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.1997年2月18日;94(4):1441-6.
doi:10.1073/pnas.94.4.1441。

肿瘤坏死因子启动肝脏生长:缺乏I型肿瘤坏死因子受体的小鼠肝再生缺陷

附属公司

肿瘤坏死因子启动肝脏生长:缺乏I型肿瘤坏死因子受体的小鼠肝再生缺陷

Y山田等。 美国国家科学院程序. .

摘要

肝组织切除后启动肝再生的机制尚不清楚。为了确定细胞因子是否参与肝脏生长的启动,我们研究了缺乏I型肿瘤坏死因子受体(TNFR-I)的小鼠在部分肝切除术(PH)后的肝脏再生。在这些动物中,PH后的DNA合成严重受损,并且在PH后不久NF-kappaB和STAT3转录因子结合的预期增加没有发生。与受体完整的动物相比,TNFR-I基因敲除小鼠PH后AP-1的结合降低,而C/EBP结合没有改变。在PH前30分钟向TNFR-I缺乏动物注射白细胞介素6,纠正了DNA合成缺陷,并将STAT3和AP-1结合恢复到正常水平,但对再生肝脏中NF-kappaB结合没有影响。结果表明,TNF通过TNFR-I发出信号,可以启动肝脏再生,并通过激活涉及STAT3转录因子的白细胞介素6依赖性途径发挥作用。

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数字

图1
图1
PH后转录因子结合野生型(WT)和TNFR-I基因敲除小鼠(TNFR-I-KO)。老鼠是部分肝切除,于术后0.5和5小时处死操作,如图顶部所示(每次两只老鼠点)。制备核提取物,并使用每道10μg核蛋白。使用网织红细胞裂解物作为确定p50/p65 NF-κB位置的标记物异二聚体(11)。p50同二聚体位置表示为(第50页)2。野生型AP-1结合存在变异性PH后2小时处死小鼠。PHF,PH因子
图2
图2
转录因子活性转移分析使用特定抗体(Ab)结合。野生型(WT)和TNFR-I敲除小鼠(TNFR-I KO)部分肝切除并处死手术后4小时进行NF-κB、STAT3和AP-1分析。核提取物与32P-标记探针,然后添加1μl抗体(1μg/μl)至10μg提取物。孵育30天后用EMSA分析核提取物(每车道10μg)。这个每个分析中使用的抗体显示在图的顶部每个转录因子,第一条通道显示核的EMSA无需抗体预培养的提取物。
图3
图3
TNFR-I、TNFR-II的表达,c(c)-六月,c-福斯和Jun B mRNA野生型(WT)和TNFR-I基因敲除小鼠(TNFR-I-KO)。动物是术后0.5~5h行部分肝切除并处死。样品(20μg/lane)通过电泳分离并与α32P-脱氧胞苷5′-三磷酸探针。β2-微球蛋白(β2M)mRNA(最下面一行)被用作装载控制。
图4
图4
野生型PH后肝细胞DNA合成和TNFR-I敲除小鼠。野生型和TNFR-I基因敲除小鼠部分肝切除,术后24–68小时死亡(3例每个时间点的动物)。所有动物都接受了静脉注射。压井前2h注射30μg/g BrdUrd(BrdU)。这个纵坐标显示BrdUrd标记的肝细胞在各种时间点。条形图表示平均值的SD。▪, 野生型C57BL/6小鼠;○, TNFR-I淘汰赛老鼠。
图5
图5
PH后IL-6 mRNA表达(A类)野生型(WT)和TNFR-I敲除(TNFR-I-KO)小鼠部分手术后0.5–5小时切除肝脏并处死,如的顶部A类.M,分子量标记车道;销售时点情报系统,IL-6 mRNA阳性对照(克隆技术);阴性,未添加mRNA逆转录步骤。(B类)IL-6 mRNA的定量4小时后野生型和敲除型小鼠肝脏的竞争性PCRPH.竞争对手浓度显示在B类IL-6 mRNA的产物大小为638 bp,435 bp竞争性片段。
图6
图6
IL-6对大鼠肝细胞DNA合成的影响TNFR-I基因敲除小鼠(TNFR-I-KO)。野生型(WT)和TNFR-I小鼠术后40h行部分肝切除并处死。三只TNFR-I敲除动物和三只野生型小鼠接受了皮下注射。PH前30分钟注射重组人IL-6(1 mg/kg)。所有小鼠在处死前2小时注射BrdUrd(BrdU)(见图。4). 纵坐标显示由BrdUrd公司。
图7
图7
IL-6对转录因子结合的影响TNFR-I基因敲除小鼠。野生型和TNFR-I小鼠部分PH后3h肝切除并处死一组基因敲除小鼠接受皮下注射IL-6(见图5)。核提取物(由每组两只动物制备)通过EMSA分析如图1所示(10μg/车道)。车道:1、野生型小鼠;2,TNFR-I敲除小鼠;TNFR-I基因敲除小鼠注射IL-6。右侧箭头指示STAT3频带的位置。

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引用人

工具书类

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