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J维罗尔。2003年9月;77(18): 9845–9851.
数字对象标识:10.1128/JVI.77.18.9845-9851.2003
预防性维修识别码:PMC224606型
PMID:12941893

长期接触孕酮可防止阴道内接种减毒单纯疱疹病毒2型后引起保护性粘膜反应

摘要

Depo-Provera(Depo)是一种长效孕激素制剂,是女性常用的避孕方式。在性病动物模型中,它被用来促进感染。在这里,我们报告了在生殖器单纯疱疹病毒2型(HSV-2)小鼠模型中使用Depo治疗,根据动物在免疫前暴露于Depo的时间长短改变免疫反应。小鼠用减毒菌株(TK)进行阴道内免疫(i.vag.))长时间(15天)暴露于Depo(Depo 15组)后,HSV-2的感染率在受到野生型HSV-2攻击时没有表现出保护作用。相反,在Depo治疗后不久免疫的小鼠(5天;Depo 5组)得到了充分保护,并且在HSV-2攻击后没有出现生殖器病变。在攻击后6天内,Depo 15组的阴道冲洗液中检测到高病毒滴度。相反,在第3天之后,Depo 5组没有观察到病毒脱落。腹腔注射后。TK公司免疫后,在Depo 5组的阴道冲洗液中局部检测到高水平的γ-干扰素(IFN-γ),但在Depo 15组中未检测到。HSV-2攻击后,Depo 5组IFN-γ的早期峰值与病毒清除相一致。在Depo 15只动物中,在感染后的6天内始终存在IFN-γ。Depo 5 TK淋巴结细胞中HSV-2特异性T细胞因子反应的测定-免疫小鼠的Th1反应显著高于Depo 15 TK-免疫小鼠。Depo 5组HSV-2攻击后的保护作用与阴道分泌物中局部HSV-2糖蛋白B(gB)特异性免疫球蛋白G(IgG)和IgA反应增加有关。Depo 15组在HSV-2攻击后生殖道中的gB-特异性抗体反应较差。这些结果表明,长期接触Depo会导致对HSV-2的先天性和适应性免疫反应较差,无法保护小鼠免受随后的生殖器挑战。

性传播疾病(STD),包括人类免疫缺陷病毒(HIV)感染-AIDS,是发展中国家和发达国家发病的主要原因,也是卫生系统的巨大经济负担。单纯疱疹病毒2型(HSV-2)是最常见的病毒性性病之一的病原体(1). 目前在北美,估计每四个成年人中就有一个是HSV-2血清阳性(6). 过去40年来,研制有效疫苗的努力一直没有取得成果。成功的性传播感染预防性疫苗必须在感染的生殖道诱导良好的局部免疫反应(13). 为了实现这一点,需要考虑影响生殖道粘膜免疫反应的因素。最近一项基于糖蛋白D的HSV-2疫苗的临床试验证明了这些因素的重要性,该疫苗仅在女性中成功,在男性中无效(25). 因此,可能影响免疫系统的基于性别的因素可能在性病疫苗的成功中发挥关键作用。

各种研究表明,性激素对女性性病易感性和免疫反应有深远影响(81215242728). 各种研究表明,激素避孕,如口服避孕药和基于孕酮的方法(Depo-Provera[Depo])是与HIV 1型感染相关的生物因素(14). 在我们自己的研究中,我们发现通常对生殖道感染有抵抗力的老鼠沙眼衣原体黄体酮治疗后易感(11). 其他研究表明,植入孕酮会增强猴免疫缺陷病毒(SIV)的生殖器感染和疾病进程(15).

Depo是一种基于黄体酮的流行避孕药。这是一种长效(Depo)醋酸甲羟孕酮制剂,1992年被食品和药物管理局批准用于女性避孕。有效期为3个月,患者每隔3个月注射一次(7). 由于这种避孕方式的高效性和易依从性,目前正在作为一种对青少年有吸引力的避孕方式进行推广(26).

在对HSV-2的小鼠研究中,Depo通常用于促进感染。许多研究利用Depo处理的小鼠来检测HSV-2的感染动力学和免疫反应(9161721). 在所有这些研究中,给小鼠皮下注射Depo,并在免疫或感染后不久(一周内)注射。我们最近报道,Depo改变了治疗小鼠对HSV-2感染的敏感性。经Depo处理的小鼠被发现比未经处理的小鼠更易患月经间期的100倍(10). 此外,我们报告了Depo治疗后免疫小鼠对HSV-2的抗体反应显著降低。有趣的是,在这些研究中,当小鼠在接种TK之前长时间(2周)接触DepoHSV-2,他们对随后的挑战没有表现出任何保护(10). 其他使用免疫方案的研究表明,在Depo治疗后3至5天对小鼠进行免疫接种后,小鼠表现出完全的保护作用(162021). 本研究旨在确定在免疫前长时间接触Depo是否会导致无法保护小鼠免受随后的攻击。在免疫前2周接受Depo治疗的小鼠与免疫前5天接触Depo的小鼠进行比较。研究了暴露于Depo的时间长度对HSV-2免疫反应的影响及其对攻击后保护的影响。在免疫和攻击后,比较两组小鼠的病毒脱落和病理学。为了研究其机制,还测量了生殖道和引流淋巴结(LN)的局部免疫反应。最后测定野生型HSV-2攻击后的粘膜抗体反应。

材料和方法

动物和激素治疗。

这些研究中使用了从加拿大查尔斯河(加拿大魁北克省康斯坦特)购买的近交C57BL/6小鼠,8至10周龄。小鼠菌落维持在12小时-黑暗-12小时-光明的周期。根据之前的研究,向小鼠皮下注射2 mg Depo(加拿大安大略省Don Mills的Pharmacia Upjohn)(10).

动物接种。

小鼠通过腹腔注射麻醉剂(氯胺酮-噻嗪,分别为0.75和0.25 ml)麻醉,置于其背部,并在阴道内接种10μl野生型HSV-2菌株333或减毒TKHSV-2菌株,每株剂量为105每只鼠标的PFU。在麻醉的影响下,将小鼠仰卧45分钟至1小时,让接种物感染它们。

阴道涂片和灌洗液收集。

将2×30μl磷酸盐缓冲盐水(PBS)从阴道内外多次吸出,收集用于生殖周期分期和菌斑检测的阴道灌洗液。对于阴道涂片,将液体涂在玻片上并用光学显微镜检查,以确定如上所述的发情周期的阶段(30). 以下分类用于确定周期的阶段:发情期,>90%的角化上皮细胞;间期,>75%的多形核细胞;发情间期,50%上皮细胞-50%多形核细胞。对于菌斑分析,阴道冲洗液在−70°C下冷冻。如前所述,用Depo治疗的小鼠在5至6周内处于间期(10). 对Depo 5和Depo 15小鼠的阴道涂片进行检查,以确认它们在接种TK之前均处于月经间期HSV-2和野生型HSV-2的挑战。

生殖道中的病毒复制和病理学。

每日监测HSV-2感染后的生殖器病理,并按五分制评分:0分,无感染;1、外阴道轻度发红;2、外阴道红肿;3、阴道及周围组织严重肿胀、发红,生殖器部位脱发;4、生殖器溃疡,生殖器及周围组织严重红肿脱发;严重的生殖器溃疡延伸至周围组织。动物在达到第四阶段后被处死。

通过菌斑试验分析阴道冲洗液或组织匀浆中的病毒滴度。Vero细胞在添加了5%胎牛血清(GIBCO)、1%青霉素-链霉素和-谷氨酰胺(GIBCO)。对于斑块分析,Vero细胞在12孔板中生长汇合。样品被稀释(10−2到10−7)并添加到单层中。将受感染的单层在37°C下孵育2小时,以进行病毒吸收。用补充有0.05%人类免疫血清球蛋白(加拿大血液服务局)的α最小必需培养基覆盖受感染的单层。在37°C下感染48小时。然后固定单层并用结晶紫染色,并在光学显微镜下计数病毒斑块。每毫升PFU是通过对每个样本进行菌斑计数并考虑稀释系数来计算的。

ELISA检测抗HSV-2 gB-IgG和IgA。

HSV-2糖蛋白B(gB)特异性抗体滴度通过酶联免疫吸附试验(ELISA)测定,该试验根据之前描述的方案进行了修改(8). 简而言之,将Maxisorp 96板(加拿大安大略省伯灵顿市Invitrogen)在4°C的PBS中涂上2.5μg重组gB蛋白(加利福尼亚州埃默里维尔市Chiron公司)/ml过夜。在室温下用2%牛血清白蛋白封闭平板2小时,并装入100μl样品或对照品的两倍系列稀释液。在4°C温度下培养过夜。清洗板,并与以下生物素化抗体之一反应1小时:山羊抗鼠IgG或山羊抗鼠-IgA,稀释度为1:1000(加拿大安大略省米西索加市PharMinen)。用外维定过氧化物酶(1:2000稀释)和3,3′,5,5′-四甲基联苯胺制成平板。测定终点滴度,并将其表示为几何平均滴度±平均值标准误差(SE)。通过使用非免疫小鼠的阴道灌洗样品获得背景值。取平均背景光密度值的两倍作为确定正值的截止值。

LN细胞的制备和培养。

解剖引流生殖道的髂骨淋巴结,通过刺激淋巴结制备单细胞悬液。让碎片沉降2分钟,回收含有单个细胞的上清液,并以500×用含有5%牛血清白蛋白的RPMI 1640培养基冲洗细胞7至10分钟,然后以5×10的密度进行电镀596 well板中的细胞/孔。通过在三份培养物中添加gB(10μg/ml)(Chiron Inc.),对细胞进行HSV-2特异性增殖测试。通过向涂有抗CD3抗体(20μg/孔;从克隆2C11中纯化,由麦克马斯特大学D.P.Snider慷慨提供)的平板中添加细胞来测量总T细胞增殖。培养物孵育48小时,收集上清液并冷冻以进行进一步测试。通过摄入1μCi[H] 三天培养的最后18小时每孔胸腺嘧啶核苷。结果以每分钟平均计数±三份培养物平均数的标准偏差报告。

细胞因子ELISA。

根据试剂盒中推荐的方案,使用R&D Systems(明尼阿波利斯)的商业ELISA试剂盒测量LN上清液中的细胞因子水平。将收集的上清液的50微升等分试样一式两份进行。在450 nm处读取吸光度。使用标准曲线计算每个样品中每毫升浓度的微克数。计算每只动物的γ-干扰素(IFN-γ)与白细胞介素10(IL-10)和IFN-γ与IL-4的比值,并计算每个实验组的平均±SE。

统计分析。

每个实验至少重复两次,每组有6到12只动物。数据由非配对双尾模型分析t吨使用SPSS 11.00 for Windows软件进行测试。重要性定义为P(P)值<0.05。

结果

TK免疫暴露于Depo 15天后的HSV-2导致HSV-2攻击后的保护作用降低。

两组小鼠用单次注射Depo处理,并用105TK的PFUHSV-2静脉注射。一组在Depo治疗后15天接种疫苗(Depo 15组),另一组在给药后5天接种(Depo 5组)。在Depo治疗后,所有小鼠在5到6周之间都处于早泄状态(10). 激发前对阴道涂片进行检查,以确认Depo 15和Depo 5组的小鼠都处于月经间期。免疫后两组动物的病理学无差异(数据未显示)。两组动物均表现出轻微的局部感染症状,生殖器区域出现一些发红和炎症,持续3至4天,然后才消除感染。

免疫后三周,两组均接受静脉注射。带105野生型HSV-2菌株333的PFU。图中显示了三个独立实验之一的数据。图1。1。激发后的每日大体检查表明,Depo 5组的动物没有或仅有轻微的阴道病变迹象。相比之下,Depo 15组中六分之四的动物在HSV-2感染72小时内开始出现阴道病理,到第6天时出现严重病理,评分为3-4分,必须实施安乐死。在另外两个实验中也发现了类似的结果,其中60%至80%的Depo15动物死于感染。

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TK免疫小鼠的病理学研究HSV-2并受到野生型HSV-2菌株333的攻击。两组小鼠(每组6只)均皮下注射Depo(2mg/只)并经静脉免疫。带105TK的PFUHSV-2型。一组在Depo治疗15天后免疫(Depo 15组),另一组在Deo治疗5天后免疫(Deo 5组)。两组均接受静脉注射。带1053周后HSV-2菌株333的PFU。按照材料和方法中的说明,对所有动物的病理学进行评分。所示数据代表了三个具有可比结果的独立实验。

TK免疫后的病毒脱落模式HSV-2和随后的HSV-2挑战。

检查两组小鼠在保护方面的差异是否与TK能力相关病毒感染生殖道后,我们检测了免疫后以及野生型HSV-2攻击后的病毒滴度。遵循TKDepo 15和Depo 5组阴道分泌物中的HSV-2免疫病毒滴度相似(图。(图2A)。2安培). HSV-2攻击后,阴道冲洗液中测得的病毒滴度与病理数据显示出良好的相关性(图。(图2B)。2B型). Depo 5组的所有动物在3天内解决了感染问题,随后在其阴道冲洗液中未检测到病毒滴度。相比之下,Depo 15组中六分之四的动物在测量脱落的所有六天内都具有高病毒滴度。这些动物与表现出严重病理的动物相同(图。(图11).

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TK免疫小鼠阴道冲洗液中的病毒滴度经过15或5天的Depo治疗(A)后,用HSV-2静脉注射激发HSV-2。3周后(B)。每组12只小鼠接种10只5TK的PFUHSV-2型。每天在PBS中收集阴道冲洗液,并进行病毒斑块分析以计算病毒脱落。对斑块进行计数,病毒滴度以每毫升PFU表示。每个符号代表一种动物。所示数据代表了至少三个具有类似结果的独立实验。虚线表示病毒斑块分析的检测下限。

免疫后和激发后阴道冲洗液中的IFN-γ水平。

先前实验的结果表明,5天的Depo治疗可以保护小鼠免受随后的HSV-2攻击,但15天的Deo治疗不能。先前的研究表明,分泌到阴道分泌物中的IFN-γ是局部抗病毒反应的良好指标(18). 为了检测受感染动物体内局部IFN-γ的产生是否存在差异,我们检测了阴道分泌物中的IFN-γ水平。接种TK后HSV-2,Depo 5组在免疫后第2天出现了分泌到阴道分泌物中的IFN-γ的早期峰值,其他研究也报道了这一点(图。(图3B)。3B公司). 在Depo 15组中没有出现这种早期IFN-γ峰值。免疫后,在该组的阴道冲洗液中检测到极低水平的IFN-γ(图。(图3A第3页).

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TK免疫小鼠阴道冲洗液中IFN-γ浓度HSV-2和HSV-2菌株333攻击后。用10只小鼠免疫小鼠(每组6只)5TK的PFU在Depo治疗后15或5天,HSV-2开始静脉注射。带1053周后HSV-2的PFU。每天在免疫接种和挑战后收集阴道冲洗液。由于每只小鼠可获得的样本量较小,因此将所有六只动物的阴道冲洗液汇集在一起,并通过ELISA测定IFN-γ水平。这些数据代表了从两个具有可比结果的独立实验中获得的数据。(A) TK免疫小鼠Depo治疗后15天,HSV-2。(B) TK免疫小鼠Depo治疗后5天出现HSV-2。(C) 德波15只小鼠在挑战后。(D) 戴波5只老鼠挑战后。

HSV-2攻击后,Depo 5动物在攻击后第1天出现早期IFN-γ分泌高峰。到第4天,水平降至可检测水平以下,与病毒清除模式一致(图。(图3D)。三维). 另一方面,在Depo 15只动物中,IFN-γ反应在挑战后第2天达到峰值,并显示出其他研究中所见的典型双相模式(18)初次接触病毒后,在第6天仍然存在高水平的IFN-γ(图。(图3C3C公司).

TK排空LN中的T细胞反应HSV-2免疫小鼠。

因为我们观察到,在接受TK治疗的Depo 15组中,阴道分泌物中的局部IFN-γ反应降低我们检测了HSV-2免疫后5天,在两组小鼠中,T细胞免疫应答在局部LN排出生殖道。在这些实验之前,测定了排泄LN中T细胞反应的时间动力学,发现免疫后第5天是测量HSV-2特异性LN T细胞反应(数据未显示)的最佳时间。为了检测免疫后的总T细胞反应,用抗CD3抗体在体外激活LN T细胞。通过用高免疫原性HSV-2包膜糖蛋白gB体外刺激来测量HSV-2特异性反应。遵循TK免疫后,来自Depo15和Depo5组的LN细胞对体外gB挑战或抗CD3抗体刺激的增殖反应没有显著差异(图。(图4A)。4A级). 然而,当在体外gB激发的LN细胞的培养上清液中检测细胞因子时,Depo 5培养物的IFN-γ水平大约是Depo 15 LN培养物的三倍(图。(图4B)。4B类). 与Depo 15组相比,Depo 5组的IL-4水平较低,IL-10水平较高,尽管这些水平没有统计学意义(图。(图4C4摄氏度和D)。然而,当计算Th1/Th2比率时,Depo 5 LN培养物的IFN-γ/IL-4比率高于其他培养物(P(P)<0.01)(图。(图4E)。第四版). 同样,与Depo 15组相比,Depo 5组上清液中的IFN-γ/IL-10比率增加了三倍(图。(图4F4楼).

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Depo处理的TK免疫小鼠的LN增殖和细胞因子反应HSV-2型。用105TK的PFU德波治疗后15或5天,HSV-2感染。免疫后5天提取髂骨LN,并按照材料和方法中的描述培养细胞48小时。(A) 用抗CD3抗体(CD3)和HSV-2 gB检测LN细胞增殖。对照培养物仅接受培养基。结果显示为平均值±标准偏差。(B至D)用gB蛋白培养48小时后收集上清液,并通过ELISA分别分析IFN-γ、IL-4和IL-10。计算每只动物的Th1/Th2比值,并显示各组的平均值±SE。(E) γ/IL-4比值。(F) IFN-γ/IL-10比值。所示数据代表了两个具有类似结果的独立实验。

在HSV-2攻击后5天,也检查了T细胞反应(数据未显示)。与阴道分泌物中病毒脱落和IFN-γ反应的观察结果一致,在挑战后第5天,Depo 5动物的T细胞反应超过峰值,所有细胞因子水平与未感染小鼠的水平相当。另一方面,Depo 15 LN显示IFN-γ水平显著升高,Th1/Th2比值显著升高,表明对HSV-2有初步反应。

阴道冲洗液中HSV-2特异性IgG和IgA水平。

以前的研究表明,对生殖器HSV-2感染的保护与阴道分泌物中的局部抗体水平相关(820). 由于在Depo 15和Depo 5小鼠之间观察到对HSV-2攻击的保护作用存在差异,因此测量阴道分泌物中针对gB的局部抗体,以确定Depo治疗是否对HSV-2的次级抗体反应产生影响。三个实验之一的代表性数据如图所示。图5。5Depo 15组的所有六只小鼠都有较差的gB-特异性IgA反应,而Depo 5组的六只小鼠中有三只在阴道冲洗液中表现出显著的gB--特异性Ig A水平。gB-特异性IgG的差异更为显著。Depo 5组的所有六只小鼠都有gB-特异性IgG反应,六只小鼠中有四只的终点滴度在1000到5000之间。六分之一的Depo 15小鼠的阴道分泌物中检测到gB-特异性IgG水平。

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HSV-2攻击后Depo 15和Depo 5动物阴道冲洗液中HSV-2特异性抗体滴度。用105TK的PFU在Depo治疗后15或5天,HSV-2开始静脉注射。带1053周后HSV-2的PFU。在挑战后的5天内,每天收集阴道冲洗液,并将每只动物的阴道冲洗液汇集在一起。用ELISA测定gB-特异性IgA和IgG抗体,并按照材料和方法中的描述测定终点滴度。虚线表示ELISA检测下限。该值太低,无法在面板B中看到。显示的数据代表了两个具有可比结果的独立实验。

讨论

本研究的结果清楚地表明,接触Depo的时间长短对HSV-2弱毒株免疫后的免疫反应有显著影响。免疫反应的变化导致小鼠受到保护或不受随后的野生型病毒攻击。以前的研究表明,接种传统知识在Depo治疗后3至5天,HSV-2可完全抵御随后的挑战(1621). 在我们的研究中,我们发现了类似的结果,较短时间接触Depo(5天)可诱导足够的免疫反应,以防止随后的静脉注射。挑战。相比之下,长时间(2周)接触Depo会抑制免疫反应的诱导,并不能防止随后的野生型HSV-2对生殖器的攻击。免疫后,Depo 15小鼠阴道分泌物中缺乏IFN-γ的诱导,表明局部先天性反应受到损害。Depo 15小鼠的局部排泄LN中Th1反应也降低。在受到野生型HSV-2的攻击后,与Depo 5组相比,Depo 15组的保护不足与生殖道中缺乏局部抗体反应有关。

虽然先前的临床和实验研究已经明确表明孕酮增加了性病的易感性,但本研究开始描述其对免疫反应的影响。最有趣的观察是黄体酮对TK免疫后先天免疫反应的抑制作用HSV-2型。先前的研究表明,在对原发性阴道感染HSV-2的反应中,IFN-γ的双相分泌在病毒清除中起着重要作用(18). 阴道分泌物中IFN-γ的早期峰值是NK和NKT细胞对病毒感染产生的先天反应的一部分(18). 其他感染模型的研究表明,NK细胞产生的IFN-γ在扭曲Th1型的免疫应答中起着重要作用(23). 局部IFN-γ也可能在激活抗原呈递细胞和上调抗原呈递上的主要组织相容性复合体II类,以增强病毒抗原的呈递方面发挥重要作用(4). 在长期接触Depo的动物中,这种早期IFN-γ反应是不存在的,这表明HSV-2免疫的先天反应可能缺乏。在我们小组的其他研究中,基因缺乏启动这种初始先天反应(IFN-γ)能力的小鼠−/−和Rag-2−/−c(c)−/−小鼠)对HSV-2生殖器感染的敏感性也显著增加(2).

黄体酮对HSV-2免疫的适应性免疫反应也有明显影响。免疫后,Depo 15小鼠的Th1/Th2比率显著降低,攻击后的局部抗病毒IgA和IgG抗体水平也显著降低。一种可能性是,缺乏最初的先天性反应影响了随后诱导的保护性适应性免疫反应。早期先天性反应中IFN-γ的缺失可能会将Th1反应改变为更多的Th2反应,从而影响粘膜抗体反应。另一方面,Depo可以独立抑制先天性和适应性反应。最近有报道称,当给先前免疫的小鼠注射Depo时,阴道分泌物中的IgG和IgA抗体水平显著降低,表明Depo可能直接抑制局部抗体水平(10).

长期接触孕酮降低保护性免疫反应的细胞机制尚不清楚。我们的数据表明,这种效果需要5天以上的Depo暴露时间。其他研究结果表明,孕酮可以对中性粒细胞产生抑制作用(19)和NK细胞功能(5). 因此,长期接触Depo可能会影响这些细胞分泌适当的趋化因子和细胞因子以启动抗病毒天然免疫反应的能力。肿瘤研究的临床研究也表明,连续或间歇地定期服用醋酸甲羟孕酮可导致人类造血祖细胞的细胞周期阻滞(22). 如果此机制在HSV-2模型中激活,那么在长期暴露于Depo祖细胞免疫细胞的影响下,可能无法增殖,导致抗病毒反应降低。我们目前正在调查这种可能性。

许多其他研究已经证明,孕酮增加了对性传播病毒的敏感性(121415). 在SIV恒河猴模型中,孕酮植入物增强了SIV阴道传播和病毒载量(15). 本研究和其他研究中的传播增加归因于孕酮影响下阴道上皮萎缩。薄上皮可以使病毒容易地穿透上皮层和/或在上皮下的易感靶细胞中建立感染。虽然本研究是在小鼠身上进行的,但这项研究的结果可能对使用Depo作为避孕方法的女性具有重要意义。除了使生殖器上皮变薄之外,如果持续使用Depo也会影响女性生殖道的免疫反应,那么可能会进一步增加包括艾滋病毒在内的性传播感染的风险。这对代表性病感染风险最高群体的青春期女孩尤为重要(). 需要进行研究,进一步检查服用Depo或其他激素治疗的女性是否改变了对性病的易感性和/或对疫苗的免疫反应。如果是这样的话,对于目前正在使用激素避孕药具和疗法的妇女来说,其他预防措施,如屏障避孕法,对她们来说很重要,以保护自己免受传播风险的增加。

成功的性病疫苗的最终目标是诱导生殖道的无菌免疫。先前的研究清楚地表明,无论是动物模型还是女性,生殖道免疫反应都受到性激素雌二醇和孕酮的调节(29). 以前的研究表明,雌二醇和孕酮调节大鼠模型的敏感性和免疫反应沙眼衣原体(12)和HSV-2小鼠模型(10). 目前的研究扩展了这些发现,表明激素治疗,如Depo,也可能影响免疫系统抵抗性传播病毒感染的能力。这些研究强调需要考虑女性的荷尔蒙状况,以便制定有效的性病疫苗策略。这对目前正在接受激素治疗的女性也有重要意义。

致谢

这项工作得到了加拿大卫生研究院(给C.K.和K.L.R.)、安大略省艾滋病毒治疗网络(C.K.)和Bickell基金会(C.K.K.)的研究资助。C.K.是安大略省艾滋病毒治疗网络学者。

我们感谢Jen Newton和Amy Patrick的技术帮助。我们还感谢丹尼斯·斯奈德对手稿的批判性阅读。

参考文献

1Aral、S.O.和K.K.Holmes。1999.性病流行病学的社会和行为决定因素:工业化国家和发展中国家,第95-106页。K.K.Holmes、P.F.Sparling、P.A.Mardh、S.M.Lemon、W.E.Stamm、P.Piot和J.N.Wasserheit(编辑),《性传播疾病》,第三版,McGraw-Hill,纽约州纽约市。
2Ashkar,A.A.和K.L.Rosenthal。白细胞介素-15、自然杀伤细胞和NKT细胞在生殖器单纯疱疹病毒2型感染的先天保护中发挥着关键作用。J.维罗尔。 77:10168-10171.[PMC免费文章][公共医学]
三。Berman、S.M.和K.Hein。1999年,《青少年与性病》,第129-142页。K.K.Holmes、P.F.Sparling、P.A.Mardh、S.M.Lemon、W.E.Stamm、P.Piot和J.N.Wasserheit(编辑),《性传播疾病》,第三版,McGraw-Hill,纽约州纽约市。
4P·布兰德。肠上皮MHC II类表达。免疫学。今天 9:174-178. [公共医学][谷歌学者]
5Brunelli,R.、D.Frasca、G.Perrone、C.Pioli、A.Fattorossi、L.Zichella和G.Dorai。激素替代治疗影响各种免疫细胞亚群和自然细胞毒性。妇科。障碍物。投资。 41:128-131. [公共医学][谷歌学者]
6Corey,L.和A.Wald。1999.生殖器疱疹,第285-312页。K.K.Holmes、P.F.Sparling、P.A.Mardh、S.M.Lemon、W.E.Stamm、P.Piot和J.N.Wasserheit(编辑),《性传播疾病》,第三版,McGraw-Hill,纽约州纽约市。
7FDA医学通报。1993年。批准了为期3个月的避孕注射。FDA医学牛。 23:6-7. [公共医学][谷歌学者]
8Gallichan,W.S.和K.L.Rosenthal。1996年。发情周期对局部体液免疫反应的影响,以及对经鼻免疫的雌性小鼠生殖道单纯疱疹病毒2型感染的保护作用。病毒学 224:487-497. [公共医学][谷歌学者]
9Gallichan,W.S.和K.L.Rosenthal。粘膜免疫而非全身免疫后粘膜组织中的长期细胞毒性T淋巴细胞记忆。实验医学学报 184:1879-1890.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Kaushic,C.、A.A.Ashkar、L.A.Reid和K.L.Rosenthal。孕酮增加了生殖器疱疹感染的易感性,降低了免疫反应。J.维罗尔。 77:4558-4655中。[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Kaushic,C.、A.D.Murdin、B.J.Underdown和C.R.Wira。1998沙眼衣原体大鼠雌性生殖道感染:孕酮对感染性和免疫反应的影响。感染。伊蒙。 66:893-898.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
12Kaushic,C.、F.Zhou、A.D.Murdin和C.R.Wira。2000.雌二醇和孕酮对沙眼衣原体女性生殖道感染。感染。伊蒙。 68:4207-4216.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
13Lehner,T.、L.Bergmeier、Y.Wang、L.Tao和E.Mitchell。1999.粘膜接种预防HIV感染的合理依据。免疫学。版次。 170:183-196. [公共医学][谷歌学者]
14Martin,H.L.,Jr.、P.M.Nyange、B.A.Richardson、L.Lavreys、K.Mandaliya、D.J.Jackson、J.O.Ndinya-Achola和J.Kreiss。1998年。激素避孕、性传播疾病和1型人类免疫缺陷病毒的异性传播风险。J.感染。数字化信息系统。 178:1053-1059. [公共医学][谷歌学者]
15Marx,P.A.,A.I.Spira,A.Gettie等人。孕酮植入增加了SIV阴道传播和早期病毒载量。自然医学。 2:1084-1089. [公共医学][谷歌学者]
16McDermott,M.R.、J.R.Smiley、P.Leslie、J.Brais、H.E.Rudzroga和J.Bienenstock。1984年。用2型单纯疱疹病毒弱毒株对小鼠进行阴道内接种后,女性生殖道的免疫。J.维罗尔。 51:747-753.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Milligan,G.N.和D.I.Bernstein。1995年2型疱疹病毒感染后小鼠女性生殖道中疱疹特异性T细胞的分析。病毒学 212:481-489. [公共医学][谷歌学者]
18Milligan,G.N.和D.I.Bernstein。1997年。干扰素-γ增强了小鼠生殖道单纯疱疹病毒2型感染的解决。病毒学 229:259-268. [公共医学][谷歌学者]
19Nohmi,T.、S.Abe、K.Dobashi、S.Tansho和H.Yamaguchi。1995.禁止反-念珠菌体外孕酮对小鼠中性粒细胞活性的影响:孕妇阴道念珠菌病易感性的一种可能机制。微生物。免疫学。 39:405-409. [公共医学][谷歌学者]
20帕尔、E.L.和M.B.帕尔。经鼻或阴道接种减毒2型单纯疱疹病毒后的免疫反应和对阴道感染的保护。免疫学 98:639-645.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
21Parr,M.B.、L.Kepple、M.R.McDermott、M.D.Drew、J.J.Bozzola和E.L.Parr。用于研究单纯疱疹病毒2型阴道感染粘膜免疫的小鼠模型。投资实验室。 70:369-380. [公共医学][谷歌学者]
22Quesada,A.R.、J.M.Jimeno、G.Marquez和M.Aracil。1993.醋酸甲羟孕酮诱导的人类造血祖细胞的细胞周期阻滞。实验血液学。 21:1413-1418. [公共医学][谷歌学者]
23Scharton,T.M.和P.Scott。1993年。自然杀伤细胞是干扰素γ的来源,可促进CD4的分化+T细胞亚群和诱导早期抵抗大型利什曼原虫在小鼠中。实验医学学报 178:567-577.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
24Smith,S.M.、G.B.Baskin和P.A.Marx。雌激素可防止猴免疫缺陷病毒的阴道传播。J.感染。数字化信息系统。 182:708-715. [公共医学][谷歌学者]
25Stanberry,L.R.,S.L.Spruance,A.L.Cunningham,D.L.Bernstein,A.Mindel,S.Sacks,S.Tyring,F.Y.Aoki,M.Sloui,M.Denis,P.Vandepapeliere和G.Dubin。糖蛋白-D佐剂疫苗预防生殖器疱疹。北英格兰。医学杂志。 347:1652-1661. [公共医学][谷歌学者]
26Sucato,G.和M.A.Gold。2001.青少年避孕的新选择。货币。妇女健康代表。 1:116-123. [公共医学][谷歌学者]
27Teepe,A.G.、L.B.Allen、R.J.Wordinger和E.F.Harris。发情周期对雌性小鼠阴道内接种单纯疱疹病毒2型(HSV-2)敏感性的影响。安提韦。物件。 14:227-235. [公共医学][谷歌学者]
28Wira、C.R.和C.Kaushic。1996年。《女性生殖道粘膜免疫:性激素对免疫识别和反应的影响》,第375-386页。H.Kiyono、P.L.Ogra和J.R.McGee(编辑),粘膜疫苗:免疫的新趋势。学术出版社,纽约。
29Wira、C.R.、C.Kaushic和J.Richardson。1999.性激素和细胞因子在调节女性生殖道粘膜免疫系统中的作用,第1449-1461页。P.L.Ogra、J.Mestecky、M.Lamm、W.Strober、J.Bienenstock和J.McGhee(编辑),粘膜免疫学,第二版,学术出版社,纽约,纽约。
30Wira,C.R.和R.M.Rossoll。女性生殖道中的抗原呈递细胞:动情周期对子宫上皮细胞和基质细胞抗原呈递的影响。内分泌学 136:4526-4534. [公共医学][谷歌学者]

文章来自病毒学杂志由以下人员提供美国微生物学会(ASM)