跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
细胞生物学杂志。1987年9月1日;105(3): 1455–1462.
数字对象标识:10.1083/jcb.105.3.1455
预防性维修识别码:项目经理2114828
PMID:3654761

周细胞和平滑肌细胞对毛细血管内皮细胞生长的抑制作用

摘要

毛细血管发育的形态学研究和与病理性新生血管相关的毛细血管变化的观察表明周细胞可能会抑制内皮细胞(EC)的生长。我们已经开发了系统,使我们能够在体外研究这种可能性。使用了两种模型:一种是允许周细胞和内皮细胞直接接触的共培养系统,另一种是防止物理接触但允许可溶性因子扩散的共培养体系。在这些研究中,在牛毛细血管内皮细胞和以下生长停滞细胞(以下称为调节细胞)之间建立了共培养:周细胞、平滑肌细胞(SMCs)、成纤维细胞、上皮细胞和3T3细胞。在与内皮细胞共培养之前,用丝裂霉素C处理可阻止调节细胞类型的生长。在直接共培养细胞的实验中,通过将共培养物中的平均细胞数与单独培养的每种细胞类型(EC和调节细胞)的平均数进行比较来确定共培养对EC生长的影响。由于周细胞和其他调节细胞生长受阻,所以在共培养中的任何细胞数量变化都是由于EC生长所致。在共培养中,周细胞在整个14d时间过程中抑制所有EC增殖;在SMC-EC共培养中观察到类似程度的EC抑制。内皮细胞与成纤维细胞、上皮细胞和3T3细胞共培养在同一时间段内显著刺激内皮细胞生长(与单独培养的内皮细胞相比,为30-192%)。为了确定抑制是否需要细胞接触,使用Millicell培养箱(Millipore Corp.,Bedford,MA)共同培养细胞,该培养箱将细胞类型分开1-2 mm,但允许交换扩散材料。在这个共培养系统中,周细胞或SMC对EC增殖没有抑制作用。通过以1:1、2:1、5:1、10:1和20:1的EC/周细胞比率共同培养细胞来评估细胞比率对观察到的抑制的影响。在1:1到10:1的比例下观察到EC抑制的类似水平。当细胞以20个内皮细胞与1个周细胞的比例共同培养时,第3天对内皮细胞生长的抑制与其他比例下观察到的抑制相似。然而,在较高的比率下,抑制作用减弱,以至于在时间过程结束时,共同培养的内皮细胞的生长速度与对照组相同。这些结果表明周细胞和SMC可以通过需要接触或接近的机制调节EC的生长。我们假设类似的相互作用可能在体内调节血管生长。

全文

本文全文可作为PDF格式(150万)。

选定的引用

这些参考文献在PubMed中。这可能不是本文的完整参考文献列表。

  • Ausprunk DH。胚胎血管内皮细胞合成糖蛋白。开发生物。1982年3月;90(1):79–90.[公共医学][谷歌学者]
  • Ausprunk DH,Folkman J.肿瘤血管生成过程中预先形成和新形成血管中内皮细胞的迁移和增殖。微血管研究。1977年7月;14(1):53–65.[公共医学][谷歌学者]
  • Ausprunk DH、Boudreau CL、Nelson DA。微血管中的蛋白聚糖。兔眼微血管的组织化学定位。《美国病理学杂志》。1981年6月;103(3):353–366. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Bruns RR,Palade GE。毛细血管研究。二、。铁蛋白分子在肌肉毛细血管壁上的运输。细胞生物学杂志。1968年5月;37(2) :277–299。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Cancilla PA、Baker RN、Pollock PS、Frommes SP。中枢神经系统周细胞对外源蛋白的反应。实验室投资。1972年4月;26(4):376–383.[公共医学][谷歌学者]
  • Castellot JJ,Jr,Favreau LV,Karnovsky MJ,Rosenberg RD。内皮细胞衍生肝素对血管平滑肌细胞生长的抑制。血小板内糖苷酶的可能作用。生物化学杂志。1982年10月10日;257(19):11256–11260.[公共医学][谷歌学者]
  • Clowes AW,Gown AM,Hanson SR,Reidy MA。动脉移植失败的机制。1.细胞增殖在聚四氟乙烯假体早期愈合中的作用。《美国病理学杂志》。1985年1月;118(1):43–54. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Cohen MP,Frank RN,Khalifa AA。培养的视网膜毛细血管周细胞产生胶原蛋白。投资眼科视觉科学。1980年1月;19(1):90–94.[公共医学][谷歌学者]
  • Courtoy PJ,Boyles J.微血管中的纤维结合蛋白:周细胞-内皮间质中的定位。超微结构研究杂志。1983年6月;83(3):258–273.[公共医学][谷歌学者]
  • Davies PF、Truskey GA、Warren HB、O’Connor SE、Eisenhaure BH。共培养中血管内皮细胞和平滑肌细胞之间的代谢合作:低密度脂蛋白代谢的变化。细胞生物学杂志。1985年9月;101(3):871–879. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • de Oliveira F.糖尿病视网膜病变中的周细胞。英国眼科杂志。1966年3月;50(3):134–143. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Doctrow SR,Folkman J.蛋白激酶C活化剂通过血管生成内皮细胞有丝分裂原抑制对毛细血管内皮细胞生长的刺激。细胞生物学杂志。1987年3月;104(3):679–687. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Edelman GM。细胞粘附和形态发生的分子过程。生物化学年度收益。1985;54:135–169.[公共医学][谷歌学者]
  • Feldman PS,Shneidman D,Kaplan C.肝脏婴儿血管内皮瘤的超微结构。癌症。1978年8月;42(2) :521–527。[公共医学][谷歌学者]
  • Folkman J,Moscona A.细胞形状在生长控制中的作用。自然。1978年6月1日;273(5661):345–349.[公共医学][谷歌学者]
  • Folkman J,Haudenschild CC,Zetter BR。毛细血管内皮细胞的长期培养。美国国家科学院院刊。1979年10月;76(10):5217–5221. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Gitlin JD,D’Amore PA。使用选择性生长介质培养视网膜毛细血管细胞。微血管研究。1983年7月;26(1):74–80.[公共医学][谷歌学者]
  • Hay ED.细胞外基质。细胞生物学杂志。1981年12月;91(第3部分第2节):205s–223s。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Heimark RL,Schwartz SM。膜-膜相互作用在内皮细胞生长调节中的作用。细胞生物学杂志。1985年6月;100(6):1934–1940. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Herman IM,D’Amore PA。微血管周细胞含有肌肉和非肌肉肌动蛋白。细胞生物学杂志。1985年7月;101(1):43–52. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Homandberg GA、Kramer-Bjerke J、Grant D、Christianson G、Eisenstein R.纤连蛋白的肝素结合片段是内皮细胞生长的有效抑制剂:结构-功能相关性。Biochim生物物理学报。1986年11月7日;874(1):61–71.[公共医学][谷歌学者]
  • Hüttner I,Boutet M,More RH.动脉内皮缝隙连接。细胞生物学杂志。1973年4月;57(1):247–252. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Hüttner I,Boutet M,More RH.蛋白质通过动脉内皮的研究。I.大鼠动脉内皮通透性的结构相关性。实验室投资。1973年6月;28(6):672–677.[公共医学][谷歌学者]
  • Joyce NC、DeCamilli P、Boyles J.周细胞与血管平滑肌细胞一样,对周期性GMP依赖性蛋白激酶的免疫细胞化学阳性。微血管研究。1984年9月;28(2):206–219.[公共医学][谷歌学者]
  • Joyce NC,Haire MF,Palade GE。周细胞中的收缩蛋白。I.原肌球蛋白的免疫过氧化物酶定位。细胞生物学杂志。1985年5月;100(5):1379–1386. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 库瓦巴拉T,COGAN DG。视网膜血管模式。六、 视网膜毛细血管壁细胞。眼科学杂志。1963年4月;69:492–502。[公共医学][谷歌学者]
  • Lieberman MA,Glaser L.细胞生长的密度依赖性调节:细胞-细胞识别现象的一个例子。《分子生物学杂志》。1981;63(1-2):1–11.[公共医学][谷歌学者]
  • Loeb AL、Owens GK、Peach MJ。培养细胞中内皮衍生舒张因子的证据。高血压。1985年9月至今;7(5):804–807.[公共医学][谷歌学者]
  • Madri JA,Williams SK。毛细血管内皮细胞培养:基质成分的表型调节。细胞生物学杂志。1983年7月;97(1):153–165. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Mazanet R,Franzini-Amstrong C.大鼠红肌周细胞的扫描电子显微镜。微血管研究。1982年5月;23(3):361–369.[公共医学][谷歌学者]
  • Nakamura T、Yoshimoto K、Nakayama Y、Tomita Y、Ichihara A.通过细胞接触和细胞膜对原代培养中成熟大鼠肝细胞的生长和分化功能的相互调节。美国国家科学院院刊。1983年12月;80(23):7229–7233. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Orlidge A,D’Amore PA。糖胺聚糖对血管壁成分附着和增殖的细胞特异性作用。微血管研究。1986年1月;31(1) :41–53。[公共医学][谷歌学者]
  • 罗丁JA。哺乳动物静脉毛细血管、小静脉和小集合静脉的超微结构。超微结构研究杂志。1968年12月;25(5):452–500.[公共医学][谷歌学者]
  • Sims DE。周细胞——综述。组织细胞。1986;18(2):153–174.[公共医学][谷歌学者]
  • Spagnoli LG、Pietra GG、Villaschi S、Johns LW。再生动脉内皮缝隙连接的形态计量学分析。实验室投资。1982年2月;46(2):139–148.[公共医学][谷歌学者]
  • Spitznas M,Reale E.人类脉络膜血管内皮细胞窗孔和连接处的断裂面。投资眼科。1975年2月;14(2) :98–107。[公共医学][谷歌学者]
  • Tilton RG、Hoffmann PL、Kilo C、Williamson JR。人类糖尿病患者骨骼肌毛细血管的周细胞变性和基底膜增厚。糖尿病。1981年4月;30(4):326–334.[公共医学][谷歌学者]
  • Tilton RG,Kilo C,Williamson JR。心肌和骨骼肌毛细血管中的周细胞-内皮关系。微血管研究。1979年11月;18(3):325–335.[公共医学][谷歌学者]
  • Tilton RG、Kilo C、Williamson JR、Murch DW。大鼠心肌和骨骼肌微血管中周细胞收缩功能的差异。微血管研究。1979年11月;18(3):336–352.[公共医学][谷歌学者]
  • Tilton RG、Miller EJ、Kilo C、Williamson JR。大鼠视网膜和葡萄膜毛细血管中周细胞的形态和分布。投资眼科视觉科学。1985年1月;26(1):68–73.[公共医学][谷歌学者]
  • Tomasz M、Chowdary D、Lipman R、Shimotakahara S、Veiro D、Walker V、Verdine GL.DNA与化学或酶激活丝裂霉素C的反应:主要共价加合物的分离和结构。美国国家科学院院刊。1986年9月;83(18):6702–6706. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Voyta JC,Via DP,Butterfield CE,Zetter BR。根据内皮细胞对乙酰化低密度脂蛋白的摄取增加来识别和分离内皮细胞。细胞生物学杂志。1984年12月;99(6):2034–2040. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Wieser RJ,Oesch F.通过固定化质膜糖蛋白对人二倍体成纤维细胞生长的接触抑制。细胞生物学杂志。1986年8月;103(2):361–367. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Young WC,Herman IM。体外损伤后内皮细胞形态和运动的细胞外基质调节。细胞科学杂志。1985年2月;73:19–32.[公共医学][谷歌学者]

文章来自细胞生物学杂志由以下人员提供洛克菲勒大学出版社