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.2012年6月15日;11(12):2348-58.
doi:10.4161/cc.20811。 Epub 2012年6月15日。

靶向SREBP1和脂肪生成抑制子宫内膜肿瘤生长

附属公司

靶向SREBP1和脂肪生成抑制子宫内膜肿瘤生长

李伟华等。 细胞周期. .

摘要

脂肪生成异常增加是增殖肿瘤细胞的普遍代谢特征。虽然大多数正常细胞从循环中获得大量脂肪酸,但肿瘤细胞从头合成所需脂质的90%以上。固醇调节元件结合蛋白1(SREBP1)由SREBF1基因编码,是脂肪基因表达的主要调节因子。SREBP1及其靶基因在多种癌症中过度表达;然而,SREBP1在子宫内膜癌中的作用尚不清楚。我们筛选了一组子宫内膜癌(EC)标本的脂肪生成基因表达,并观察到与正常子宫内膜相比,癌细胞中SREBP1靶基因表达显著增加。通过免疫组织化学染色,我们证实了SREBP1蛋白的过度表达,并证明了SREBP2在EC中的核分布增加。此外,我们发现,敲低EC细胞中SREBP1的表达抑制了细胞生长,降低了结肠生成能力,并减缓了体内肿瘤生长。此外,我们观察到SREBP1的敲低在培养的EC细胞中诱导了显著的细胞死亡。综上所述,我们的结果表明,SREBP1对EC细胞在体内外的生长至关重要,表明SREBP1-活性可能是子宫内膜癌的一个新的治疗靶点。

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数字

无
图1。IHC检测子宫内膜癌(EC)中SREBP1的表达。(A) 子宫内膜癌标本和匹配的邻近非癌组织的免疫组织化学(IHC)染色,用于SREBP1蛋白表达和亚细胞定位。(B) 癌组织和匹配的非癌组织中全细胞、细胞质和细胞核中SREBP1的IHC染色得分箱线图。(C) 本研究招募的所有癌症标本和非癌性子宫内膜组织的全细胞、细胞质和细胞核中SREBP1的IHC染色评分的盒图。
无
图2。不典型增生中SREBP1表达增加。(A) 用抗SREBP1抗体对正常子宫内膜组织、无异型性增生和不典型增生的子宫内膜组织进行IHC染色。对分泌性、增殖性和绝经后正常子宫内膜组织进行染色。(B) 如图所示,所有纳入本研究的标本中,SREBP1在整个细胞、正常增生细胞的细胞质和细胞核以及癌组织中的IHC染色得分箱线图。对SREBP1表达进行统计分析,显示实验组之间差异的p值(底部面板)。
无
图3。子宫内膜癌细胞中的脂肪生成基因和细胞增殖需要SREBP1。(A) 子宫内膜癌细胞SREBP1a和SREBP1c mRNA丰度的定量RT-PCR分析。RNA丰度显示为相对于ECC-1细胞的折叠变化。(B) Western blotting(WB)分析常用子宫内膜癌细胞系中脂肪生成基因的表达。肌动蛋白起蛋白质负荷控制作用。(C) 用一组表达靶向SREBF1的shRNA的慢病毒载体转导AN3CA细胞。对SREBP1和SCD1进行了Western blot分析,结果表明成功地敲除了SREBP1,SCD1的表达降低,成为SREBP的转录靶点。(D) 定量RT-PCR分析#2和#4转基因细胞中SREBP1、SREBP2及其靶点(包括FASN和SCD1)的mRNA丰度。
无
图4。SREBP1表达下调抑制子宫内膜癌细胞的集落形成。(A) 2 x 105在6孔细胞培养装置中,每孔接种1个AN3 CA细胞。细胞生长是通过对不同时间点的细胞进行计数来确定的,如图所示。内源性SREBP1被击倒的细胞在细胞生长方面存在部分缺陷。(B) 在10-cm细胞培养皿中进行集落形成实验。2000个细胞接种后,允许其生长2周。每三天更换一次培养基。细胞被结晶紫染色。(C) 使用Gel-Pro Analyzer软件计算菌落数量和大小。(D) 对用于体内肿瘤生长实验的#2和#4细胞进行Western blot。(E–F)AN3 CA细胞(#2、#4和载体对照)通过注射2 x 10植入SCID小鼠6皮下细胞。每四天用数字卡尺测量肿瘤生长,计算肿瘤体积。
无
图5。SREBP1的敲除促进细胞死亡。(A) 用shSREBF1和对照载体转导的AN3 CA细胞进行Annexin V凋亡细胞死亡分析。(B) 晚期和早期凋亡细胞死亡以细胞总数的百分比表示。数据以三倍的平均值±SEM表示。

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工具书类

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