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.2018年1月9日;22(2):523-534.
doi:10.1016/j.celrep.2017.12.053。

Foxo1诱导转录抑制因子Zfp125引起肝脂肪变性和高胆固醇血症

附属机构

Foxo1诱导转录抑制因子Zfp125引起肝脂肪变性和高胆固醇血症

古斯塔沃·W·费尔南德斯等。 单元格代表. .

摘要

2型脱碘酶基因(Alb-D2KO)的肝特异性破坏导致小鼠对饮食诱导的肥胖和肝脂肪变性产生抵抗。在这里,我们报告称,这可以通过肝脏锌指蛋白-125(Zfp125)表达减少约60%来解释。Zfp125是一种Foxo1诱导的转录阻遏物,通过减少肝脏甘油三酯分泌和肝细胞胆固醇流出,导致AML12小鼠肝细胞系中的脂质积聚和小鼠肝脂肪变性。Zfp125通过抑制参与脂蛋白结构、脂质结合和转运的18个基因发挥作用。ApoE启动子包含一个功能性Zfp125结合元件,该元件也存在于被Zfp125抑制的17个其他脂质相关基因中。虽然Zfp125的肝脏特异性敲除导致“Alb-D2KO-like”代谢表型,但Alb-D2KO小鼠中Zfp125表达的肝特异性正常化拯救了该表型,恢复了饮食诱导肥胖、肝脂肪变性和高胆固醇血症的正常易感性。

关键词:胆固醇;脱碘酶;肝细胞;肝脏;脂肪变性;转录抑制因子;甘油三酯;锌指蛋白125。

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数字

图1。
图1.组织分布和稳定表达兹夫普125在AML12细胞系中
(A) 用A-Zfp125探针检测细胞和小鼠组织的Western blot;每个轨道装载30μg总蛋白。(B)Zfp125型细胞中的mRNA水平。(C-F)用ORO染色的代表细胞;在(C)EV和(D)中Zfp125,用对照培养基处理细胞;(E)EV和(F)Zfp125,用油酸(OA)处理细胞。(G) 从细胞中提取的ORO的吸光度;ST,标准介质。(H) 细胞胆固醇含量。(一) 细胞甘油三酯含量。(J) 通过qRT-PCR评估细胞中的mRNA水平。(K) 细胞声波的Western印迹a-Gapdh公司和a-Mttp;1、2、5和6来自保存在标准培养基上的细胞;3、4、7和8来自保存在含有油酸的培养基上的细胞。(五十) 量化百万吨/年带如(K)所示,用标准化盖普德。(M) 细胞声波的Western印迹a-肌动蛋白a-Apoa4;车道如(K)所示。(N) 量化阿波阿4带如(M)所示,用标准化肌动蛋白。(O)阿波罗条件培养基中的水平。(P) 细胞中的胆固醇流出。(Q) 培养基/细胞中FA(游离+并入甘油三酯)的百分比。TG、甘油三酯。数值为3-12个独立样本的平均值±SEM。基因缩写见表S6*与相应对照组相比,p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图2。
图2……的影响Zfp125型AML12细胞系中的敲除
(A)Zfp125型细胞中的mRNA水平。(B-E)ORO染色的代表性细胞;in(B)非目标siRNA和(C)Zfp125型siRNA,用对照培养基处理细胞;在(D)非目标siRNA和(E)中Zfp125型siRNA,用油酸(OA)处理细胞。(F) 从细胞中提取的ORO的吸光度;ST,标准介质。(G) 总胆固醇含量。(H) 总甘油三酯含量。(一) 通过qRT-PCR评估mRNA水平。(J)阿波罗条件培养基中的水平。(K) 细胞声波的Western印迹a-Gapdh公司a-Apoa4;1、2、5和6来自保存在ST上的细胞,而3、4、7和8来自保存在OA培养基上的细胞。(L) 量化载脂蛋白4带如(K)所示,用标准化盖普德。数值为3-12个独立样本的平均值±SEM。表S6中提供了基因缩写。*p<0.05、**p<0.01和**p<0.001与相应对照组比较。
图3。
图3。。Zfp125型是转录抑制物
(A) 假定Zfp125型上的绑定站点百万吨/年发起人。(B) a-FLAG抗体染色质免疫沉淀AML12细胞并进行qRT-PCR;结果是用IgG抗体对输入进行了倍增。(C) 用小鼠转染AML12细胞阿波携带小鼠片段的启动子-报告子结构阿波启动子缺乏下游内含子(-980/+93bp)或其截断变异体(-432/+93bp.)。荧光素酶活性归一化为β-半乳糖苷酶活性;粗箭头表示Zfp125型预测的结合位点。数值为3-12个独立样本的平均值±SEM。基因缩写见表S6*与相应对照组相比,p<0.05、**p<0.01和***p<0.001。
图4。
图4。。Zfp125型在肝脏和AML12细胞系中的表达
(A)Zfp125型24小时内对照小鼠肝脏中的mRNA;ZT、Zeitgeber。(B)Zfp125型对照组、禁食36小时或参考组小鼠肝脏中的mRNA。(C)Zfp125型用20 nM或200 n M胰岛素处理6小时的细胞中的mRNA水平。(D)用a-肌动蛋白a-Zfp125。(E) 量化Zfp125型(D)中所示的频带,用标准化肌动蛋白。(F)Zfp125型CA感染细胞的mRNA水平福克斯1并控制±20 nM胰岛素6小时。(G)推测福克斯1绑定站点Zfp125型发起人。(H) AML12细胞的染色质免疫沉淀a-Foxo1公司抗体追踪qRT-PCR;结果是用IgG抗体对输入进行了倍增。(一)Zfp125型LIRKO和LIRFKO小鼠肝脏中的mRNA水平。(J)福克斯1Alb-D2KO和对照小鼠肝脏中的mRNA水平。在胰岛素实验中,用0.1%的FBS隔夜饥饿细胞血清,然后注射胰岛素。基因缩写见表S6。数值为3–10个独立样本的平均值±SEM*与对照组相比,p<0.05,**p<0.01,***p<0.001*与所有组相比,p<0.05和**p<0.01。
图5。
图5.瞬态表达式的影响Zfp125型在小鼠肝脏中
(A)Zfp125型肝脏mRNA水平。(B-E)ORO染色的代表性肝脏切片。脂滴用箭头表示。(B和D)EV(B)和Zfp125型(D) 放大20倍。(C和E)EV(C)和Zfp125型(E) 放大40倍。(F) 肝切片ORO染色的定量分析;值是平均强度/图像面积。(G) 通过qRT-PCR评估肝脏基因的mRNA水平。(H)阿波罗用ELISA测定血浆中的水平。(I) 小鼠肝脏的蛋白质印迹a-Gapdh公司和a-Apoa4。(J) 量化阿波阿4(I)中所示的频带,用标准化加普德。(K) 小鼠肝脏的蛋白质印迹a-Gapdh公司a-Ldlr公司。(五十) 量化Ldlr公司带如(K)所示,用标准化盖普德。(M) 肝脏甘油三酯含量。(N) 肝脏胆固醇含量。(O) 血浆甘油三酯水平。(P) 血浆总胆固醇水平。(Q) 血浆VLDL和LDL胆固醇水平。(R) 高密度脂蛋白胆固醇的血浆水平。(S) 瞬时表达小鼠血浆甘油三酯Zfp125型注射TritonWR1339后的病媒(5天)或EV(5天后)。线性回归线(EV的r=0.995和a=2.1±0.10;EV的r=0.988和a=1.6±0.13Zfp125)坡度差异显著(p=0.033)。TGSR,甘油三酯分泌率。数值为3–10个独立样本的平均值±SEM。表S6中提供了基因缩写。*p<0.05、**p<0.01和**p<0.001与相应对照组比较。
图6。
图6.瞬态击倒的影响Zfp125型在小鼠肝脏中
(A)Zfp125型Alb-D2KO或对照小鼠肝脏中的mRNA水平。(B)Zfp125型非靶siRNA转染对照肝、Alb-D2KO肝或转染对照肝脏的mRNA水平Zfp125型小干扰RNA;动物每天注射脂质体5天。(C) 接受手术的动物的德尔塔体重兹夫普125HFD 15天期间的mRNA操作;如图所示,在第10天开始腹腔注射脂质体。(D-I)ORO染色的代表性肝脏切片。(D) 对照+非靶siRNA HFD、(F)Alb-D2KO HFD和(H)对照+Zfp125型10倍放大的siRNA HFD。(E) 对照+非靶siRNA HFD、(G)Alb-D2KO HFD和(I)对照+Zfp125型放大20倍的siRNA HFD。(J) 肝脏甘油三酯含量。(K) 肝脏胆固醇含量。(五十) 血浆甘油三酯水平。(M) 血浆总胆固醇水平。(N) 血浆VLDL和LDL胆固醇水平。(O) 高密度脂蛋白胆固醇的血浆水平。数值为4–16个独立样本的平均值±SEM。表S6中提供了基因缩写。*p<0.05、**p<0.01和**p<0.001与相应对照组比较。
图7。
图7.瞬态表达式的影响Zfp125型在Alb-D2KO小鼠肝脏中
(A)Zfp125型对照组的mRNA水平,表达Alb-D2KO的EV,或表达Alb-D2KO的Zfp125型矢量;动物每天注射脂质体5天。(B) 动物体重增量Zfp125型HFD 15天期间的mRNA操作;如图所示,在第10天开始腹腔注射脂质体。(C-H)ORO染色的代表性肝脏切片。(C) 对照HFD、(E)Alb-D2KO+EV HFD和(G)Alb-D2KO+兹夫普125放大10倍的HFD。(D) 控制HFD,(F)Alb-D2KO+EV HFD。和(H)Alb-D2KO+Zfp125型放大20倍的HFD。(一) 肝脏甘油三酯含量。(J) 肝脏胆固醇含量。(K) 血浆甘油三酯水平。(L) 血浆总胆固醇水平。(M) 血浆VLDL和LDL胆固醇水平。(N) 高密度脂蛋白胆固醇的血浆水平。(O) 新生儿Dio2表达影响Foxo1基因甲基化状态(DMR)的拟议机制Zfp125型表达,解释Alb-D2KO小鼠的代谢表型。数值为4-9个独立样本的平均值±SEM。基因缩写见表S6*与相应对照组相比,p<0.05、**p<0.01和***p<0.001。

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