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.2012年9月19:9:221。
doi:10.1186/1742-2094-9-221。

小干扰RNA介导的Müller细胞Ccl2抑制减弱视网膜变性后的小胶质细胞募集和光感受器死亡

附属公司

小干扰RNA介导的Müller细胞Ccl2抑制减弱视网膜变性后的小胶质细胞募集和光感受器死亡

马特·鲁塔等。 J神经炎症. .

摘要

背景:炎症细胞的募集和激活被认为会加剧视网膜变性疾病(如年龄相关性黄斑变性(AMD))中光感受器的死亡。我们使用靶向小干扰(si)RNA研究了Müller细胞衍生的趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2表达在光介导的视网膜变性中单核细胞/小胶质细胞浸润和光感受器死亡中的作用。

方法:成年Sprague-Dawley大鼠经玻璃体内注射1μg Ccl2 siRNA或搅乱的siRNA,然后暴露于1000勒克斯的光下24小时。给小鼠服用过量的巴比妥酸盐,然后采集视网膜并评估其在强光照射下的效果。通过定量PCR、免疫组织化学和原位杂交评估Ccl2的表达。用标记物ED1和电离钙结合适配器(IBA)1免疫标记的视网膜冷冻切片计数单核细胞/小胶质细胞,并用末端dUTP缺口末端标记评估感光细胞凋亡。

结果:与对照组相比,玻璃体内注射Ccl2 siRNA显著降低光损伤后Ccl2的表达至29%。在注射Ccl2-siRNA的视网膜中,视网膜冷冻切片上的原位杂交和免疫组织化学显示Müller细胞内的Ccl2显著降低。细胞计数显示,与对照组相比,Ccl2 siRNA注入视网膜的视网膜血管和外核层中的ED1阳性和IBA1阳性细胞显著减少。此外,与对照组相比,Ccl2 siRNA注入的视网膜中的感光细胞凋亡明显减少。

结论:我们的数据表明,Müller细胞表达Ccl2可促进单核细胞/小胶质细胞的浸润,从而导致视网膜损伤后的神经炎症反应和光感受器死亡。使用siRNA调节过度的趋化因子反应可能有助于减少AMD等视网膜退行性疾病中炎症介导的细胞死亡。

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数字

图1
图1
对照视网膜玻璃体内注射荧光标记小干扰RNA后的定位。(A)只有在昏暗光线下饲养的小鼠,注射了Invivefectamine的视网膜未检测到荧光。(B)孵育24小时后,观察到注射的siRNA的强荧光(红色),这在所有细胞层直到外核层(ONL)都是明显的。(C-I)siRNA(红色)和Müller细胞特异性蛋白S100β/vimentin(绿色)的双重免疫标记显示,siRNA与S100β/vimentin在Müler细胞过程中的共定位位于(C–F)ONL和外界膜(OLM)(箭头),以及(G–I)内核层(INL)(箭头)。GCL,神经节细胞层;IPL,内丛状层;OS,外段。
图2
图2
小干扰RNA注射和光损伤后,通过定量PCR测量视网膜中Ccl2的相对表达。在注射了Ccl2 siRNA的动物中,在BCL 24小时后,Ccl2的表达相对于仅Invivefectamine对照组显著下降至29.3%(P(P) < 0.05; 方差分析/Tukey检验),而注射干扰siRNA的动物中Ccl2的表达与仅注射Invivofectamine组相比没有明显变化(95.4%,P(P) < 0.05; 方差分析/Tukey检验)。仅Inivofeitamine(n=8),加扰siRNA(n=9),Ccl2 siRNA(n=6)。误差线代表SEM。*在P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。
图3
图3
趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2在M细胞中的表达üCcl2小干扰(si)RNA处理和光损伤后的ller细胞。(A类——C类)从上部中间边缘拍摄的代表性图像显示就地暴露于明亮的连续光(BCL;黑色箭头)后,位于内核层(INL)突起内Ccl2 mRNA的杂交结果。(D)感官对照组无特异性染色。(E–G)用荧光染色(红色)共同标记Ccl2mRNA显示波形蛋白免疫反应(绿色)Müller细胞过程的共定位(白色箭头)。直方图显示,Ccl2 siRNA处理组(12.6个细胞)的每个视网膜中表达Ccl2的Müller细胞数量显著减少,而仅Invivofectamine组(47.4个细胞;P(P) < 0.05)和打乱的siRNA(50.1个细胞;P(P) < 0.05)组。仅Inivofeitamine(n=4),加扰siRNA(n=四),Ccl2 siRNA(n=4)。误差线代表SEM。*在P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。ONL,外核层。
图4
图4
M中趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2蛋白的免疫反应性(IR)ü与Ccl2小干扰(si)RNA治疗相关的光损伤后的ller细胞。(A类——D类)来自上中周的代表性图像显示,在随后的内核层(INL)中,Ccl2(红色)在径向定向过程中表现出强烈的IR(A–C)BCL(白色箭头),而(D)阴性对照组无荧光。(E–G)Ccl2 IR显示S100B-免疫反应性(绿色)Müller细胞突起的强共定位(白色箭头)。每个视网膜的Ccl2-IR Müller细胞过程的量化直方图表明注射Ccl2-siRNA的动物数量显著减少(11.6,P(P) < 0.05)与仅注射Invivefectamine或加扰siRNAs的患者相比(分别为45.1和45.2)。仅Inivofeitamine(n=4)、加扰siRNA(n=四)、Ccl2 siRNA(n=4)误差条代表SEM。*P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。ONL,外核层。
图5
图5
在视网膜内注射趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2小干扰(si)RNA,用明亮连续光(BCL)治疗后,招募ED1和电离钙结合适配器分子(IBA)1阳性的单核细胞。(A-F)从上中周拍摄的代表性图像显示,在BCL后视网膜血管系统招募的ED1+/IBA1+细胞核中,ED1(绿色)和IBA1(红色)呈免疫反应性(箭头所示)。(G)BCL后Ccl2 siRNA注射视网膜中每个视网膜的ED1+/IBA1+核仁总数与单纯Invivotamine组和干扰siRNA对照组相比显著减少(P(P) < 0.05).(H)与对照组相比,注射Ccl2 siRNA的视网膜中招募到视网膜和脉络膜血管部位的ED1+/IBA1+细胞核数量减少(P(P) < 0.05). 仅Inivofeitamine(n=4)、加扰siRNA(n=四)、Ccl2 siRNA(n=4)误差条代表SEM。*P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。GCL,神经节细胞层;IPL,内部丛状层。
图6
图6
注射趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2小干扰(si)RNA的视网膜BCL后,对电离钙结合接合器分子(IBA)1阳性而对ED1阴性的小胶质细胞的招募。(A–F)在BCL 24小时后,外核层(ONL)和外丛状层(OPL)的分支ED1−/IBA1+核团中,来自上中周的代表性图像显示IBA1(红色)而非ED1(绿色)的免疫反应性(A类——C类; 箭头)。(G)BCL后注射Ccl2 siRNA的视网膜中,每个视网膜的ED1−/IBA1+募集细胞核总数显著减少,与仅Invivofectamine组和扰乱siRNA对照组相比(P(P) < 0.05).(H)与对照组相比,注射Ccl2 siRNA的视网膜中招募到OPL或ONL/视网膜下间隙的ED1−/IBA1+细胞核数量减少(P(P) < 0.05). 仅Inivofeitamine(n=4),加扰siRNA(n=四),Ccl2 siRNA(n=4)。误差线代表SEM。*在P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。INL,内核层;OS,外段。
图7
图7
通过末端dUTP缺口末端标记(TUNEL)和活化蛋白(AP)-1在注射趋化因子(C-C基序)配体(Ccl)2小干扰(si)RNA的视网膜中的表达定量BCL后的凋亡。(A–D)来自上中周边的代表性图像显示BCL暴露后siRNA处理组中主要位于ONL的细胞核的TUNEL(红色)。E: 注射Ccl2 siRNA的动物发现外核层(ONL)的TUNEL阳性细胞核数量显著减少(85.1,P(P) < 0.05; 方差分析/Tukey检验)与仅Invivefectamine组和干扰siRNA对照组在BCL 24小时后进行比较(分别为263.8和250.1)。(F)BCL后视网膜中AP-1的表达在注射Ccl2 siRNA的视网膜中减少到14.1倍(P(P) < 0.05),相比之下,仅Invivefectamine组和加扰siRNA对照组分别减少20.5倍和24.9倍。仅Inivofeitamine(n=8)、加扰siRNA(n=9)、Ccl2 siRNA(n=6)误差条代表SEM。*P(P)<0.05,使用方差分析与Tukey's事后(post-hoc)测试。NS,不显著。

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