKC抑制对肌源性反应的抑制作用

GF109203X的影响(A类C类n个=6)和Gö6976(D类如果n个=6)关于RCA肌源性反应。压力引起的动脉直径的典型变化(A类D类)和平均直径(±s.e.m.公司。)–压力关系(B类E类)对于10–100 mmHg的克雷布斯生理盐水(对照),3μmol l−1GF109203X或10μmol l−1Gö6976和零[Ca2+]o(o)溶液,以及平均有效收缩-压力关系±GF109203X(C类)或±Gö6976(如果). *显著不同(P(P)<0.05)。

压力不会诱导CPI-17磷酸化,PKC抑制不会影响MYPT1和LC20磷酸化

图10A类显示CPI-17的代表性免疫印迹和平均值±s.e.m.公司。用佛波醇12,13-二丁酸酯(PdBu;2μmol l−1)以及在10、60和100 mmHg的压力容器中。通过Phos-tag SDS-PAGE分离未磷酸化和单磷酸化CPI-17(武也等。2008). PdBu治疗显著增加了磷酸化CPI-17的水平(以CPI-17总量的百分比表示)。然而,与加压动脉中的10 mmHg相比,在60和100 mmHg时未观察到磷酸化CPI-17的变化(图10A类). 我们也在步进至100 mmHg后0.5分钟的额外时间点评估了磷酸化CPI-17,以确保我们没有错过CPI-17磷酸化的快速变化(季莫普洛斯等。2007). 在这个时间点,也检测到磷酸化-CPI-17类似缺乏变化(数据未显示)。我们考虑了PKC抑制剂治疗影响ROK激活导致MYPT1和LC改变的可能性20磷酸化。在没有或存在GF109203X(3μmol l−1)用于测定磷蛋白水平。虽然PKC抑制剂诱导扩张,但LC水平没有变化20(n个=5对),MYPT1-T697(n个=3对)或MYPT1-T855(n个=3对)与对照血管相比的磷酸化(图10B类E类).

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CPI-17磷酸化与压力或磷酸化-MYPT1和LC缺乏变化20PKC抑制

A类,代表性Western blots和平均水平±s.e.m.公司。用PdBu(2μmol l)治疗的动脉中磷酸化CPI-17占总CPI-17的百分比−1)以及在10、60和100mmHg下用Phos标签SDS-PAGE分离的未磷酸化和磷酸化CPI-17的动脉(n个= 3).B类,压力±GF109203X(3μmol l)下直径的代表性轨迹−1; GF)用于分析CPI-17、MYPT1和LC的组织20磷酸蛋白水平。C类100 mmHg±GF109203X(3μmol l−1; GF)和平均水平±s.e.m.公司。GF109203X处理血管中磷酸化-T697-MYPT1(n个=3)作为控制条件下水平的百分比(n个= 3).D类100 mmHg±GF109203X(3μmol l−1; GF)和平均水平±s.e.m.公司。GF109203X处理血管中磷酸化T855-MYPT1(n个=3)作为控制条件下水平的百分比(n个= 3).E类,配对血管的代表性3步Western blot和平均水平±s.e.m.公司。磷酸化LC20占总信用证的百分比20100 mmHg±GF109203X(3μmol l−1; GF)与未磷酸化(0-P)和单磷酸化(1-P)LC20用Phos-tag SDS-PAGE分离(n个=每组5对动脉)。

讨论

这是第一项量化加压真阻力动脉中MYPT1和CPI-17磷酸化的研究。我们首次提供了MYPT1和LC磷酸化依赖ROK同时发生变化的直接生化证据20在肌源性反应中增加跨壁压力。我们的研究结果得益于一种新的、高度敏感的方法的开发,该方法用于检测和定量来自加压RCA(~1μg蛋白质)的非常小的蛋白质样品中的MYPT1和CPI-17磷酸化,类似于以前用于定量磷酸-LC的方法20肾传入小动脉(武也等。2008). 我们发现:(1)H1152以浓度依赖的方式抑制肌源性收缩;(2) 肌源性收缩压力升高与MYPT1和LC同时增加相关20被H1152阻断的磷酸化;(3) 肌源性反应过程中的MYPT1磷酸化发生在T855,但不发生在T697;(4) PKC抑制剂减少了肌源性收缩,但随着压力的增加和压力诱导的MYPT1和LC,CPI-17没有变化20磷酸化不受PKC抑制剂处理的影响。这些新发现对健康和疾病中通过跨壁压力控制动脉直径具有重要意义。

同时量化MYPT1、CPI-17和LC的能力20在来自单一加压阻力动脉的小于1μg的蛋白质样品中进行磷酸化是一项重大的技术进步。信用证20在10 mmHg的基础条件下和先前报道的大鼠前臂小动脉RCA的肌源性反应期间,磷酸化为类似的化学计量比(等。19952000). 之前显示拉伸可以增加LC20基底动脉磷酸化的韩国依赖性(奥巴拉等。2006),但未确定磷酸化MYPT1的参与程度。这里,增加了MYPT1-T855和LC20磷酸化被证明与肌源性收缩有关,并被H1152对ROK的抑制所阻断。本研究的一个局限性是,韩国和MLCP活动没有直接测量。然而,基于以下发现,我们确信这两种酶都是被压力激活的。(1) 虽然Y27632抑制PKC(埃托等。2001威尔逊等。2005),我们发现H1152降低了肌源性收缩,其效力是Y27632的10倍。这一结果以及磷酸化MYPT1-T855随压力升高而增加与ROK的发病相一致。之前也发现RhoA易位到质膜,用于肠系膜动脉的肌源性收缩(迪布罗卡等。2007). (2) 我们并没有将H1152对肌源性反应的抑制归因于[Ca的下降2+].戈基纳等。(2005)发现Y27632对ROK的抑制提高了[Ca2+]>60 mmHg。(3) MYPT1和LC的完全抑制20H1152的磷酸化表明肌动蛋白细胞骨架动力学的改变(Cipolla&Osol,1998年奇波拉等。2002Gerthoffer,2005年Corteling公司等。2007)不需要解释韩国抑制对压力诱导力产生的影响。细胞骨架确实可能改变,但H1152诱导LC减少2060和100毫米汞柱下的磷酸化达到10毫米汞柱的基础水平可以完全解释肌源性收缩的丧失。(4) 磷酸化MYPT1、LC的同时变化20在60毫米汞柱和100毫米汞柱下检测到由于压力增加导致的磷酸化和直径,以及随后的H1152处理。这与压力诱导的MLCP抑制作用一致。信用证20尽管磷酸化-MYPT1-T855水平降低,但在10mmHg时磷酸化不受H1152的影响。这意味着H1152导致的MLCP活性增加不足以抵消LC的基础磷酸化20通过MLCK、拉链相互作用蛋白激酶、p21活化激酶和/或整合素连接激酶(平野,2007年). 综上所述,这些数据与以下观点一致:跨壁压力增加引起ROK介导的MLCP抑制,改变MLCK-MLCP活性的平衡,并允许LC的净磷酸化20并增加了部队生成。

Ca的观点2+ROK介导的MYPT1磷酸化导致的致敏作用有助于肌源性反应,这与戈基纳等。(2005),但不是麦卡伦等。(1997).戈基纳等。(2005)观察到100时对Y27632的敏感性降低α-毒素渗透RCA中的60 mmHg。相反,麦卡伦等。(1997)未检测到钙的变化2+在[Ca范围内压力增加时的灵敏度2+]0.001至60μmol l之间−1然而,GTP不包括在麦卡伦等。(1997),阻止此处描述的ROK和磷酸化MYPT1依赖机制的激活。GTP是G蛋白偶联受体信号传递和RhoA激活的必要辅因子,通过渗透制剂的α-毒素孔从胞浆中丢失(北泽等。1989). G公司2011年第2季度-耦合受体最近被认为是大脑动脉肌源性反应中的机械传感器(Mederos y Schnitzler公司等。2008). 如果是这种情况,则在导致肌源性收缩的信号级联的多个步骤中可能需要GTP。

我们的研究结果表明,ROK介导的钙2+RCA中T855处的MYPT1磷酸化专门介导对压力的敏感性。T697的磷酸化抑制MLCP活性(等。1999)T855的磷酸化干扰MYPT1与肌球蛋白的结合(贝拉斯科等。2002)并抑制MLCP活动(穆兰伊等。2005). T855的参与与以前关于激动剂诱导的、ROK介导的钙的研究一致2+据报道,韩国的磷酸化作用仅在T855发生(北泽等。2003史蒂文森等。2004威尔逊等。2005). T697的磷酸化没有随压力升高而改变,H1152也没有改变。这表明T697不是ROK介导的RCA压力诱导血管收缩调节的重要位点。已知T697的磷酸化反应是对激动剂刺激的反应(北泽等。2000小腿等。2002穆尔西等。2003奈罗等。2003赫尔希等。2004Neppl公司等。2009)但并非在所有制剂中或在T855磷酸化增加的所有情况下(北泽等。2003史蒂文森等。2004威尔逊等。2005). RCA中负责T697基础磷酸化的激酶尚待确定;潜在的候选者包括拉链相互作用激酶和整合素连接激酶(麦当劳等。2001穆兰伊等。2002).

我们的数据表明,钙的PKC依赖机制2+涉及CPI-17和MYPT1的致敏作用不会促进RCA的肌源性反应。以前使用RCA和其他血管的研究将PKC抑制剂抑制肌源性反应归因于钙的调节2+敏化(例如。卡里贝等。1997韦塞尔曼等。2001拉高(Lagaud)等。2002Jarajapu&Knot,2005年). 然而,这种观点是基于敏化的替代标记;未测定压力和PKC抑制对CPI-17和MYPT1磷酸化的影响。PKC介导的CPI-17磷酸化导致钙2+激动剂对几种血管和非血管平滑肌的致敏作用(埃托等。2001季莫普洛斯等。2007平野,2007). 例如,在股动脉暴露于苯肾上腺素后,观察到GF109203X敏感性CPI-17磷酸化在10秒内达到峰值,并在5分钟内缓慢下降~25%(季莫普洛斯等。2007). 在这里,尽管PKC抑制剂治疗降低了肌源性反应,但在压力升高后0.5分钟(100 mmHg)和3分钟(60和100 mmHg),我们无法检测到磷酸化CPI-17的变化。我们不会将此阴性结果归因于缺乏检测灵敏度或未能在压力升高后的适当时间测量磷-CPI-17。我们在Phos-tag SDS-PAGE分离未磷酸化和磷酸化CPI-17后进行三步免疫印迹的方法具有足够的灵敏度,可以解决PdBu治疗后磷酸化CPI-17增加30%的问题。此外,在与[Ca初始上升期一致的时间对动脉进行取样2+],信用证20压力导致的磷酸化和收缩(等。1995达安吉洛等。1997Osol公司等。2002)以及在激动剂治疗后磷酸化CPI-17升高期间(季莫普洛斯等。2007). PKC抑制剂可能阻断Ca2+通过干扰RhoA/ROK激活而致敏(坎达巴希等。2003). 例如,PKC可能磷酸化RhoGDI,导致GDI分离,Rho-GEF激活RhoA(梅塔. 2001). 我们也未能确定GF109203X对MYPT1或LC的影响20100 mmHg时的磷酸化。这些结果直接证明PKC依赖性钙2+通过MYPT1致敏不会促进肌源性反应。此外,LC缺乏变化20PKC抑制剂存在下的磷酸化意味着PKC诱导的细丝调节或细胞骨架重组的阻滞可能参与,而不是离子通道活性的改变,[Ca]2+]和MLCK活动(麦卡伦等。1997Cipolla&Osol,1998年等。2000金子等。2000摩根和冈帕迪亚2001吉斯达尔等。2003Wier&Morgan,2003年沙比尔等。2004卢克纳尔等。2004威尔逊等。2005Gerthoffer,2005年维拉尔巴等。2008).

我们的研究结果表明,ROK介导的MLCP抑制对肌源性收缩至关重要,并表明调节压力诱导的ROK激活可能是调节肌源性反应的重要部位。在H1152处理导致MYPT1磷酸化缺失的情况下,MLCP活性足以完全抑制压力诱导的LC2060和100 mmHg时的磷酸化和作用力生成。这意味着压力诱导的肌源性去极化导致VGCC激活,Ca2+流入量和增加的MLCK活动不足以改变MLCK–MLCP平衡以支持LC20磷酸化和肌源性收缩。ROK对压力诱导的MLCP抑制似乎是RCA发生肌源性反应所必需的。鉴于MLCP抑制的这一重要作用,ROK信号通路和/或ROK的MYPT1磷酸化被内皮源性一氧化氮抑制,并被血管收缩剂激动剂激活,这一点非常重要(Davis&Hill,1999年等。2000埃托等。2001索姆利奥和索姆利欧,2003年斯瓦德等。2003洛兰德等。2006平野,2007Neppl公司等。2009). 这些因素可能改变MLCP抑制水平,改变磷酸-LC20–[钙2+]增强或抑制肌源性反应而不需要改变E类,加利福尼亚州2+流入或MLCK激活。Osol公司等。(2002)提示肌源性反应可分为三个不同的阶段:肌源性张力发展、肌源性活性和强迫扩张。40至60 mmHg之间肌源性张力的发展特点是大量去极化E类,标高[Ca2+]和因钙引起的收缩2+–钙调蛋白介导的MLCK激活(奥索尔等。2002). 然而,在E类或[Ca2+]与60至140 mmHg之间的肌源性反应期相关(Osol公司等。2002). 这意味着Ca2+-MLCK活性的依赖性增加对椎间压力生理范围内力产生的增加贡献不大。我们发现MYPT1和LC中对H1152敏感的增加20磷酸化在60到100 mmHg之间表明ROK介导的钙2+敏化可能在肌源性反应反应阶段的力产生调节中起主要作用。小阻力容器永久暴露在透壁压力下体内并且处于肌源性激活的永久状态。钙的参与2+敏化作用提供了一种机制,可以通过最小和/或瞬时增加[Ca来增加力的产生2+].这可以避免与其他Ca的干扰2+-依赖过程,最小化钙的能量消耗2+体内平衡和排除长期暴露于高[Ca的毒性效应2+].最近的研究结果表明,压力升高引起Ca2+肌浆网(SR)以非同步波的形式在单个血管平滑肌细胞内释放(M.A.Hill未发表的关于托马斯特小动脉的观察结果,D.G.Welsh未发表的有关RCA的观察结果),如之前所示的激动剂诱导的[Ca升高2+](例如。西永等。2009). 据推测,这些波与MLCK激活中的异步瞬态升高有关。MLCP抑制在这种情况下可能很重要,因为它可以降低LC的发生率20去磷酸化。减缓LC20由于钙的存在,去磷酸化可能会增加单个心肌细胞异步音调发育的重叠2+波和瞬时MLCK激活导致动脉壁内产生更大的平均力。

肌源性反应是心血管生理学中的一个关键机制,肌源性收缩异常是导致心血管疾病死亡率和发病率的重要因素。大量证据表明,在与增强肌源性反应性相关的心血管疾病中,如高血压,ROK活性升高(斯瓦德等。2003Jarajapu&Knot,2005年洛兰德等。2006). 目前的研究结果表明,这可能至少部分是由于MYPT1-T855磷酸化的改变和Ca2+灵敏度。这里描述的3步Western blot方法的未来应用将提供有关调节MYPT1和LC的压力依赖性信号通路的见解20磷酸化,以及允许对生理和病理生理条件下抵抗动脉功能重要的其他蛋白质/磷酸蛋白进行定量。

致谢

这项工作由卡尔加里大学平滑肌研究小组进行,并得到加拿大卫生研究院(MOP-10568)的资助。R.P.J.得到了阿尔伯塔省医学研究遗产基金会(AHFMR)和加拿大自然科学与工程研究委员会的支持。A.F.E.得到了AHFMR和加拿大卫生研究院的支持。W.C.C.是安德鲁家族心血管研究教授,M.P.W.是AHFMR科学家,也是血管平滑肌研究加拿大研究主席(Tier 1)的接受者。

词汇表

缩写

桶/桶溴酚蓝
[加利福尼亚州2+]细胞溶质钙2+水平
CPI-1717kDa蛋白激酶C增强蛋白磷酸酶1抑制剂蛋白
DTT公司二硫苏糖醇
E类膜电位
人力资源计划辣根过氧化物酶
信用证2020kDa肌球蛋白轻链亚单位
MLCK公司肌球蛋白轻链激酶
MLCP公司肌球蛋白轻链磷酸酶
第一个多年电价确定肌球蛋白轻链磷酸酶靶向亚单位1
PdBu公司佛波醇12,13-二丁酯
PKC公司蛋白激酶C
荧光标记SDS-PAGE聚丙烯酰胺结合锰的SDS-PAGE2+标签
区域协调机构大鼠大脑中动脉
韩国Rho激酶
待定三缓冲盐水
TBST(待定)含0.02%l的TBS;吐温-20
TCA公司三氯乙酸
TEMED公司N个N个N个′,N个′-四甲基乙二胺
大学转学分课程尿苷5′-三磷酸
钙通道电压门控钙2+通道

作者贡献

所有作者都对实验的概念和设计、结果的分析和解释以及手稿的起草做出了贡献,并批准了这份手稿的出版版本。

披露

没有。

补充材料

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工具书类

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文章来自生理学杂志由以下人员提供生理学会