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.1997年8月1日;17(15):5678-86.
doi:10.1523/JNEUROSCI.17-15-05678.1997。

载脂蛋白E 22kDa凝血酶裂解片段及相关合成肽的神经毒性是受体介导的

附属公司

载脂蛋白E 22kDa凝血酶裂解片段及相关合成肽的神经毒性是受体介导的

M托拉尔等。 神经科学. .

摘要

强效神经毒性与载脂蛋白E(apoE)相关的合成肽和载脂蛋白E的22kDa N-末端凝血酶切割片段有关。此外,22kDa片段的E4亚型的毒性明显高于E3亚型衍生的相同片段,这表明载脂蛋白E相关神经毒性可能在阿尔茨海默病的病理生理学中发挥直接作用。在本研究中,通过使用多种阻断载脂蛋白E的肝素结合和受体结合活性的药物,评估了细胞表面受体在介导神经毒性中的潜在作用。apoE肽和apoE片段的有效神经毒性抑制剂包括肝素、硫酸肝素、氯酸钠和肝素酶、低密度脂蛋白(LDL)受体相关蛋白受体相关蛋白和多克隆抗LDL受体相关蛋白抗体。这些结果表明,载脂蛋白E和相关肽的22kDa凝血酶裂解片段的神经毒性是受体介导的,最可能的候选受体是硫酸乙酰肝素蛋白聚糖-LDL受体相关蛋白复合物。

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图1。
图1。
肽E毒性的阻断(141–149)2抗LRP抗体。相比较法显示组织培养中分离的鸡胚交感神经元(A类,C类,E类)或荧光显微镜(B类,D类,F类)用活性染料染色后。培养物在暴露于溶媒溶液20小时后拍照(A类,B类), 4 μE类(141–149)2(C类,D类)或8μ30μg/ml多克隆抗LRP抗体存在下的肽(E类,F类). 载体治疗未导致细胞死亡。然而,暴露于肽会导致细胞体肿胀(C类,箭头)、神经突串珠(C类,箭头)和广泛的细胞死亡(D类). 此时存活下来的少数细胞似乎肿胀了(D类,箭头). 抗LRP抗体保护细胞免受肽的毒性作用(E类,F类). 比例尺,100μm。
图2。
图2。
载脂蛋白E肽在鸡和大鼠神经细胞培养物中的剂量依赖性毒性作用。A类,培养的鸡交感神经细胞暴露于不断增加的肽E浓度中(141–149)2,E(141–155)2,或E130–169持续20小时图表显示活性染料染色显示的存活细胞数量。肽的剂量-反应曲线显示,半数最大毒性浓度范围为1至4μ.B类,暴露于肽E后,分离的鸡皮层神经元和大鼠海马神经元培养获得了类似的剂量-反应曲线(141–149)2误差条表示平均值±SEM。
图3。
图3。
鸡交感神经细胞培养中载脂蛋白E肽诱导细胞死亡的时间进程。鸡交感神经元培养物暴露于4μ肽E(141–149)2最长24小时线形图显示活性染料染色显示的存活细胞数量。误差线表示平均值±SEM。
图4。
图4。
载脂蛋白E肽的肝素结合。肽与肝素-淀粉珠孵育,清洗,并按以下顺序加载到SDS-PAGE凝胶上:E(141–155)2(车道2); E类(141–149)2(车道3); E类130–169(车道4); 来自apoE,E的C末端区域的控制肽268–284(车道5); 和BSA(车道6). 考马斯蓝染色显示,在这些条件下,只有神经毒性的载脂蛋白E肽被回收。除了因该肽聚集而在通道3中出现的涂片外,在肽的预期分子量处还存在条带。分子量标记位于车道17.
图5。
图5。
HS阻断肽毒性。2.5μ的预培养(10分钟)肽E(141–149)2在加入鸡交感神经元培养物之前,随着HS浓度的增加,毒性被完全阻断。通过1μHS公司。误差线表示平均值±SEM。
图6。
图6。
氯酸钠和肝素酶阻断肽毒性。除培养基组外,本实验中的所有细胞均用20 m氯酸钠。在没有肽的情况下,预培养对细胞活力没有任何影响。隔夜用氯酸钠预孵育,同时增加肝素酶浓度,可保护鸡交感神经元2μ肽E(141–149)216 U/ml肝素酶具有统计学意义的保护作用。误差线表示平均值±SEM。
图7。
图7。
用RAP阻断肽毒性。在RAP、肽E浓度增加的情况下预培养1小时后(141–149)2(A类)和E130–169(B类)以2和4μ分别为。20小时后,活性染料染色显示100 nRAP完全阻断了肽的毒性。误差线表示平均值±SEM。
图8。
图8。
用抗LRP抗体阻断肽毒性。用30μg/ml多克隆抗LRP或单克隆抗apoA1抗体预先孵育鸡交感神经元2小时,然后用2μg/ml肽E处理(141–149)2神经细胞培养物的活性染料染色显示,只有用抗LRP抗体预处理过的培养物才能免受肽毒性的影响。误差线表示平均值±SEM。
图9。
图9。
用RAP和抗LRP阻断载脂蛋白E 22kDa片段的毒性。鸡交感神经细胞的分离培养物用1μRAP或30μg/ml多克隆抗LRP抗体分别作用1小时和2小时。预培养后,培养物暴露于250 n22 kDa凝血酶裂解apoE4片段20小时,然后用活性染料染色。这两种药剂都能显著保护细胞免受22kDa片段的毒性。误差线表示平均值±SEM。

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