跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
鲜血。2011年3月24日;117(12): 3257–3267.
2011年1月18日在线预发布。 数字对象标识:10.1182/血液-2010-09-304402
预防性维修识别码:项目经理3069667
PMID:21245485

的表达式第16页INK4a公司预防癌症并促进淋巴细胞衰老

关联数据

补充资料

摘要

以前的作者曾提出,抑癌基因的表达在预防癌症的同时促进衰老,但这一癌症衰老假说的直接实验支持尚不明确。这里,通过使用p16的体细胞、组织特异性失活INK4a公司小鼠T或B淋巴细胞祖细胞中的肿瘤抑制因子,我们报告p16的消融INK4a公司既可以挽救衰老,也可以以血统特异的方式促进癌症。p16缺失INK4a公司在T谱系中改善了几种衰老表型,包括胸腺退化、幼稚T细胞产生减少、稳态T细胞增殖减少和抗原特异性免疫反应减弱。体细胞p16未观察到T细胞瘤增生增加INK4a公司T细胞失活。相反,B血统特异性p16消融INK4a公司与全身性高级别B细胞肿瘤的发病率显著增加相关,这限制了对体细胞p16影响的研究INK4a公司B细胞老化消融。总之,这些数据表明p16的表达INK4a公司可以促进常见干细胞的相关淋巴子代的衰老并预防癌症。

引言

对抗性多效性是最古老的衰老假说之一,它表明某些细胞活动可能对年轻人的生理有益,但可能会在晚年不利地降低有机体的适应性。1癌症衰老假说代表了该模型的一个特例,表明诸如细胞衰老等肿瘤抑制机制可以以对抗性多效性的方式发挥作用,即防止年轻哺乳动物的恶性转化,但促进寿命延长。尽管有一些防止衰老的肿瘤抑制蛋白,如p16INK4a公司和p53导致不同组织分区的老化(在Campisi中进行了综述2和Collado等人)由于孤立组织中特定肿瘤抑制机制的细胞自主激活,因此不可能直接证明衰老加剧和癌症减少之间的严格权衡。

第16页INK4a公司抑癌蛋白,以及其他2种抑癌蛋白p15墨水4b和第14页农业研究基金(以下简称ARF),源于墨水4/ARFCDKN2a/b公司人类染色体9p21的位点(在夏普莱斯和德皮尼奥综述4)。p16的表达INK4a公司抑制细胞周期,促进细胞衰老,并与哺乳动物系统中的癌症和衰老有关。p16的表达INK4a公司研究表明,几乎所有哺乳动物组织都会随着年龄的增长而显著增加,限制热量摄入可以延缓啮齿类动物的衰老,从而减弱由年龄引起的p16的增加INK4a公司.p16的表达增加INK4a公司不仅与衰老有关,而且似乎在某些组织中起着因果作用。p16的高表达INK4a公司随着年龄的增长,造血干细胞(HSC)的复制能力下降,5胰腺β细胞,6,7和神经干细胞。8此外,p16的生殖系失活INK4a公司而不是ARF,部分地挽救了进展型小鼠株中的几个与年龄相关的表型。9因为这些实验很大程度上依赖于p16的种系失活或过度表达INK4a公司然而,p16的细胞自主贡献INK4a公司衰老及其与肿瘤抑制的关系尚未明确定义。

在关联研究中,作者提出p16的调节改变INK4a公司表达可能与人类年龄相关的表型有关,如虚弱、2型糖尿病、动脉粥样硬化疾病、癌症易感性和寿命(在夏普莱斯和德皮尼奥杂志上综述,4以及其他10——14)。我们和其他人最近表明第16页INK4a公司和其他墨水4/ARF转录物与宿主基因型的单核苷酸多态性密切相关墨水4/ARF基因座,15——17表明这些单核苷酸多态性的表型影响是由于墨水4/ARF轨迹。

一些数据特别表明p16的作用INK4a公司淋巴室中的衰老和肿瘤抑制。p16的转基因过表达INK4a公司在T细胞中Lck公司启动子阻止胸腺细胞在双阴性(DN)阶段的发育。18与此结果一致,p16的作用INK4a公司外周T细胞复制性衰老/低增殖已被提出19,20因为生殖系p16INK4a公司-缺陷小鼠胸腺细胞和外周T细胞数量增加。21,22对目前的工作特别重要的是,我们和其他人已经显示了p16的积累INK4a公司随着年龄增长,T细胞在人外周血中表达。17,23p16的这个表达INK4a公司似乎是生理学的生物标志物,而不是年龄,与吸烟和不运动等老年行为独立相关。17尽管这些小鼠和人类数据表明p16的作用INK4a公司在淋巴老化中,p16的细胞自主作用INK4a公司免疫衰老在生理条件下的作用以前还没有描述过。

关于淋巴癌INK4a/ARF公司该位点是多种人类淋巴和浆细胞恶性肿瘤中最常见的遗传事件之一,尤其是儿童B和T系急性淋巴细胞白血病/淋巴瘤(ALL)。24这种病变通常也会使p15失活墨水4b和ARF,它们在血液恶性肿瘤中明显发挥重要和特异的抑癌作用,25——28因此,p16的贡献INK4a公司对这些肿瘤类型的抑制尚不清楚。本研究特别感兴趣的是增加p16的表达INK4a公司ARF与年龄依赖性的淋巴细胞生成减少以及小鼠B细胞祖细胞的可转化性有关。29

尽管这些研究表明p16的作用INK4a公司p16在淋巴肿瘤抑制和衰老中的表达及其与衰老的特异性关系INK4a公司表达和这些表型结果尚不清楚。例如,不知道p16是否INK4a公司在分化淋巴细胞中观察到的与年龄相关的功能下降中起着内在作用。p16的高水平表达INK4a公司随着年龄的增长,胸腺的淋巴细胞和上皮细胞中都出现了这种情况,并且任何一个腔室的功能受损都可能导致免疫功能障碍。此外,还不清楚p16是否对促进衰老和抑制肿瘤都有影响INK4a公司在同一组织中,或者是否存在p16INK4a公司随着年龄的增长,这些表型只有一种,但不是两种。为了解决这些问题,我们对p16进行了血统特异性缺失INK4a公司通过使用特征明确、谱系特异的Cre重组酶等位基因和体灭活p16在B和T淋巴细胞祖细胞中INK4a公司-特异性等位基因。这项工作展示了p16强大的细胞自主作用INK4a公司T细胞老化和B细胞肿瘤抑制。

方法

老鼠

所有小鼠在C57BL/6基因背景下繁殖至少8代。在北卡罗来纳大学Lineberger综合癌症中心小鼠一期单元内,动物在正压通风货架上杂交和老化。CD19编号Cre公司/+Lck-Cre公司小白鼠由张毅博士慷慨提供。所有实验程序均由北卡罗来纳大学教堂山分校(UNC-CH)动物护理和使用委员会批准。

流式细胞术、细胞分选、Western blots、体外活化分析和硝基苯乙酰免疫

用相应的磁性微球(Miltenyi Biotec)标记后,Thy 1.2+T细胞或B220+使用AutoMACS pro分离器(Miltenyi Biotec)从单细胞脾悬浮液中纯化B细胞。在CD3和B220染色后,通过流式细胞术评估细胞的纯度和活力(补充图1,可在血液网站;请参阅在线文章顶部的补充材料链接)。所有细胞均浓缩至90%以上纯度。在CyAn ADP流式细胞仪上进行多色流式细胞术(Dako细胞术)。仔细解剖胸腺周围淋巴结,使其远离胸腺,并没有使用胸腺酶消化来最大限度地提高胸腺细胞计数的准确性。用ACK缓冲液去除红细胞后,制备脾、胸腺和骨髓的单细胞悬浮液。然后使用Neubauer血细胞仪通过对台盼蓝染色细胞的显微镜观察来确定总细胞数。抗体信息、体外淋巴细胞活化试验、硝基苯乙酰基(NP)免疫、生发中心形成和体内5-溴-2-脱氧尿苷(BrdU)掺入试验在补充文本中进行了描述。

组织固定、免疫组织化学染色和小动物成像

将组织固定在10%中性缓冲福尔马林中过夜,然后转移到70%乙醇中。组织病理学和免疫组织化学由认证兽医(A.B.R.)和人类(Y.F.)病理学家进行审查。补充文本中描述了其他免疫组织化学信息、动物成像和统计分析。

结果

特定于血统的删除第16页INK4a公司在淋巴细胞中

检查第16页INK4a公司在T或B淋巴细胞中,我们交叉了最近描述的第16页INK4a公司-特定条件等位基因30具有Lck-Cre公司转基因小鼠31删除第16页INK4a公司T血统或CD19编号克里/+敲除小鼠32在B血统中删除。这个第16页INK4a公司条件等位基因的侧翼有floxed位点墨水4a/Arf基因座与p16的体细胞切除INK4a公司在这个菌株中,p15的表达没有改变墨水4b或ARF,30与生殖系p16相比INK4a公司灭活。33,34 Lck-Cre公司转基因小鼠从DN1-DN3阶段开始在未成熟胸腺细胞中表达Cre重组酶。与人类一样,17,23第16页INK4a公司在年轻成人的脾T细胞中几乎检测不到这种表达Lck-Cre第16页+/+但随着年龄的增长,T细胞组分中的蛋白质表达强烈累积。删除的效率Lck-Cre第16页升/升根据p16定量,动物为82%-85%INK4a公司43至60周龄小鼠外周血T细胞的蛋白表达(图1A、 补充图1)。CD19编号Cre公司/+在小鼠骨髓的早期B细胞祖细胞中可以看到B系限制性Cre表达。32

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850001.jpg

特定于线路的删除第16页INK4a公司对幼年小鼠淋巴细胞发育无影响。(A) p16的蛋白表达INK4a公司在纯化的小鼠T细胞中Lck-Cre第16页+/+Lck Cre第16页升/升指定年龄的小鼠。p16的相对定量INK4a公司微管蛋白正常化后表达。净化方案见补充图1。(B) p16的蛋白表达INK4a公司在纯化的B和T细胞中CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+指定年龄的小鼠。净化方案见补充图1。(C) 年轻人(6-8周龄)胸腺细胞发育的可比性Lck-Cre第16页+/+老鼠与年轻人Lck-Cre第16页升/升老鼠。(左)双阳性、双阴性和CD4/CD8单阳性细胞的分数。(右)DN1的分数(CD25CD44细胞+),DN2(CD25+CD44细胞+),DN3(CD25+CD44细胞)和DN4(CD25CD44细胞)在林之后CD4细胞CD8(CD8)浇口。(D) 年轻人外周血T细胞的分化Lck-Cre第16页升/升小鼠与Lck-Cre第16页+/+老鼠。(左)CD4+或CD8+脾脏中的SP T细胞百分比。(中间)CD4+存储器(CD25CD44细胞你好)和天真(CD25CD44细胞lo/−)脾脏中的T细胞组分。(右)CD8+存储器(CD25CD44细胞你好CD122型+)和幼稚(CD25CD44细胞lo/−CD122型)T细胞组分。(E) 年轻人骨髓B系祖细胞的发育CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升小鼠与CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+老鼠。(左)CD93+免疫球蛋白M(IgM)早期B细胞祖细胞:前B细胞、前B细胞和前B细胞。(右)来自小鼠骨髓(BM)的未成熟B(Imm-B)细胞和成熟再循环B(recirculating B)细胞。(F) 年轻人脾脏B细胞亚群的分化CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升小鼠与CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+老鼠。不同的B细胞亚群如下所示:成熟(IgM免疫球蛋白D你好),未成熟(IgM你好免疫球蛋白D),过渡1(T1,CD21免疫球蛋白M+),过渡2(T2,IgM你好免疫球蛋白D你好)和边缘带(MZ、CD23CD21型+B220型+).

根据之前对人类的研究,17p16的表达INK4a公司脾脏B细胞中的含量低于同期从45周龄小鼠中采集的T细胞(图1B、 补充图1)。p16的分析INK4a公司在B细胞中的表达CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升45周以上的小鼠受到肿瘤发生的限制(如“B细胞特异性第16页INK4a公司失活加速淋巴肿瘤的发生”)。p16的表达INK4a公司外周血B细胞中CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升与年龄匹配的B细胞相比,小鼠的细胞数量减少CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+动物,但低水平表达限制了蛋白质减少的可靠定量(图1B) ●●●●。这些结果表明,在第16页升/升使用Lck-Cre公司CD19编号Cre公司/+等位基因。

缺失后年轻小鼠淋巴细胞的正常发育第16页INK4a公司在淋巴系中

接下来我们确定了血统特异性消融第16页INK4a公司对幼年小鼠淋巴细胞的发育和分化有影响。在本研究中,T细胞特异性缺失第16页INK4a公司不影响幼年小鼠(6-8周龄,图1C) ,DN1-DN4胸腺细胞数量(右)和单个阳性胸腺细胞数(左)在Lck-Cre第16页+/+Lck Cre第16页升/升老鼠。外周血单个阳性T细胞(图1D左),以及幼稚和记忆T细胞(图1D中部和右侧)在幼鼠中没有显著改变。同样,B细胞的发育和分化不受第16页INK4a公司B谱系中的缺失,如骨髓中正常的前B原、前B原细胞、前B细胞、未成熟B细胞和成熟再循环B细胞所示(图1E) ●●●●。同样,B血统没有影响第16页INK4a公司在幼年小鼠的外周B细胞亚群中观察到缺失,包括成熟B细胞、过渡T1细胞、T2细胞和脾脏边缘区B细胞(图1F) ●●●●。与缺乏p16一致INK4a公司这些数据表明第16页INK4a公司不影响年轻成年小鼠的T和B淋巴细胞发育。

的作用第16页INK4a公司胸腺退化与胸腺细胞发育

胸腺退化是人类和小鼠常见的年龄相关表型,胸腺T细胞输出减少被认为是人类衰老时免疫力受损的主要原因。探讨T血统特异性p16的作用INK4a公司在胸腺退化中表达,我们检测了胸腺大小Lck-Cre第16页升/升Lck-Cre第16页+/+老鼠。Lck-Cre公司小鼠一生在T细胞祖细胞中表达Cre重组酶。尽管该菌株的胸腺退化没有增加,但该酶在其他组织中产生了低水平的DNA损伤,因此其表达可能影响T细胞老化。T系胸腺退化速度显著减慢第16页INK4a公司切除,证明随着年龄增长胸腺大小和胸腺细胞数量的下降得到了部分缓解,尤其是在40周龄和60周龄的动物中(图2A-B)。相反,在Lck-Cre第16页升/升老鼠。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850002.jpg

T血统特异性缺失第16页INK4a公司减缓胸腺退化并减少与年龄相关的DN1至DN3阻断。(A) 胸腺退化伴衰老的部分挽救Lck-Cre第16页升/升小鼠与Lck-Cre第16页+/+小鼠(每组5只)。显示了来自指定年龄和基因型小鼠的胸腺和脾脏的代表性图像。(B) T细胞特异性缺失第16页INK4a公司与年龄相关性胸腺细胞总数下降的部分但显著缓解相关(每组5个)。显示了指定年龄小鼠的胸腺细胞和脾细胞总数。(C) DN胸腺细胞阶段的年龄相关阻滞被T系特异性缺失第16页INK4a公司(D)林的量化CD4细胞CD8(CD8)(DN)显示年龄段的胸腺细胞分数,如面板C所示;n=每组5只小鼠。(E) T血统特异性缺失第16页INK4a公司减弱年龄相关的DN1-DN3阻滞。林代表性流量分析CD4细胞CD8(CD8)DN1(CD44+CD25型)和DN3(CD44CD25型+)显示了指定年龄和基因型小鼠的组分。(F) 面板E中确定的DN1与DN3电池(DN1/DN3)的绝对数量之比显示在指定的年龄段。另请参见补充图2;n=每组5只小鼠。误差条表示SEM*P(P)< .05, **P(P)< .01, ***P(P)< .001.

根据以往的研究,35我们注意到,随着年龄的增长,血统阴性的DN胸腺细胞会积累(图2C-D)提示胸腺老化导致部分DN阻滞。这种与年龄相关的胸腺生成障碍被以下因素显著挽救:第16页INK4a公司删除(图2C-D)。根据CD44和CD25的表达,阴性DN细胞又可分为DN1、DN2、DN3和DN4细胞,我们进一步分析了p16的作用INK4a公司老化过程中的DN子部分。与他人的工作一致,35——37我们观察到随着年龄的增长,从DN1到DN3阶段出现了显著的发育阻滞Lck-Cre第16页+/+老鼠。该区块在年显著减少Lck-Cre第16页升/升小鼠(图2E-F;补充图2),表明该区块部分反映了第16页INK4a公司在老化的DN1细胞中。总之,这些数据表明,随着年龄增长,胸腺退化和胸腺细胞输出量减少是由于p16的淋巴细胞特异性表达所致INK4a公司在DN T细胞祖细胞中,至少在持续Cre表达的环境中。

删除第16页INK4a公司在T血统中

我们接下来决定是否第16页INK4a公司除了胸腺退化和胸腺细胞输出外,在免疫衰老表型中起着内在作用。根据之前对小鼠和人类的研究,38——40我们发现衰老与CD4和CD4中原始T细胞的减少有关+和CD8+隔间(CD4+CD25型CD44细胞或CD8+CD112型CD44细胞)和增加记忆T细胞(CD4+CD25型CD44细胞+或CD8+CD112型CD44细胞+;图3A) 随着年龄的增长,导致记忆/原始T细胞比率增加(图3B) ●●●●。T血统特异性缺失第16页INK4a公司然而,在CD4细胞和CD4细胞中,与100周龄前幼稚T细胞生成的挽救有关+和CD8+隔间(图3A) 在老龄小鼠中保持“年轻”记忆/幼稚比率(图3A-B)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850003.jpg

T细胞特异性缺失降低外周T细胞免疫衰老表型第16页INK4a公司.(A) CD4的代表性流动分析+(顶部)和CD8+(底部)显示T细胞特异性影响的脾细胞第16页INK4a公司年龄相关的记忆变化和原始T细胞分数的缺失。记忆和原始T细胞的识别如图1C.(B)A组数据的量化,显示T细胞特异性的影响第16页INK4a公司CD4中记忆与原始T细胞比率随年龄增长而缺失+和CD8+隔间;n=每组5只小鼠。(C) 显示衰老和T细胞特异性影响的代表性流动分析第16页INK4a公司通过Ki67在非活化的(CD25)中的表达测量的对稳态增殖的缺失)CD4细胞+或CD8+来自指定年龄和基因型小鼠的T细胞。(D) Ki67表达的量化如面板C所示,每组4只小鼠。误差条表示SEM*P(P)< .05, **P(P)< .01, ***P(P)<.001。

通过使用佛波醇12-肉豆蔻酸13-醋酸盐+离子霉素对T细胞受体(TCR)发出信号后诱导CD25表达来测量体外培养时,衰老也与激活反应增加有关(补充图3A-B)。这一发现可能反映了老年小鼠的记忆力/幼稚率增加,因为记忆细胞能够比幼稚T细胞更快、更持久地激活TCR信号。41与老年人记忆力/天真比率降低的发现一致Lck-Cre第16页升/升动物,我们还观察到T细胞特异性p16对这种年龄相关的过度激活表型的拯救作用INK4a公司删除(补充图3A-B)。因此,令人惊讶的是,抗增殖蛋白的表达,第16页INK4a公司似乎通过抑制幼稚T细胞的产生,导致了晚年更活跃的记忆T细胞的年龄相关扩张。总之,这些结果表明,随着老化,p16INK4a公司这种表达会破坏原始T细胞的产生,从而间接促进记忆T细胞的扩增。

给出p16的表达式INK4a公司通过抑制增殖性细胞周期素依赖性激酶来限制细胞周期进展,我们接下来确定了第16页INK4a公司年轻和老年小鼠体内稳态T细胞增殖缺失。增殖标记物(Ki67)在非活化(CD25)中的表达)CD4和CD4中的脾T细胞急剧减少+和CD8+老化的隔间,在T细胞特异性第16页INK4a公司删除(图3C-D)。通过测量体内BrdU掺入量,我们进一步研究了记忆和原始T细胞组分随年龄增长的稳态增殖。有趣的是,尽管BrdU在非活化记忆T细胞(CD4)中的掺入+CD44细胞+CD25型)随着年龄增长,未激活的原始T细胞(CD4)减少+CD44细胞CD25型)随着年龄的增长,BrdU的掺入量略有增加(图4A左和图4B) ●●●●。这一观察结果与以前的研究一致42——44并表明,老年小鼠的原始T细胞可能表现出增加的稳态增殖,以补偿胸腺细胞输出量随年龄增长而显著下降。T血统缺失第16页INK4a公司几乎完全修复了记忆性T细胞中与年龄相关的稳态增殖缺陷,但对100周龄小鼠原始T细胞中BrdU掺入量的增加没有显著影响(图4A左和和4B)。4B) ●●●●。这些数据表明第16页INK4a公司通过减少记忆T细胞的稳态增殖来促进免疫衰老。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850004.jpg

影响第16页INK4a公司记忆和原始T细胞稳态或抗原特异性增殖中年龄相关变化的缺失。(A) 在指定年龄和基因型的小鼠中,通过BrdU掺入记忆或未经NP免疫(稳态,−)或未经NP免疫(抗原特异性,+)的幼稚T细胞来测量体内增殖的代表性流分析。对于NP(+)结果,记忆或原始T细胞中的BrdU掺入是在与硝基苯乙酰基-胆红素γ-球蛋白重新沟通后确定的,如“通过T系缺失增强老年小鼠的免疫功能第16页INK4a公司“(B)定量BrdU在记忆中的结合(底部)或幼稚(顶部),如面板A所示,有无NP免疫;n=4-5只/组。p16的T细胞特异性失活INK4a公司与挽救记忆和原始T细胞中抗原特异性增殖和记忆细胞中稳态增殖的年龄相关性下降有关。记忆和原始T细胞的识别如图1C.(C)100周龄小鼠中显示T系特异性p16影响的典型流分析INK4a公司通过抗原诱导的B细胞增殖(BrdU掺入)测定T细胞辅助功能的缺失。(D) C组测定的抗原诱导B细胞增殖的量化;n=每组4只小鼠。误差条表示SEM*P(P)< .05, **P(P)< .01, ***P(P)< .001.

老年小鼠的免疫功能通过T系缺失增强第16页INK4a公司

抗原特异性T细胞和B细胞免疫反应在老龄小鼠中受到损害,伴随着恶性肿瘤免疫监视和病原体清除的减少。调查是否第16页INK4a公司在这些免疫衰老表型中起作用的是硝基苯乙酰基-壳聚糖γ球蛋白,它是一种半抗原-蛋白质结合物,用于免疫和检测抗原特异性免疫反应。NP免疫诱导T依赖性体液反应,涉及CD4和CD4+T辅助功能和B细胞抗体生成。在第1天免疫小鼠并在第28天再次免疫,然后在第33天通过体内抗原特异性T细胞和B细胞增殖(BrdU掺入)检查主要和记忆抗原特异性反应。

在年轻小鼠中,NP免疫诱导了显著的幼稚和记忆性T细胞增殖,这种增殖反应不受T特异性的显著影响第16页INK4a公司删除(图4A-B)。然而,100周龄动物的NP免疫在记忆细胞中诱导了非常温和的增殖反应,在原始T细胞中没有观察到明显的反应。这种对NP增殖反应的减少在记忆和幼年小鼠T细胞组分中几乎完全被挽救Lck-Cre第16页升/升小鼠(图4A-B)。此外,NP再传播后体内B细胞增殖(取决于T细胞辅助功能)在老年人中也显著增加Lck-Cre第16页升/升小鼠(图4C-D)。这些数据证明p16INK4a公司表达在抗原特异性T细胞免疫应答与年龄相关的功能下降中起着重要作用。

T谱系-特异性缺失第16页INK4a公司与肿瘤增加无关

与B细胞特异性失活的研究相反(参见“B细胞特异第16页INK4a公司失活加速淋巴肿瘤的发生”),失活第16页INK4a公司在100周龄之前,T细胞与总死亡率或肿瘤相关死亡率的增加无关(图5A-B)。虽然在Lck Cre第16页升/升小鼠与对照动物的比较(Lck-Cre第16页+/+CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+),T血统缺失队列中的死亡人数太少,无法评估Lck-Cre第16页升/升小鼠非淋巴样变性、自身免疫和整体寿命。与B血统形成对比第16页INK4a公司删除、停用第16页INK4a公司100周龄以下小鼠T细胞中的CD4、CD8、CD25、CD44和CD112分布与异常淋巴细胞组分的存在无关图2C和和3A)。A) ●●●●。同样,T细胞特异性第16页INK4a公司失活并没有导致T细胞增殖增加,超出在幼年动物中观察到的水平(图3C-D和和4A-B)。4A-B)。总的来说,这些数据表明Lck-Cre第16页升/升小鼠,表明p16INK4a公司在100周龄以下的实验饲养动物中,对T系肿瘤抑制没有贡献。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850005.jpg

p16的Kaplan-Meier生存曲线INK4a公司B或T淋巴细胞缺失。(A) 总生存率Lck-Cre第16页+/+Lck-Cre第16页升/升老鼠。(B) 无瘤生存期CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升老鼠。

B谱系-特异性缺失第16页INK4a公司不会影响“中年”小鼠的免疫衰老

我们检测了CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升老鼠。测试了多种B细胞功能测试,包括稳态增殖(图6A-D)、体外B细胞受体依赖性B细胞激活(补充图4A)和抗原特异性B细胞反应,如再传播的增殖反应(图6C-D)和生发中心形成(补充图4B-C)。与T细胞的结果相反Lck Cre第16页升/升小鼠,删除第16页INK4a公司在47周前分析的小鼠中,B系细胞中的B细胞表型没有明显挽救任何与年龄相关的B细胞(图6A-D,补充图4)。这些数据表明p16INK4a公司表达并不是47周龄以下动物B细胞功能障碍的主要原因。我们可能已经观察到了第16页INK4a公司老年小鼠B细胞老化缺失,但B细胞瘤增加CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升从一岁开始的动物排除了这种分析。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850006.jpg

B血统特异性的影响第16页墨水4免疫老化缺失。(A) 静止B细胞(CD40)中Ki-67表达测定的B细胞稳态增殖的代表性流式分析)来自具有指定年龄和基因型的小鼠脾脏。(B) 如面板A.ns所示,K-i67表达的量化表明不显著**P(P)< .01. (C) 显示B谱系影响的代表性流分析第16页INK4a公司抗原特异性B细胞增殖缺失。用硝基苯乙酰基免疫小鼠并重新接种(见“NP免疫”),并在指定年龄和基因型的小鼠中测量脾脏B细胞中BrdU的掺入。(D) 如面板C所示,BrdU掺入量的量化;n=每组4只小鼠,P(P)值如所示。

B细胞-特定第16页INK4a公司失活加速淋巴肿瘤的发生

相比之下Lck-Cre公司队列,切除第16页INK4a公司在B细胞祖细胞中导致总体生存率和无瘤生存率显著下降(图5B) ●●●●。小圆细胞肿瘤首次在一岁以下的小鼠中观察到CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升小鼠在90周龄时死于肿瘤性疾病。高百分比CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升动物表现出中枢神经系统受累的症状。对有中枢神经系统症状的小鼠进行组织病理学检查,发现脊椎和/或大脑软脑膜区域肿瘤,下方的中枢神经系统实质受到压迫(补充图5A)。尽管位于脑膜,免疫组化显示肿瘤细胞对CD45白细胞共同抗原呈阳性,对神经脑膜标记物S100呈阴性(补充图5A),从而确立了造血起源。所有分析的肿瘤都局部表达一种或多种B淋巴细胞标志物CD93、CD45R/B220和/或免疫球蛋白(补充图5A),与B细胞起源一致。B淋巴细胞标记物的免疫组织化学染色通常在肿瘤的外围区域最强烈,表明分化程度不同。这些数据表明第16页INK4a公司缺失导致B系肿瘤的高度浸润性发展。

肿瘤性疾病CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升在某些情况下,通过外周血流式细胞术分析(如补充图5B)或正电子发射断层扫描/计算机断层扫描(PET/CT;图7A、 补充图6)和磁共振成像(MRI;图7B) ●●●●。在所有患者中都发现了异常的B血统人群CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升在52周龄或更大年龄时对小鼠(n=5)进行分析,但不在同窝小鼠中CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+动物(补充图5B)。放射成像显示肿瘤累及脊髓、小脑、淋巴结和脾脏。一只荷瘤小鼠的连续PET/CT显示肿瘤在4周内快速生长(补充图6)。虽然肿瘤的高频率会导致中枢神经系统症状,如癫痫发作和后肢麻痹,但这似乎代表肿瘤从脊椎或颅骨骨髓直接扩散,而不是软脑膜向性。在一些病例中,我们发现颅骨或脊柱的骨髓中有肿瘤,肿瘤连续多处延伸到附近的脑膜、脑实质和脊髓(图7B-C)。总的来说,这些肿瘤的形态学表现、免疫表型和高度系统性最容易让人联想到系统性人类B细胞ALL,这是一种高发病率的疾病第16页INK4a公司灭活。24

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh89991167850007.jpg

B血统第16页INK4a公司缺失与高级别B细胞肿瘤相关。(A) 老年人典型的PET/CT融合图像CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升小鼠识别肿瘤18脑(BR)、脊柱(SP)、脾脏(SPL)和淋巴结(LN)中F-FDG的摄取。背景摄入量在心脏(HT)、膀胱(BDR)、肾脏(KN)和逆行腺(RG)中观察到。(顶部)带有红线的矢状图,指示相关横向图像的水平(底部)。(B) 一名代表的T2加权MRICD19编号Cre公司/+ 第16页升/升小鼠表示脊髓有病变,组织病理学分析证实为淋巴瘤从骨髓侵犯脊髓。原始放大倍数×20。(C) 老年人大脑(顶部)或脊髓(底部)中枢神经系统淋巴瘤的苏木精和伊红染色图像CD19编号Cre公司/+ 第16页升/升老鼠。来自室友的对比图像CD19编号Cre公司/+ 第16页+/+图示为小鼠(左侧)。原始放大倍数×40。

讨论

目前的工作表明,p16INK4a公司细胞周期抑制剂对幼年动物的淋巴发育没有帮助,但在老年小鼠中,在B细胞肿瘤抑制和T细胞免疫老化中起着显著作用。这些结果为淋巴组织中的拮抗性多效性提供了直接的实验支持。尽管先前主要依赖于缺乏生殖系小鼠的实验的作者提出了肿瘤抑制机制在不同组织中的抗癌性和年龄增长中的作用,但在特定组织中还没有以细胞自主的方式观察到这种癌变权衡。在这里,我们表明,单个蛋白的表达对一岁以下的小鼠非常有益(预防B细胞祖细胞的癌症),对老年小鼠有害(促进T细胞的免疫衰老)。

第16页INK4a公司和T细胞老化

我们认为对我们的数据最简约的解释是p16INK4a公司随着年龄增长,表达会导致2个或更多不同的T细胞亚群中的增殖性妥协。我们在老龄小鼠的DN1-3期观察到胸腺生成明显受阻,该受阻主要通过删除第16页INK4a公司(图2),提示p16的重要作用INK4a公司在胸腺细胞发育过程中调节早期DN细胞的细胞周期穿越。胸腺生成缺陷可能反过来导致了与年龄相关的原始T细胞数量显著下降,而这种下降几乎完全被第16页INK4a公司缺失,即使在2岁的动物中(图3A-B)。重要的是,在检查的最老(100周)小鼠中第16页INK4a公司只产生了胸腺退化的临界减少(图2B) 和DN1-3堵塞(图2E-F)。这一观察结果表明,DN1-3阻断可能不是导致胸腺退化的唯一T前体因子。其他因素,如HSC的髓样细胞扭曲和胸腺的普通淋巴祖细胞输入减少,可能表现出更显著的影响,尤其是在这些年龄较大的小鼠中。因为Lck-Cre公司等位基因不切除第16页INK4a公司在HSC或普通淋巴祖细胞中,我们的实验方法尚不清楚随着年龄增长对胸腺退化的其他影响是否依赖于p16INK4a公司表达式。

我们还注意到外周T细胞中年龄相关表型的挽救,特别是原始T细胞中抗原诱导增殖的增殖下降的挽救,以及记忆细胞的稳态和抗原诱导增殖(图4A-B)。这种T血统特异性失活第16页INK4a公司在老年小鼠的功能测试中,包括抗原诱导的增殖,与维持更“年轻”的表型有关(图4A-B),T-helper函数(图4C-D)和体外激活对TCR参与的反应(补充图3)。因此,我们的数据表明,生理学p16INK4a公司随着年龄的增长,表达是观察到的免疫功能下降的主要原因。

从我们的数据中还不清楚p16是否INK4a公司通过在多个T谱系亚群中独立引起永久性生长停滞(如“细胞衰老”),或通过促进T谱系细胞的一般“低增殖”状态,促进这些不同T细胞组分的衰老,这种状态可以在T细胞发育过程中从祖细胞传给子代。我们认为这是一个尚未解决的重要问题,因为它对p16的可逆性有影响INK4a公司-诱导淋巴组织老化。

虽然目前的研究只关注小鼠T细胞老化,但我们相信现有数据也支持p16表达的可能性INK4a公司导致人类T细胞老化。与年龄相关的指数增长第16页INK4a公司人类循环T细胞的表达与啮齿类动物随着年龄增长而增加的表达一样大或更多,17,23人类T细胞似乎依赖于p16抑制的相同增殖周期依赖性激酶(CDK4和CDK6)进行细胞复制INK4a公司在这两个物种中。根据这些先前的发现,目前的小鼠数据表明p16INK4a公司可能在人类T细胞衰老中发挥重要作用,尽管需要对人类T细胞进行具体的功能研究来验证这一假设。

第16页INK4a公司以及内在衰老与外在衰老

尽管p16INK4a公司表达通常被认为是可遗传的内在细胞事件的结果,我们相信我们的数据也与衰老的外在因素一致。多种细胞外事件可以快速调节p16INK4a公司体外和体内表达,包括暴露于DNA损伤剂、氧化应激、次优培养条件、WNT信号激活剂和各种有丝分裂原4)。此外,p16的激活INK4a公司据报道,在老年小鼠的肌肉干细胞中调节“生态位”老化信号。45在淋巴老化的情况下,大量数据表明胸腺微环境中的年龄相关缺陷在胸腺随年龄增长的输出中起着关键作用。46,47因此,T血统特异性对该表型的显著拯救第16页INK4a公司切除手术可能出乎意料(图2A-B),尽管这些观察结果与之前的报告一致。48然而,值得注意的是,尽管目前的数据证实了p16的表达INK4a公司在T细胞祖细胞中,随着年龄的增长,胸腺退化,我们的结果并不表明年龄的什么特征导致p16INK4a公司此上下文中的表达式。p16的表达INK4a公司早期胸腺祖细胞可能反映了对与年龄相关的应激的反应,这种应激是细胞内的(如DNA损伤)或细胞外的(如胸腺环境的退化)。我们相信在这方面一个有趣的未来问题是,旧胸腺是否可以促进过继转移p16的衰老INK4a公司-来自幼年小鼠的缺乏T细胞祖细胞。

第16页INK4a公司和淋巴癌

鉴于p16的高流行率INK4a公司人类T细胞祖细胞肿瘤(如T细胞ALL)的缺失,不含p16的小鼠肿瘤发生率增加INK4a公司在T细胞谱系中是出乎意料的。停用第16页INK4a公司在T-ALL中,几乎总是发生在体细胞缺失的情况下,并且这种损伤总是针对第15页墨水4b农业研究基金也。因此,p16可能INK4a公司在祖细胞T细胞肿瘤抑制中几乎没有作用。然而,缺乏T细胞恶性肿瘤Lck-Cre第16页升/升小鼠也可以反映实验条件。例如,慢性免疫挑战和病毒感染与淋巴瘤形成和p16缺失有关INK4a公司在实验室条件下通常不会遇到的这种T细胞免疫挑战中,这种表达可能致癌。同样,尽管在Lck-Cre第16页升/升衰老小鼠数量和增殖能力的增加Lck-Cre第16页升/升正如在第18页INK4c(墨水4c)没有动物。49鉴于在Lck-Cre第16页升/升这似乎是一个很好的模型来测试增强的T细胞功能对肿瘤发生、自身免疫和寿命的影响,这些都是正在进行的研究。

虽然T细胞没有p16INK4a公司在这个模型中,似乎不容易发生肿瘤,而缺乏p16的B细胞则相反INK4a公司这些结果与Signer等人的数据一致,他们证明了p16的显著和年龄相关的作用INK4a公司B细胞祖细胞肿瘤。29从我们的研究中还不清楚p16是否INK4a公司表达在B细胞衰老中起作用。p16缺乏作用INK4a公司47周龄“中年”小鼠B细胞衰老失活可能是因为p16的低表达INK4a公司外周血B细胞与T细胞的比较(图1B和Liu等人17)或者因为47周的老化不足以观察到该小鼠模型中的功能性B细胞缺陷(图6; 补充图4)。

癌症与衰老

当考虑到以前的研究时,我们认为目前的工作表明,尽管p16INK4a公司肿瘤抑制机制在全生物体水平上确实表现出拮抗多效性,但在组织水平上不一定如此。尽管p16的作用INK4a公司关于B细胞衰老的问题尚不清楚,最近的研究表明,黑素细胞是T细胞中观察到的情况的一个明显的反例。停用第16页INK4a公司在小鼠中,黑素细胞具有强烈的肿瘤促进作用30但似乎在促进黑素细胞老化方面几乎没有任何作用(Inomata等人50和数据未显示)。因此,我们认为这些研究总体上支持p16表达的细胞隔室的存在INK4a公司主要调节:(1)衰老而非癌症(如T细胞),(2)癌症但非衰老(如黑素细胞和可能的B淋巴细胞),或(3)癌症和衰老(如HSC、神经干/祖细胞、胰腺β细胞和可能B淋巴细胞)。

总之,这项工作直接证明了p16INK4a公司抑癌剂对预防B细胞肿瘤有利,但对促进T细胞衰老不利。我们相信,这项研究为那些试图通过全球削弱肿瘤抑制功能来改善衰老的人提供了一个警示。然而,令人惊讶的是,这项工作还提供了组织亚群T细胞的第一个例子,其中p16INK4a公司表达似乎在促进衰老方面发挥了强大的作用,但在抑制肿瘤方面的作用非常有限。同样,考虑到人类p16的已知变异性INK4a公司这些结果表明,人类免疫衰老表型和淋巴癌易感性的异质性具有遗传基础。

补充材料

补充数字:

致谢

我们感谢Ken Dorshkind、Alex Seibold和Christin Burd对手稿的批判性阅读;试剂:Yi Zhang;以及北卡罗来纳大学莱恩伯格综合癌症中心老鼠一期单位的科学家,协助处理动物。我们感谢UNC-CH生物医学研究成像中心小动物成像设施在PET和MRI方面提供的帮助,感谢UNC-CH胃肠组织学核心设施在免疫组织化学方面提供的协助,以及UNC-CH流式细胞术核心设施。

这项工作得到了Burroughs Wellcome基金会、美国老龄研究联合会和美国国立卫生研究院的资助(CA016086、CA009156、AG024379、F30AG034806和T32GM008719)。

脚注

内部血液本文的分析出现在这个问题的前面。

本文的在线版本包含数据补充。

这篇文章的出版费用部分由页面费支付。因此,仅为了表明这一事实,根据《美国法典》第18卷第1734节的规定,本文特此标记为“广告”。

作者

贡献:Y.L、S.M.J.、J.K.和N.E.S.设计并执行了研究和分析数据;H.Y.、A.B.R.和Y.F.进行了额外的数据分析;所有作者都起草了手稿。

利益冲突披露:作者声明没有相互竞争的财务利益。

通信:Norman E.Sharpless,Lineberger综合癌症中心,CB#7295,北卡罗来纳大学医学院医学和遗传学系,北卡罗莱纳州教堂山,邮编:27599-7295;电子邮件:ude.cnu.dem@sen.

参考文献

1威廉姆斯GC。多效性、自然选择和衰老的进化。进化。1957;11:398–411. [谷歌学者]
2坎皮西·J·癌症与衰老:敌对的恶魔?Nat Rev癌症。2003;(5):339–349.[公共医学][谷歌学者]
三。Collado M,Blasco MA,Serrano M。癌症和衰老中的细胞衰老。单元格。2007;130(2):223–233.[公共医学][谷歌学者]
4夏普莱斯东北,德皮尼奥RA。干细胞是如何老化的,为什么这会使我们变老。国家标准修订版。2007;8(9) :703–713。[公共医学][谷歌学者]
5Janzen V,Forkert R,Fleming HE,等。细胞周期依赖性激酶抑制剂p16INK4a修饰的干细胞老化。自然。2006;443(7110):421–426.[公共医学][谷歌学者]
6Krishnamurthy J、Ramsey MR、Ligon KL等。p16INK4a诱导胰岛再生潜能的年龄依赖性下降。自然。2006;443(7110):453–457.[公共医学][谷歌学者]
7Chen H,Gu X,Su IH,等。Polycomb蛋白Ezh2调节糖尿病患者胰腺β细胞Ink4a/Arf的表达和再生。基因发育。2009;23(8):975–985. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
8Molofsky AV、Slutsky SG、Joseph NM等。p16INK4a表达增加会降低衰老过程中的前脑祖细胞和神经发生。自然。2006;443(7110):448–452. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
9Baker DJ、Perez-Terzic C、Jin F等。p16Ink4a和p19Arf在BubR1不足引起的衰老和衰老中的对立作用。自然细胞生物学。2008;10(7):825–836. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Emanuele E,Fontana JM,Minoretti P,Geroldi D.染色体9p21之间遗传关联的初步证据。3和人类寿命。复兴研究。2010年;13(1):23–26.[公共医学][谷歌学者]
11Turnbull C、Ahmed S、Morrison J等。全基因组关联研究确定了五个新的乳腺癌易感基因座。自然遗传学。2010年;42(6):504–507. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
12Bishop DT、Demenais F、Iles MM等。全基因组关联研究确定了三个与黑色素瘤风险相关的基因座。自然遗传学。2009;41(8):920–925. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
13Wrensch M、Jenkins RB、Chang JS等。CDKN2B和RTEL1区域的变异与高度胶质瘤易感性相关。自然遗传学。2009;41(8):905–908. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Sherborne AL、Hosking FJ、Prasad RB等,第9页CDKN2A的变化。3影响儿童急性淋巴细胞白血病风险。自然遗传学。2010年;42(6):492–494. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
15Liu Y,Sanoff HK,Cho H,等。INK4/ARF转录表达与动脉粥样硬化相关的染色体9p21变异相关。公共科学图书馆一号。2009;4(4) :e5027。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Cunnington MS、Santibanez Koref M、Mayosi BM、Burn J、Keavney B。与多种疾病表型相关的染色体9p21 SNP与ANRIL表达相关。公共科学图书馆-遗传学。2010年;6(4) :e1000899。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Liu Y,Sanoff HK,Cho H,等。外周血T细胞中p16(INK4a)的表达是人类衰老的生物标志物。老化细胞。2009;8(4):439–448. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
18Lagresle C、Gardie B、Eyquem S等。p16(INK4a)细胞周期素依赖性激酶抑制剂的转基因表达导致细胞凋亡增强和CD4分化阻滞CD8(CD8)未成熟胸腺细胞。免疫学杂志。2002;168(5):2325–2331.[公共医学][谷歌学者]
19Erickson S、Sangfelt O、Heyman M、Castro J、Einhorn S、Grander D。Ink4蛋白p16和p15在T淋巴细胞衰老中的作用。致癌物。1998;17(5):595–602.[公共医学][谷歌学者]
20Migliaccio M,Raj K,Menzel O,Rufer N。限制人CD8体外增殖潜能的机制+T淋巴细胞。免疫学杂志。2005;174(6) :3335–3343。[公共医学][谷歌学者]
21Sharpless NE、Bardeesy N、Lee KH等。p16Ink4a的丢失和p19Arf的保留使小鼠容易发生肿瘤。自然。2001;413(6851):86–91.[公共医学][谷歌学者]
22Bianchi T、Rufer N、MacDonald HR、Migliaccio M。肿瘤抑制因子p16(Ink4a)调节T淋巴细胞存活。致癌物。2006;25(29):4110–4115.[公共医学][谷歌学者]
23Lemster BH、Michel JJ、Montag DT等。随着年龄增长,CD56和TCR非依赖性T细胞激活的诱导。免疫学杂志。2008;180(3):1979–1990.[公共医学][谷歌学者]
24Sulong S,Moorman AV,Irving JA等。对儿童急性淋巴细胞白血病CDKN2A基因的综合分析揭示了基因组缺失、拷贝数中性杂合性缺失以及与特定细胞遗传学亚组的相关性。鲜血。2009;113(1):100–107.[公共医学][谷歌学者]
25Williams RT、Roussel MF、Sherr CJ。Arf基因缺失增强了Bcr-Abl诱导的急性淋巴细胞白血病小鼠模型的致癌性并限制了伊马替尼的反应。美国国家科学院院刊。2006;103(17):6688–6693. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
26Kohno T、Yamada Y、Tawara M等。p14ARF失活是成人T细胞白血病/淋巴瘤进展的关键事件。白血病研究。2007;31(12):1625–1632.[公共医学][谷歌学者]
27Bies J、Sramko M、Fares J等。p15Ink4b的髓系特异性失活导致单核细胞增多和易患髓系白血病。鲜血。2010年;116(6):979–987. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
28Wolff L、Garin MT、Koller R等。小鼠髓系白血病中Ink4b基因座的超甲基化和p15(Ink4b)缺陷小鼠对白血病的易感性增加。致癌物。2003;22(58):9265–9274.[公共医学][谷歌学者]
29Signer RA、Montecino-Rodriguez E、Witte ON、Dorshkind K。淋巴祖细胞的衰老和抗癌性是p16Ink4a和Arf赋予的相关过程。基因发育。2008;22(22):3115–3120. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
30Monahan KB、Rozenberg GI、Krishnamurthy J等。体细胞p16INK4a缺失加速黑色素瘤形成。致癌物。2010年;29(43):5809–5817. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
31Takahama Y、Ohishi K、Tokoro Y等。由于Pig-a基因的T细胞特异性破坏而导致缺乏糖基磷脂酰肌醇锚定蛋白时T细胞的功能能力。欧洲免疫学杂志。1998;28(7):2159–2166.[公共医学][谷歌学者]
32Rickert RC、Roes J、Rajewsky K.B淋巴细胞特异性、Cre介导的小鼠突变。核酸研究。1997;25(6):1317–1318. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
33Ramsey MR、Krishnamurthy J、Pei XH等。p16Ink4a的表达可补偿细胞周期依赖性激酶4/6依赖性肿瘤和组织中p18Ink4c的丢失。癌症研究。2007;67(10):4732–4741.[公共医学][谷歌学者]
34Krinmpfort P、Ijpenberg A、Song JY等。p15Ink4b是缺乏p16Ink4a的关键肿瘤抑制因子。自然。2007;448(7156):943–946.[公共医学][谷歌学者]
35T淋巴细胞分化模式在胸腺退化过程中发生改变。机械老化发展。1995;82(2–3):155–170.[公共医学][谷歌学者]
36Aspinal R.小鼠年龄相关胸腺萎缩是由于胸腺内T细胞发育过程中TCR重排的缺陷所致。免疫学杂志。1997;158(7):3037–3045.[公共医学][谷歌学者]
37T细胞发育的早期步骤受到衰老的影响。细胞免疫学。1997;178(2):117–123.[公共医学][谷歌学者]
38Pirruccello SJ、Collins M、Wilson JE、Mcmanus BM。健康儿童幼稚和记忆性Cd4+T细胞的年龄相关变化。临床免疫免疫学。1989;52(2) :341–345。[公共医学][谷歌学者]
39De Paoli P,Battistin S,Santini GF。人淋巴细胞亚群中Cd4 Cd45r(抑制物诱导物)种群的年龄相关变化。临床免疫病理学。1988;48(3):290–296.[公共医学][谷歌学者]
40Ernst DN、Hobbs MV、Torbett BE等。年轻和老年小鼠的Cd45rb、Pgp-1和3g11膜抗原的表达谱以及脾脏Cd4+T细胞分泌淋巴因子的模式的差异。免疫学杂志。1990;145(5):1295–1302.[公共医学][谷歌学者]
41Cho BK、Wang CY、Sugawa S、Eisen HN、Chen JZ。记忆和初始CD8 T细胞之间的功能差异。美国国家科学院院刊。1999;96(6):2976–2981. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
42Cicin-Sain L、Messaoudi I、Park B等人。幼稚T细胞周转率的显著增加与老年灵长类幼稚T细胞的丢失有关。美国国家科学院院刊。2007;104(50):19960–19965. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
43Ahmed M、Lanzer KG、Yager EJ、Adams PS、Johnson LL、Blackman MA。老龄小鼠幼稚CD8 T细胞库中的克隆扩增和受体多样性损失。免疫学杂志。2009;182(2):784–792. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
44Naylor K,Li GJ,Vallejo AN,等。年龄对T细胞生成和TCR多样性的影响。免疫学杂志。2005;174(11):7446–7452.[公共医学][谷歌学者]
45Carlson ME、Hsu M、Conboy IM。pSmad3和Notch之间的失衡在老肌肉干细胞中诱导CDK抑制剂。自然。2008;454(7203):528–532. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
46Aspinal R,Andrew D.小鼠胸腺萎缩是胸腺环境的一个可解决问题。疫苗。2000;18(16):1629–1637.[公共医学][谷歌学者]
47Mackall CL、Punt JA、Morgan P、Farr AG、Gress RE。年轻/老年嵌合体的胸腺功能:尽管存在不可逆的年龄相关性胸腺退化,但胸腺T细胞仍具有大量再生能力。欧洲免疫学杂志。1998;28(6):1886–1893.[公共医学][谷歌学者]
48Min H,Montecino-Rodriguez E,Dorshkind K。胸腺内T细胞祖细胞的发育潜能随年龄增长而降低。免疫学杂志。2004;173(1):245–250.[公共医学][谷歌学者]
49Bai F、Pei XH、Pandolfi PP、Xiong Y.p18(Ink4c)和Pten限制了细胞生长和细胞周期控制之间的正调控环。摩尔细胞生物学。2006;26(12):4564–4576. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
50Inomata K、Aoto T、Binh NT等。基因毒性应激通过触发黑素细胞干细胞的分化来消除黑素细胞的更新。单元格。2009;137(6):1088–1099.[公共医学][谷歌学者]

来自的文章血液由以下人员提供美国血液学会