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.2012年12月;8(12):1811-21.
doi:10.4161/auto.22145。 Epub 2012年10月10日。

通过涉及TRAF2和RIPK1/RIP1介导的MAPK8/JNK活化的自噬生存途径减轻TNFSF10/TRAIL诱导的凋亡

附属公司

通过涉及TRAF2和RIPK1/RIP1介导的MAPK8/JNK活化的自噬生存途径减轻TNFSF10/TRAIL诱导的凋亡

魏阳河等。 自噬. 2012年12月.

摘要

虽然已知肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TNFSF10/TRAIL)诱导自噬,但TNFSF10激活自噬的机制仍不清楚。在本报告中,我们证明TRAF2和RIPK1介导的MAPK8/JNK激活是TNFSF10诱导细胞保护性自噬所必需的。TNFSF10在来自肺、膀胱和前列腺肿瘤的癌细胞系中快速激活自噬。以关键自噬因子BECN1/Beclin 1或ATG7为靶点的药物抑制剂或siRNAs阻断自噬,可有效增强TNFSF10诱导的凋亡细胞毒性,证实TNFSF10-诱导的自噬具有细胞保护作用。阻断MAPK8而非NFκB有效地阻断了自噬,表明MAPK8是TNFSF10诱导自噬的主要途径。此外,阻断MAPK8可有效抑制BCL2L1/Bcl-xL的降解,并减少抑制自噬的BCL2L1-BECN1复合物。敲除TRAF2或RIPK1可有效抑制TNFSF10诱导的MAPK8活化和自噬。此外,抑制自噬抑制抗凋亡因子BIRC2/cIAP1、BIRC3/cIAP2、XIAP和CFLAR/c-FLIP的表达,并增加TNFSF10诱导的死亡诱导信号复合物(DISC)的形成。这些结果揭示了MAPK8激活途径通过TRAF2和RIPK1在TNFSF10诱导的自噬中的关键作用,该自噬可钝化癌细胞的凋亡。因此,抑制MAPK8介导的自噬可用于肿瘤细胞对TNFSF10治疗的敏化。

PubMed免责声明

数字

无
图1。TNFSF10在癌细胞中诱导自噬。(A和B)用TNFSF10处理细胞(UM-UC-3200 ng/ml用于A549,150 ng/ml用来PC-3)指定时间。western blot检测所示蛋白。ACTB被检测为负载控制。(C和D)用氯喹(CQ,20μM)预处理细胞30 min,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理2 h(MAP1LC3B)和8 h(SQSTM1)。western blot检测所示蛋白。ACTB被检测为负载控制。(E类)稳定转染GFP-LC3的A549用TNFSF10(200 ng/ml)处理1小时或保持未处理状态。照片是在荧光显微镜下拍摄的。(F类)用GFP-LC3点(左)和每个阳性细胞的点数量量化细胞数量。所示数据为平均值±标准差*p<0.01
无
图2。自噬保护癌细胞免受TNFSF10诱导的细胞毒性。(A和B)用3MA(10 mM)、CQ(20μM)或沃特曼(1μM)预处理细胞30 min,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)处理细胞24 h。通过LDH释放试验测定细胞死亡。(C类)用不同抑制剂(CQ,20μM;沃特曼,1μM;3MA,10 mM)预处理UM-UC-3细胞30 min,然后分别用TNFSF10(60 ng/ml)再处理2 h(MAP1LC3B)和8 h(SQSTM1)。western blot检测所示蛋白。ACTB被检测为负载控制。(D类)用指示的siRNAs(10 nM)转染上层UM-UC-3细胞24 h,然后用TNFSF10(60 ng/ml)再处理24 h。通过LDH释放试验检测细胞毒性。所示数据为平均值±标准差*p<0.01。用指示的siRNAs(10 nM)转染低级UM-UC-3细胞24小时。通过western blot检测指示的蛋白质。(E类)用指示的siRNAs(10 nM)转染UM-UC-3细胞24小时,然后用TNFSF10(60 ng/ml)再处理2小时(MAP1LC3B)和8小时(SQSTM1)。western blot检测所示蛋白。ACTB被检测为负载控制。
无
图3。自噬抑制TNFSF10诱导的凋亡信号。(A和B)用沃特曼(1μM)预处理UM-UC-3和A549细胞30 min,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理4 h。用western blot检测CASP8、CASP3和PARP1。GADPH被检测为负载控制。(C和D)通过GST下拉分析检测DISC形成。用CQ(20μM)预处理细胞30分钟,然后用GST-TNFSF10(A549为60 ng/ml和200 ng/ml)处理15分钟或不处理。将GST-TNFSF10(60 ng/ml)添加到来自未刺激细胞的裂解物中,以沉淀未刺激的TNFSF10-受体。通过western blot分析GST-TNFSF10结合蛋白是否存在TNFRSF10B、FADD和CASP8。检测GADPH作为负荷和阴性对照。
无
图4。抑制MAPK8活化可抑制TNFSF10诱导的自噬并增强TNFSF10-的细胞毒性。(A和B)用指示的抑制剂(SP600125,10μM;IKB抑制剂,50μM)预处理UM-UC-3和A549细胞30分钟,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理1小时。用western blot检测磷酸化MAPK8和MAP1LC3B。ACTB被检测为负载控制。(C和D)用SP600125(10μM)预处理UM-UC-3和A549细胞30分钟,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理24小时。通过LDH释放测定检测细胞毒性。所示数据为平均值±标准差*p<0.01。(E类). 用SP600125(10μM)预处理UM-UC-3细胞30 min,然后用TNFSF10(60 ng/ml)再处理4 h。用western blot检测CASP8和PARP1。ACTB被检测为负载控制。
无
图5。MAPK8通过BCL2L1的降解和BCL2L1-BECN1复合物的分离介导自噬。(A类)A549细胞用TNFSF10(200 ng/ml)处理指定时间。western blot检测蛋白表达。GADPH被检测为负载控制。(B类)用指示的抑制剂(SP600125,10μM;IKBKB抑制剂,50μM)预处理A549细胞30 min,然后用TNFSF10(200 ng/ml)再处理1 h。用western blot检测BCL2L1和BCL2。GADPH被检测为负载控制。(C类)A549细胞用TNFSF10(200 ng/ml)处理指定时间(h)。与BECN1抗体共免疫沉淀后,用western blot检测蛋白。(D类)A549细胞用SP600125(10μM)预处理30 min或未处理,然后用TNFSF10(200 ng/ml)处理1 h。用BECN1抗体共免疫沉淀后,用western blot检测指示蛋白。GAPDH被检测为负载控制。
无
图6。MAPK8介导抗凋亡蛋白的自噬相关降解。(A–C)用指示的抑制剂(SP600125,10μM;沃特曼,1μM;MG132,10μM;组织蛋白酶B抑制剂,10μL;CQ,20μM;z-VAD,10μG)预处理UM-UC-3和A549细胞30 min,然后用TNFSF10(UM-UC-3为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理4 h。用western blot检测指示的蛋白质。ACTB被检测为负载控制。
无
图7。RIPK1和TRAF2调节TNFSF10诱导的自噬和MAPK8介导的自噬。(A和B)用阴性对照或siRNAs转染UM-UC-3细胞RIPK1段TRAF2型.转染后2小时,用TNFSF10(60 ng/ml)处理细胞2小时(MAP1LC3B)和8小时(SQSTM1)。western blot检测所示蛋白。GAPDH被检测为负载控制。(C和D)用指示的siRNAs转染UM-UC-3和A549细胞24小时,然后用TNFSF10(UM-UC-2为60 ng/ml,A549为200 ng/ml)再处理24小时。通过LDH释放试验检测细胞毒性。所示数据为平均值±标准差*p<0.01。(E和F)用指示的siRNAs(10 nM)转染UM-UC-3和A549细胞24小时。通过western blot检测指示的蛋白质。ACTB被检测为负载控制。

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