英国癌症杂志。2007年2月12日;96(3): 499–506.
利用Affymetrix 50K SNP图谱阵列对前列腺癌等位基因失衡进行全基因组分析
,1,* ,2 ,1 ,1 ,三和1
诺瑟瑞
1丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100,DK-8200,奥胡斯大学医院Skejby Sygehus临床生物化学系分子诊断实验室
M Borre公司
2丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100号奥胡斯大学医院Skejby Sygehus泌尿科
K D瑟伦森
1丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100,DK-8200,奥胡斯大学医院Skejby Sygehus临床生物化学系分子诊断实验室
C L安达信
1丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100,DK-8200,奥胡斯大学医院Skejby Sygehus临床生物化学系分子诊断实验室
C维夫
三BiRC–丹麦奥胡斯市海格-古德堡堡大学生物信息学研究中心,090号楼,DK-8000
T FØrntoft公司
1丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100,DK-8200,奥胡斯大学医院Skejby Sygehus临床生物化学系分子诊断实验室
1丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100,DK-8200,奥胡斯大学医院Skejby Sygehus临床生物化学系分子诊断实验室
2丹麦奥胡斯市Brendstrupgaardsvej 100号奥胡斯大学医院Skejby Sygehus泌尿科
三BiRC–丹麦奥胡斯市海格-古德堡堡大学生物信息学研究中心,090号楼,DK-8000
收稿日期:2006年7月1日;2006年8月24日修订;2006年10月11日接受。
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补充数据表1。
指南:364C709F-AE66-49C9-BF1A-CBECFA1C7C34
补充数据表2。
GUID:AD25749E-366F-497A-8303-5275486E343B
补充数据表3。
GUID:34132D5D-431D-4999-8AC6-FA91E476980E
补充数据表4。
GUID:E20B564D-F388-44E5-BEF9-51B2C9A02B43
补充数据表5。
GUID:8FE5451F-5F0F-4254-B0FD-7F9A3CE2AE81
图1补充/1。
GUID:1CC6B3D9-6B12-4615-8358-69C62B402226
图1补充/2。
GUID:4CD4B7FA-884E-4691-AA55-4331D98ECED2
图2补充/1。
GUID:5619539B-5FF8-43DF-9D0D-6AF3A9C68D14
图2增补/2。
GUID:300870A5-2ABC-4FDC-BABB-EAC11E864081
图3补充。
GUID:BB0B75F8-7C9B-420B-BC45-66C17C4AFC5A
图4补充。
GUID:F8CA6C47-C8F6-47EB-B9BC-372E8DFF1D08
补充数字图例。
GUID:B891FD1D-DCC3-405F-91D9-94A719690432
摘要
前列腺癌(PCa)是西方国家男性患者中最常见的非皮肤癌。前列腺特异性抗原(PSA)的广泛使用增加了早期对这种癌症形式的检测。此外,它增加了开发新的诊断程序的需求,以便根据进展风险对患者进行分层。我们使用新的高分辨率Affymetrix Mapping 50K单核苷酸多态性阵列分析了43例经组织学证实的前列腺癌患者的激光显微切割前列腺肿瘤组织。结果显示,染色体6q14–16、8p23–11、10q23、13q13–21和16q21–24的六个主要杂合子区域丢失,以及染色体21q22.2的一个新区域丢失,所有这些都显示了伴随的拷贝数丢失。肿瘤发展的进一步特征是许多新的基因组区域几乎完全显示拷贝数丢失。然而,位于染色体8q、1q、3q和7q的基因组区域拷贝数增加的特定模式确定了肿瘤向转移阶段的进展以及分化不良。雄激素消融治疗的进一步特征是染色体2p和10q的拷贝增加。总之,在PCa中发现了等位基因不平衡的模式,包括等位基因丢失作为肿瘤发展的早期事件,以及与肿瘤进展和分化不良相关的不同等位基因扩增模式。
关键词:SNP、前列腺癌、LOH、等位基因失衡
前列腺癌(PCa)是西方国家最常见的男性恶性肿瘤之一,也是癌症相关死亡的主要原因(兰迪斯等, 1999).
前列腺特异性抗原(PSA)在前列腺癌诊断中的广泛应用提高了早期前列腺癌的检出率。尽管这一发展增加了治愈PCa患者的可能性,但该病的发病率也同样增加,并推动了对PCa患者分层治疗的需求。由于PCa进展缓慢,一部分早期疾病患者可能需要等待,而不是手术治疗。目前,在疾病的早期状态下,无法区分潜在癌症和侵袭性癌症。此外,临床医生无法预测癌症增长的速度或速度,也无法预测癌症是否有转移的可能性。PCa从局部疾病到激素抵抗和转移阶段的发展和进展是由一个多步骤过程驱动的,在特定基因中积累了多种遗传和表观遗传变化(奎因等, 2005). 癌症基因组中转录水平的改变通常与拷贝数的变化有关(平克尔和艾伯特森,2005年)而利用多态性遗传标记在全基因组范围内检测癌症组织中的等位基因不平衡已成为识别与人类癌症病因和进展有关的遗传事件的重要技术(巴尔曼等, 2003). 直到最近,以基于PCR的微卫星测定为代表的技术只允许使用少量多态性标记,这限制了该技术的分辨率。随着比较基因组杂交(CGH)阵列的发展,使用了30多个 跨越人类基因组的1000个BAC克隆(伊斯康语等, 2004)和设计用于基因型超过100的高密度单核苷酸多态性(SNP)微阵列 人类基因组DNA中的1000个SNP(松崎等, 2004),全基因组扫描技术的分辨率大大提高,可以准确和重复地测定癌症基因组中拷贝数的变化(戈亚马等, 2004;南雅等, 2005). SNP阵列提供了以高通量和高分辨率全基因组方式同时分析LOH和产生准确拷贝数的可能性,从而有可能区分具有潜在半合子缺失的LOH区域和具有拷贝中性事件的LOH区域(赵等, 2004).
显示拷贝丢失的基因组区域的鉴定高度依赖于未污染正常上皮、基质和/或炎症细胞的纯肿瘤DNA的采样(赵等, 2004). 因此,我们进行了激光显微切割以获得前列腺癌的纯样本,并将Affymetrix SNP阵列应用于43个表型特征良好的前列腺癌,这些前列腺癌从局限性前列腺癌到转移性疾病,无论之前是否存在雄激素剥夺。在本研究中,我们报告了基于一个超过50个数组的结果 000个单核苷酸多态性,分辨率的显著增加定义了局限于PCa发育的不同染色体丢失模式,以及局限于PCa进展和差分化的染色体获得模式(Gleason评分⩾8)。
材料和方法
样本采集和临床数据
前列腺腺癌的样本是从1994年至1996年和2003年至2004年期间在Skegby Sygehus泌尿外科接受手术的一系列前列腺癌患者中选择的。组织分离为来自接受姑息治疗的转移性前列腺癌患者的经尿道前列腺电切术(TURP)切片,或来自经组织学验证的前列腺癌患者四针活检(规格12-14),每个肺叶两次,在根治性前列腺切除术中获得。组织以新鲜冷冻或“tissue-Tek”包埋组织的形式保存,并在−80°C下保存,直至检查。所有病例均由合格的泌尿病理学家审查。检查切片并确定腺癌区域。在大约40%的患者中,活检不含腺癌组织,因此这些患者被排除在研究之外。采集PCa患者的血样,冷冻后作为正常生殖系DNA的来源。总共分析了87份样本:43份PCa组织DNA样本和44份血液样本生殖系DNA样本。在这些样本中,39个是匹配的生殖系和癌症DNA。临床病理学数据来自医疗记录。奥胡斯理事会伦理委员会批准了该研究方案。
前列腺癌的激光显微切割
简言之,5 μm薄片前列腺组织在低温恒温器上切割并放置在PALM®膜载玻片上。苏木精染色后(Sigma-Aldrich-Denmark,Brondby,Denmark)3 min,样品在H中冲洗2O和伊红染色(Sigma-Aldrich)10 s.在H中清洗载玻片后2O、 他们在乙醇浓度增加的情况下脱水,然后进行10次空气干燥 min.使用PALM系统通过激光显微切割分离前列腺癌细胞(PALM Microlaser Technologies AG,Bernried,Germany)。面积约为10–30 毫米2从每个病人身上解剖并分离出300个 μl溶解缓冲液(Gentra Systems Inc.,明尼阿波利斯,明尼苏达州,美国)。
DNA提取
使用PureGene DNA提取试剂盒(美国明尼苏达州Gentra Systems Inc.)提取DNA(www.gentra.com网站). 答10 μl蛋白酶K(5)的体积 毫克 毫升−1)添加到裂解缓冲液中。添加蛋白质沉淀溶液并离心样品。分离上清液,1 μl线性聚丙烯酰胺(10 μ克 μ我−1)和300 μ添加1升异丙醇。将样品离心,排出上清液,并将DNA沉淀在70%乙醇中洗涤。将上清液排出,并在15分钟内将干燥的颗粒重新水化 μ1升复水溶液。平均500 ng至1 μ从每个样本中获取g DNA。
在260和280处测量分光光度吸光度 纳米。比率(OD260/外径280)从激光显微切割的PCa组织中提取的DNA的平均值为1.4±0.2(平均值±标准偏差(s.d.)),血液DNA的比率为1.8±0.1。
GeneChip®映射50K阵列
阵列实验根据Affymetrix GeneChip Mapping 50K阵列标准协议(Affymmetrix Inc.,Santa Clara,CA,USA)进行。Mapping 50K系统由两个8-μm个阵列,每个阵列设计用于杂交标记的PCR片段Xba公司I-和欣dIII-叶DNA。为了降低项目成本,只有包含探测的数组Xba公司I-切割DNA检测58 使用了960个SNP。A 250型 DNA的ng测量用于映射50K阵列。我们在组织样本中获得了92.9±7%的调用率(平均值±标准差),在生殖系样本中获得96.1±4.5%的调用率,因此与Affymetrix上一代SNP阵列Mapping 10K的调用率相当(科德等, 2005).
数据分析
所有SNP的物理位置(n个=58 960). 根据2004年5月在http://genome.ucsc.edu/
未映射或映射到基因组组合中多个位置的单核苷酸多态性被排除在分析之外,留下57个 429 SNP。
DNA分析软件(GDAS)3.0.2 Patch software(Affymetrix Inc.,CA,USA)用于生成基因型调用。将来自生殖系和癌症DNA的基因型和探针强度加载到软件包dChip中(http://www.dchip.org/) (林等, 2004)用于LOH分析:对探针强度进行归一化,并获得每个阵列中每个SNP的单个信号值(观测信号)。对39个存在匹配肿瘤和生殖系DNA的样本进行杂合性缺失检测。
SNP基因型验证
通过与使用ABI PRISM®SNaPshot™Multiplex试剂盒(Applied Biosystems,Foster City,CA,USA)通过单碱基扩展方法独立获得的基因分型比较,评估Affymetrix GDAS 3.0.2软件生成的SNP基因型调用的准确性(高斯塔德讷等, 2006). 用于PCR扩增和单碱基延伸SNP基因分型的所有引物列表如所示补充信息(). DNA样本与用于SNP芯片分析的样本相似。
定量聚合酶链反应
使用SYBR®GREEN PCR Master Mix(Applied Biosystems)在ABI PRISM®7000序列检测系统(美国加利福尼亚州福斯特市应用生物系统公司)上进行实时PCR。四种不同靶基因(MAP3K7、PPP3CC、SGCZ和CSMD1)的定量基于从四倍连续稀释的正常基因组DNA样本构建的标准曲线。每个目标的拷贝数是相对于参考Line-1重复元素来确定的,之前其他人详细描述了一种方法(赵等, 2004). 引物序列的完整列表见补充信息(表2)使用Mann–Whitney非参数检验确定组间拷贝数的差异。GrapaPad Prism4(美国加利福尼亚州圣地亚哥)被用作统计软件。
加权信号强度的提取
按照数据分析中的描述,对87个阵列(43个肿瘤和44个种系样本)的信号值进行归一化和提取后,数据进一步归一化为单核苷酸多态性,以便对不同单核苷酸多态度进行比较。信号值不能直接比较,因为代表阵列上不同SNP的探针组具有不同的物理特性。因此,使用种系样本的平均值和s.d.对数据进行SNP归一化,即,zij公司=(x个ij公司−平均值j个)/标准差。j个,其中x个ij公司是SNP的观测信号j个在样品中我(生殖系或肿瘤),平均j个和s.d。j个是SNP的平均值和标准偏差j个所有44个种系样本。因此zij公司对于生殖系样本中的所有SNP,分别为0和1。为了进一步降低信号值中的噪声水平,我们计算了M(M)=9个SNP,按基因组距离加权;也就是说,一ij公司=Σz我(j个+l)经验(−d日j个(j个+我))/∑exp(−dj个(j个+我)),其中总和(∑)位于SNP两侧的四个相邻SNP之上j个(我=−4,−3,…,0,…,3,4)和dj个(j个+我)是SNP之间的基因组距离j个和j个+我.一ij公司称为加权信号强度,以下称为信号强度。
基因组区域的绘图通常显示拷贝数变化
通常显示拷贝数改变的基因组区域被确定为连续SNP的片段,其平均加权信号强度(所有肿瘤样本)与生殖系样本的平均加权信号密度显著不同(P(P)⩽0.01)。只有40个连续SNP的区域,每个区域都有P(P)⩽0.01。通过随机排列阵列标签(肿瘤和生殖系)10获得生殖系样本的零分布 000次,并计算每个排列的平均值差。
肿瘤亚群之间的基因组差异
对于由转移状态、肿瘤分期或雄激素缺乏状态定义的不同肿瘤亚组,根据加权信号强度确定差异。
对于每个亚组,计算并绘制平均加权信号强度。使用排列检验计算组平均值差异的显著性。组标签被随机洗牌10 000次,重新计算差值,并计算大于/小于观察组差值的次数。注:分组标签是以样本方式重新分配的,而不是以SNP方式重新分配,因此SNP之间的依赖性得以保持。为了评估观察到的差异模式的重要性,评估了在通过排列组标签获得的分布中发现观察到的SNP片段的频率。具有的段P(P)报告0.01。在这个水平上,预计只有不到一条染色体(22×0.01=0.22)显示出显著的SNPs片段。因此,报告有显著片段的染色体的错误发现率的上限是有显著片段染色体的1/数量。
结果
基因型调用的比较
43份前列腺癌显微解剖组织样本和44份前列腺癌患者生殖系DNA样本(表3;补充信息)使用Affymetrix的Mapping 50K SNP芯片分析等位基因失衡和拷贝数改变。
为了验证Affymetrix GDAS软件中的基因型调用,我们比较了Affymetix GDAS和ABI SNaPshot单碱基扩展方法中五个不同基因共114个等位基因中五个单个SNP的基因型呼叫(戈斯塔德斯等, 2006). 我们发现Affymetrix GDAS软件和SnaPshot®单碱基扩展中的基因型调用之间存在98%的一致性。SNaPshot SBE显示两个等位基因不确定。这表明来自Affymetrix GDAS软件的基因型调用具有高度一致性。基因列表如所示补充表4.
基因组区域通常表现为LOH
正常血细胞中杂合SNP转化为肿瘤组织中纯合SNP表明肿瘤中一个等位基因(LOH)丢失。由dChip软件测定的39例前列腺癌样本中LOH的总体模式如所示,和图4(补充信息). 显示频繁LOH的基因组区域被定义为30%以上样本中显示LOH的区域(39例中的12例)。区域大小从1.5到22.1不等 Mb包括6q、8p、10q、13q和16q位置。LOH的最高百分比(>60%)局限于染色体8p21.3的1.5-Mb区域。高分辨率SNP阵列也为发现新的变化提供了一个极好的工具。一个新的频繁重复缺失区域21q22.2特别有趣,因为ERG公司和TMPRSS2型,两者都位于该区域,最近被发现参与了前列腺癌中常见的基因融合事件(汤姆林斯等, 2005). 这个新的LOH区域覆盖2.9 染色体21q22.2的Mb在12个样本中显示LOH。
由dChip测定的显微切割前列腺癌组织中6、8、10、13、16和21号染色体的杂合性缺失。39个匹配肿瘤和生殖系个体样本中覆盖基因组的杂合区(蓝色)、保留区(黄色)和无信息区(白色)的缺失。每列代表一个肿瘤/生殖系对。此外,沿着灰色阴影框内每个图形的右侧是39个样本的平均LOH得分。左侧显示了单个染色体的细胞带。染色体1-22如补充图4所示。
基因组区域通常显示拷贝数改变
通过比较肿瘤组Mapping 50K阵列的信号强度,确定了通常显示拷贝数改变的区域(n个=43)与44个生殖系样本的强度。使用40个连续SNP的截止值,每个SNP都显示出显著差异(P(P)在前列腺肿瘤和种系样本之间,我们鉴定了73个基因组区域。区域规模从0.5扩大到9.6 兆比特(). 在确定的73个区域中,只有染色体2q24和20q13.3上的两个区域出现增益。染色体2、5、6、8、10、13、16和18共享缺失的多个区域不一定是DNA拷贝改变的独立区域,但可能是较大区域的亚组分。
表2
信号强度改变的基因组区域
染色体
|
起点一
|
终点一
|
区域内的SNP
|
区域大小(Mb)
|
损益
|
---|
1 | 70.31 | 72.72 | 77 | 2.41 | 损失 |
2 | 40.76 | 42.08 | 63 | 1.32 | 损失 |
2 | 49.73 | 50.73 | 51 | 1 | 损失 |
2 | 58.12 | 60.63 | 64 | 2.51 | 损失 |
2 | 67.05 | 69.07 | 70 | 2.02 | 损失 |
2 | 81.78 | 82.95 | 43 | 1.18 | 损失 |
2 | 167.63 | 168.44 | 44 | 0.81 | 增益 |
三 | 75.95 | 78.11 | 42 | 2.17 | 损失 |
4 | 74.14 | 75.72 | 41 | 1.59 | 损失 |
4 | 101.42 | 103.12 | 42 | 1.70 | 损失 |
4 | 142.78 | 144.48 | 57 | 1.70 | 损失 |
4 | 157.13 | 158.67 | 50 | 1.54 | 损失 |
5 | 44.28 | 51.99 | 65 | 7.71 | 损失 |
5 | 88.12 | 89.87 | 40 | 1.75 | 损失 |
5 | 90.12 | 92.31 | 43 | 2.19 | 损失 |
5 | 98.57 | 100.62 | 48 | 2.06 | 损失 |
5 | 100.69 | 102.38 | 43 | 1.68 | 损失 |
5 | 113.51 | 115.68 | 80 | 2.17 | 损失 |
6 | 69.21 | 70.54 | 54 | 1.33 | 损失 |
6 | 75.47 | 78.16 | 50 | 2.68 | 损失 |
6 | 80.96 | 82.84 | 57 | 1.88 | 损失 |
6 | 84.03 | 85.89 | 66 | 1.86 | 损失 |
6 | 87.45 | 89.36 | 49 | 1.92 | 损失 |
6 | 89.92 | 94.20 | 132 | 4.28 | 损失 |
6 | 97.38 | 99.27 | 46 | 1.90 | 损失 |
6 | 99.39 | 101.86 | 73 | 2.47 | 损失 |
6 | 110.16 | 113.42 | 59 | 3.26 | 损失 |
6 | 124.66 | 126.15 | 55 | 1.48 | 损失 |
8 | 0.18 | 2.76 | 41 | 2.58 | 损失 |
8 | 2.90 | 4.28 | 75 | 1.37 | 损失 |
8 | 4.47 | 4.95 | 54 | 0.47 | 损失 |
8 | 4.95 | 13.61 | 225 | 8.66 | 损失 |
8 | 13.61 | 23.19 | 345 | 9.58 | 损失 |
8 | 23.42 | 26.58 | 78 | 3.16 | 损失 |
8 | 26.58 | 28.16 | 58 | 1.58 | 损失 |
8 | 28.36 | 30.84 | 58 | 2.49 | 损失 |
9 | 30.09 | 32.01 | 44 | 1.92 | 损失 |
10 | 57.71 | 59.11 | 45 | 1.40 | 损失 |
10 | 85.45 | 86.83 | 52 | 1.37 | 损失 |
10 | 86.94 | 90.33 | 67 | 3.39 | 损失 |
10 | 91.63 | 93.03 | 46 | 1.40 | 损失 |
10 | 106.09 | 109.86 | 115 | 3.77 | 损失 |
10 | 110.09 | 112.14 | 42 | 2.04 | 损失 |
11 | 113.53 | 115.20 | 50 | 1.67 | 损失 |
13 | 32.84 | 36.54 | 123 | 3.70 | 损失 |
13 | 40.07 | 44.20 | 122 | 4.13 | 损失 |
13 | 44.68 | 46.13 | 55 | 1.45 | 损失 |
13 | 48.79 | 51.40 | 42 | 2.61 | 损失 |
13 | 51.59 | 55.83 | 103 | 4.24 | 损失 |
13 | 59.02 | 60.10 | 53 | 1.07 | 损失 |
13 | 61.96 | 63.70 | 42 | 1.74 | 损失 |
13 | 66.67 | 67.98 | 56 | 1.31 | 损失 |
13 | 82.86 | 84.22 | 57 | 1.37 | 损失 |
13 | 103.27 | 104.28 | 45 | 1.02 | 损失 |
14 | 25.10 | 27.56 | 55 | 2.47 | 损失 |
15 | 47.67 | 49.27 | 48 | 1.59 | 损失 |
16 | 51.69 | 53.25 | 49 | 1.56 | 损失 |
16 | 61.10 | 63.24 | 61 | 2.14 | 损失 |
16 | 72.85 | 76.17 | 56 | 3.32 | 损失 |
16 | 76.19 | 78.12 | 60 | 1.92 | 损失 |
16 | 79.68 | 82.40 | 64 | 2.72 | 损失 |
16 | 82.48 | 83.24 | 55 | 0.75 | 损失 |
16 | 83.25 | 85.62 | 42 | 2.36 | 损失 |
18 | 24.47 | 26.26 | 54 | 1.79 | 损失 |
18 | 28.67 | 30.80 | 49 | 2.13 | 损失 |
18 | 34.40 | 36.59 | 66 | 2.19 | 损失 |
18 | 47.67 | 49.11 | 52 | 1.44 | 损失 |
18 | 50.65 | 53.59 | 70 | 2.93 | 损失 |
18 | 54.14 | 57.06 | 81 | 2.92 | 损失 |
18 | 62.51 | 64.11 | 64 | 1.60 | 损失 |
18 | 66.15 | 68.29 | 73 | 2.14 | 损失 |
20 | 54.18 | 55.45 | 40 | 1.27 | 增益 |
21 | 21.83 | 22.70 | 40 | 0.87 | 损失 |
肿瘤DNA中LOH和拷贝数变化的比较
最近有研究表明,尽管丢失了一个等位基因,但癌症基因组中的LOH区域通常显示出两个拷贝(克莱顿·詹森等, 2004). 因此,我们测试了所有显示LOH的样本的LOH和信号强度之间的相关性。如所示第6、8、10、13、16和21号染色体上的主要LOH区域均与LOH呈正相关,且加权信号强度显著降低。这表明前列腺癌中一个等位基因的缺失与拷贝数的减少有关。所有染色体的LOH/信号强度图如所示补充图1我们进一步测试了局部和转移性PCa亚群的相同相关性,以确定与晚期乳腺癌的早期相比,晚期肿瘤中是否优先发现有丝分裂重组(克莱顿·詹森等, 2004),但在各个组中没有观察到差异(数据未显示)。
LOH与显示LOH的SNPs中基因组拷贝数改变之间的相关性。计算特定SNP中所有LOH肿瘤的特定SNP的信号强度值,并用指示LOH肿瘤数量的颜色绘制。虚线对应1%的显著性水平。这些宽度不同,因为一些SNP经历的LOH比其他SNP更多。信号强度超过1%显著性水平阈值的单核苷酸多态性被认为代表不同于2的基因组拷贝数(如果阳性>2,如果阴性<2)。LOH和拷贝数减少似乎正相关的领域包括6q、8p、10q、13q、16q和21q。插入的颜色代码显示LOH的样本数量。
为了验证结果,我们通过实时PCR测定了染色体8p和6q处LOH区域中四个不同基因的LOH样本的拷贝数得分。
结果显示拷贝数为1.01±0.2(平均值±标准差)(n个=30),而肿瘤DNA为2.1±0.2(n个=28)在生殖系DNA中。这证实了在显示LOH的样品中拷贝数丢失明显。
分化不良肿瘤亚群和转移性疾病中等位基因失衡的基因组区域
为了确定前列腺肿瘤亚组中拷贝数变化显著的基因组区域,我们比较了Mapping 50K芯片的信号强度。基因组区域被定义为包含连续SNP的区域,每个区域在P(P)⩽0.01.
其中两个样本无法进行转移状态分类,因此被排除在外。转移性前列腺癌样本(n个=22)与局部PCa相比(n个=19)的特征是整个基因组的拷贝数几乎完全增加,包括染色体1q、8q、9q、11q、12q和17q的大区域,如补充表5A在确定的22个区域中,与局限性疾病相比,4p染色体上只有一个0.4-Mb区域显示转移性PCa的拷贝数减少。
如所示8q染色体的基因组变化的特征是仅在转移性PCa样本中获得大区域,而8p的丢失在局部和转移性疾病样本中共享。转移瘤样本中所有染色体的基因组变化与局部PCa见补充图2与局限性疾病相比,转移性疾病样本中唯一显示信号强度较低趋势的主要区域是染色体6q14–16的LOH区域。降低切断P(P)-从0.01到0.02的单个SNP值表明,6q14-16的拷贝丢失在转移性疾病中更为常见(P(P)<0.05),表明转移性疾病样本中的拷贝丢失频率高于器官相关疾病(数据显示)。来自转移癌患者的样本组进一步分为来自给药患者的组(n个=7)或未给出(n个=15)雄激素剥夺治疗。在接受雄激素消融治疗的患者的样本中,染色体2p21、2p16和10q21的基因组区域显示拷贝数显著增加(表5B(补充)+图3(补充)).
8号染色体的信号强度。根据信号强度确定肿瘤亚组之间的基因组差异。计算并绘制各组的信号强度。使用排列检验来计算组平均值差异的显著性。转移性疾病组(蓝色)和局部疾病组(绿色)。重要性显示在顶部:P(P)0.01(棕色),0.01P(P)⩽0.02(红色),0.02 \10877]P(P)⩽0.05(橙色)。
从显示Gleason评分⩾8的样本中可以看到拷贝数完全增加的类似模式(n个=23)与Gleason得分⩽7相比(n个=19). 转移性疾病和低分化肿瘤患者的样本在1q32、7q32、8q22和8q24.1位置的拷贝数增加(Gleason评分⩾8)(表5C(补充)).
我们进一步比较了器官受限(T2a–c)患者样本的信号强度与局部侵袭性肿瘤(T3a+b),但没有区域达到上述阈值。
讨论
使用来自Affymetrix的新Mapping 50K SNParray,我们对43个激光显微切割PCa样本的等位基因不平衡进行了高分辨率全球尺度筛查。结果显示,PCa有一组基因组改变特征,包括LOH和6q、8p、10q、13q和16q染色体大区域的伴随拷贝丢失。大多数受影响区域以前都与前列腺癌相关(Joos公司等, 1995;库尼等1996年;埃洛等, 1997;费洛特等, 1998;Hyytinen公司等, 1999;林等, 2004). 然而,使用高密度SNP阵列结合激光显微切割提高分辨率,使我们能够识别出以前与该疾病无关的区域,包括30%的样本中在染色体21q22.2处显示LOH的2.9-Mb区域。胃癌和非小细胞肺癌患者曾有21q22缺失的报道(公园等, 2000;郑等, 2005),但我们在21q22.2发现的PCa中的LOH区域距离更远,因此之前不知道与癌症的关系。最近,汤姆林斯等(2005)在PCa中发现了一种高频率的复发性基因融合,包括染色体21q22处的ERG和TMPRSS,最近由吉本等(2006)有趣的是,ERG和TMPRSS基因都精确地位于新LOH区域21q22的外边界,支持这两个基因融合的结果。在修改这份手稿时,线路接口单元等(2006)报道了第21号染色体上ERG和TMPRSS2基因之间的一个类似的共同缺失区域,可能与最近在25%的PCa样本中从这两个基因中鉴定出的融合转录本有关。
使用信号强度来确定肿瘤和生殖系样本之间的显著拷贝数变化,在染色体2–5、9、11、14、15、18和20处确定了额外的区域。有一个截止点P(P)-40个连续SNP的值为0.01,73个区域的大小约为0.5至10 识别出Mb。除两个区域外,所有区域在肿瘤样本中都显示出拷贝丢失,这表明前列腺癌的发展几乎完全以特定基因组区域的丢失为特征。大多数较小的区域代表以前与PCa无关的基因组区域。结合LOH和基因组拷贝数数据的全球分析表明,PCa中的LOH与拷贝丢失呈正相关。我们的数据显示,LOH区域没有单亲二体症的迹象,最近另有报道称这是晚期乳腺癌的常见机制(穆尔西等, 2002;克莱顿·詹森等, 2004),急性髓性白血病(拉加万等, 2005)、髓母细胞瘤(兰登等, 2006)和基底细胞癌(Teh公司等, 2005).
染色体8p、10q、13q、16q和21q的杂合性丢失和伴随的拷贝丢失在局限性肿瘤和转移性肿瘤中的发生率相同,与肿瘤分期或分级无关。在转移性和低分化肿瘤中,唯一表现出高拷贝丢失倾向的LOH区域是染色体6q16。
以前的报告表明,早期器官受限前列腺肿瘤没有表现出染色体水平的失衡,平衡的细胞遗传学和表观遗传学变化可能是肿瘤发展的原因(傅等, 2000;楚等, 2003). 通过对肿瘤组织进行显微解剖以最大限度地提高肿瘤组织的产量,再加上一种新的高分辨率方法,我们发现LOH和拷贝数丢失在器官局限性肿瘤和转移性肿瘤中的发生频率相似,这表明LOH是PCa肿瘤发展的早期事件。最近,研究表明,6q、8p和10q染色体上的LOH发生在高级别PIN病变中(王等, 2001;Wang和Lai,2004年a,2004年b)现在被认为是前列腺癌最可能的侵袭前阶段。里韦罗等(2006)最近假设8p和13q的LOH是PCa致癌过程中不同的起始事件。我们的数据不支持这一理论,因为这两个区域的LOH在我们的样本中随机发生。平均而言,我们在每个样本的3-4个区域观察到LOH,并建议特定基因组损失的积累作为独立事件发生。虽然LOH是PCa中常见的事件,但大约13%的样本(39个样本中的5个)没有发现LOH迹象,因此染色体稳定。这一数字低于使用CGH技术报告的染色体稳定样品的31%(泰西拉等, 2004).
然后我们研究了与肿瘤分期和Gleason分级相关的基因组拷贝数变化。有趣的是,该分析揭示了染色体1、4、5、8–12、14、17和19–22上的31个基因组区域,除了一个区域与局部疾病相比,转移性疾病患者肿瘤中的拷贝数显著增加外。染色体8q上识别的区域与最近由高分辨率CGH识别的区域相似(范·杜恩等, 2005)显示包含C-MYC和EIF3S3等基因的8q扩增,晚期PCa患者获得17q25(里韦罗等, 2006). 显示拷贝增加的5p13区域含有F-box蛋白SKP2,该蛋白在晚期PCa中上调(达纳塞卡兰等, 2001)并在转基因小鼠模型中诱导PCa(垫片等, 2003). 染色体11q13的拷贝数增加可以独立于分期和分级预测术后复发,但在该区域还没有确定特定的生物标记物(巴黎等, 2004).
与肿瘤等级相关的拷贝数变化在显示高Gleason等级的样本中,在染色体1q、3q、7q、8q和14p的许多区域显示出类似的专属上调模式。在转移性PCa患者的样本中,染色体1q、7q和8q的区域也有相当大的重叠。大多数拷贝数增加的区域是新的,这些区域应在长期随访的更大研究中检查潜在致癌基因及其预测疾病进程的能力。
基于这些结果,我们提出了前列腺癌发生的遗传途径,该途径具有不同的起始事件,即染色体8p、13q、16q和21q的丢失。随着肿瘤的进展,前列腺癌显示出更高的基因组复杂性,导致基因组失衡,包括6q的丢失和8q、1q、7q和3q染色体的增加,这使肿瘤转移。有必要进行随访时间足够长的前瞻性研究,以疾病存活率作为临床终点,以确定等位基因失衡作为预后指标的临床应用。
总之,我们的分析揭示了前列腺癌患者腺癌组织中基因组失衡的特征模式,并确定了与肿瘤起始、转移和高级别疾病高度相关的基因组区域。我们的结果表明,等位基因丢失是前列腺肿瘤发展的早期事件,等位放大仅限于进展中的肿瘤。未来的研究应评估基因组等位基因失衡的特定模式作为PCa预后标志物的使用。
致谢
Pamela Celis、Bente Pytlich和Susanne Scou提供的技术援助受到热烈欢迎。这项工作得到了丹麦癌症协会第DP 03 097号拨款、奥胡斯大学研究基金会注册号212、丹麦癌症研究基金会、Erland Richard Frederiksen og Hustrus Legat and Frits、Georg og Marie Cecilie Gluds Legat的支持。KDS得到了约翰和比尔特·梅耶基金会的资助。CW得到了丹麦癌症协会和Fraenkel基金会的支持。
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