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2013年4月16日;110(16):6418-23.
doi:10.1073/pnas.1221799110。 Epub 2013年4月2日。

PKCζ的c-Myc磷酸化抑制前列腺肿瘤发生

附属公司

PKCζ的c-Myc磷酸化抑制前列腺肿瘤发生

金智英(Ji Young Kim)等。 美国国家科学院程序

摘要

研究表明,PKCζ在不同类型的人类癌症中的表达或酶活性降低,支持PKCξ作为肿瘤抑制剂的临床相关性。然而,PKCζ的体内作用及其在前列腺癌中的作用机制尚不清楚。在这里,我们证明,在磷酸酶和张力蛋白同源物缺乏的情况下,小鼠PKCζ的基因失活会导致体内侵袭性前列腺癌。对人类前列腺癌基因表达集的生物信息学分析显示,PKCζ非活性细胞中c-Myc转录活性增加,这与细胞生长、侵袭和转移增加有关。有趣的是,PKCζ的敲除或激酶激活突变体的过度表达通过增加c-Myc mRNA和蛋白水平以及降低c-Myc的Ser-373磷酸化,导致体外细胞增殖和侵袭增强。前列腺癌样本分析表明,PKCζ基因敲除肿瘤中Ser-373处c-Myc的表达增加,磷酸化降低。体内异种移植研究表明,PKCζ的c-Myc磷酸化是控制转移的关键事件。总之,这些结果证明PKCζ是前列腺癌中c-Myc功能的重要抑癌剂和调节剂。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
PKCζ损失与PTEN合作+/−促进浸润性前列腺癌的发生。(A类)免疫印迹法分析PTEN患者前列腺中PKC水平+/−和PTEN+/−/PKCζKO小鼠。(B类)PTEN的代表性前列腺+/−和PTEN+/−/8个月龄的PKCζKO小鼠。(C类)10个月龄小鼠和两种基因型小鼠的泌尿生殖道重量:PTEN+/−(n个=23)和PTEN+/−/PKCζKO(n个=9)只小鼠****P(P)< 0.0001. (D类)所示基因型前列腺的H&E染色。(E类)PTEN中浸润性癌发病率的量化+/−(n个=7)和PTEN+/−/PKCζKO小鼠(n个= 15). (F类)所示基因型9月龄小鼠前列腺切片的α-SMA和p63染色(n个= 5). (G公司)对所示基因型的9个月龄小鼠前列腺切片进行Ki67染色。(H(H))Ki67阳性细胞的定量。结果是每个小鼠样本10个不同场的平均值±标准差(n个= 5; *P(P)< 0.05). (比例尺,所有面板中为20μm。)
图2。
图2。
PKCζ在PCa细胞肿瘤发生中的作用。(A类)PTEN-P2前列腺上皮细胞感染表达HA标记PKCζ(HA-PKCζ)的逆转录病毒或激酶缺失突变的PKCξ(HA-PKCζ-KD),并用所示抗体进行免疫印迹分析细胞裂解物。(B类)在0.1%FCS存在下表达PKCζ-WT或PKCξ-KD的细胞增殖。细胞数用台盼蓝排除法测定。数值是三个不同实验中三次计数的平均值±SEM**P(P)< 0.01, ***P(P)< 0.001. (C类)表达PKCζ-WT的细胞在软琼脂中形成集落。通过计数对每个平板的菌落总数进行评分,并用两个独立实验中六个平板的平均值±SD表示。插图是显示菌落大小差异的代表性图片。(D类)表达PKCζ或PKCξKD细胞的细胞周期分析。(E类)在GSE21034数据集中,PKCζ-KD与PKCζ-WT细胞中差异表达的基因(FDR<0.01,倍数变化高于3)与人类同源物。黄色表示高表达水平,蓝色表示低表达水平。(F类)使用表达显著改变的小鼠基因对人类PCa数据集GSE21034进行无监督患者聚类分析,当比较PKCζ-KD与PKCξ-WT时,FDR<0.01且倍数变化大于3。根据特征基因的表达水平是否与PKCζ-KD或PKCξ-WT样本相似,将患者特征分为PKCζ·KD样或PKCζ-样。如果患者样本中特征基因的表达水平与PKCζ-KD样本的相关性更好,则该样本被归类为PKCξ-KD-样,反之亦然。这种分类与样本的疾病状态(正常与肿瘤)之间的相关性具有统计学意义(Fisher精确检验P(P)< 0.001).
图3。
图3。
PKCζ控制细胞运动和侵袭。(A类)PKCζ-KD转录组基于巧妙性的分子和细胞功能显示细胞运动基因显著丰富(秩1,P(P)=1.36E-14)。(B类C类)通过改良的Boyden小室实验测定对照PTEN-P2细胞或表达PKCζ或PKCξ-KD的细胞的侵袭性。结果显示为平均值±SEMn个= 3. **P(P)< 0.01. (D类)通过台盼蓝排斥试验测定shNT和shPKCζ感染的DU145细胞的细胞增殖。数值为三个不同实验的三份计数的平均值±SEM**P(P)< 0.01. (E类F类)shNT和shPKCζ感染的DU145细胞的侵袭。结果显示为平均值±SEMn个= 3. *P(P)< 0.05. (G公司)在器官型系统中培养的shNT和shPKCζ感染的DU145细胞的H&E染色切片。侵入褶皱的量化(赖特). 结果显示为平均值±SEMn个= 3. **P(P)< 0.01. (H(H))使用PKCζ-KD小鼠与PKCξ-WT小鼠中FDR<0.01且倍数变化大于3的基因对人类PCa数据集GSE21034进行无监督患者聚类分析。患者签名分类如图2所示F类这种分类与样本的疾病状态(正常与转移)之间的相关性具有统计学意义(Fisher精确检验P(P)< 0.001).
图4。
图4。
PKCζ调节c-Myc水平。(A类)正常和PCa样本中c-Myc表达数据分布的点图视图。(B类)用Q-PCR定量对照、PKCζ和PKCζ-KD P2细胞中的c-Myc mRNA水平(左侧)和shNT和shPKCζDU145细胞(赖特). 结果显示为平均值±SEM;n个= 3. *P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01. (C类)表达shNT和shPKCζ的PC3M和DU145细胞中c-Myc和PKCξ水平的免疫印迹分析。(D类)前列腺切片中c-Myc的免疫染色及染色定量(赖特). 结果为平均值±SEM(n个=5只小鼠***P(P)<0.001)。(比例尺,20μm)(E类)免疫印迹法检测感染所示shRNA慢病毒载体的DU145细胞的c-Myc、PKCζ和肌动蛋白水平。(F类)通过台盼蓝排斥试验测定感染慢病毒敲除载体的DU145细胞的细胞增殖。数值为三个不同实验的三份计数的平均值±SEM*P(P)< 0.05. (G公司J型)改良博伊登腔法侵入(G公司H(H))或通过器官型培养(J型)用于感染所示shRNA慢病毒载体的DU145细胞。结果显示为平均值±SDn个= 3. **P(P)< 0.01. (K(K))用c-Myc荧光素酶报告子转染shNT或shPKCζDU145细胞。荧光素酶活性标准化为雷尼利亚活动。数值为两个不同实验的三份计数的平均值±SEM**P(P)< 0.01. (L(左))PKCζ-KD样本(红色)和其余20693个基因(蓝色)中519个上调基因的Myc累积结合分数分布的比较(FDR<0.05)。具有高累积结合分数(CBS)的上调基因比例明显较高(Kolmogorov–Smirnov检验P(P)值=4.3×10−13)与CBS高但未上调的基因比例相比。
图5。
图5。
PKCζ对c-Myc磷酸化的功能作用。(A类)PKCζ在体外磷酸化c-Myc。(B类)含有c-Myc pS373位点的磷酸肽的MS/MS光谱。图中显示了碎片离子,以及由于已识别碎片离子而导致的序列覆盖。质量荷电比,米/z. (C类)体外PKCζ磷酸化c-Myc的免疫印迹分析。(D类)Ser-373磷酸化位点在不同物种之间高度保守。(E类)所示基因型前列腺切片中磷酸-S373–c-Myc的免疫染色(n个= 5). (比例尺,20μm)(F类)用表达c-Myc、c-Myc–S373A或c-Myc-S373E突变体的逆转录病毒载体感染DU145细胞,通过台盼蓝排斥法测定细胞增殖。数值为三个不同实验的三份计数的平均值±SEM。通过免疫印迹分析细胞裂解物中的c-Myc和肌动蛋白(上部). (G公司)在表达c-Myc、c-Myc–S373A或c-Myc-S373E的DU145细胞的器官型培养物中检测侵袭。结果(赖特)显示为平均值±SD(n个= 3 ***P(P)<0.001)。(H(H))静脉接种表达c-Myc或c-Myc突变体的DU145细胞的小鼠肺切片的H&E染色。注射指定细胞的单个小鼠的肺转移结节总数(赖特)显示为平均值±SEM**P(P)< 0.01.n个=每组6-7只小鼠。

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