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.2011年12月;7(12):1423-33.
doi:10.4161/auto.7.12.18027。

Atg13和FIP200在自噬诱导中独立于Ulk1和Ulk2

附属公司

Atg13和FIP200在自噬诱导中独立于Ulk1和Ulk2

塞巴斯蒂安·阿列尔斯等。 自噬. 2011年12月.

摘要

在正常生长条件下,哺乳动物雷帕霉素复合物1靶点(mTORC1)负性调节由Unc-51样激酶1/2(Ulk1/2)、200 kDa的黏着斑激酶家族相互作用蛋白(FIP200)和Atg13组成的中央自噬调节复合物。饥饿时,mTORC1介导的对该复合物的抑制被释放,从而导致Ulk1/2激活。在这种情况下,Atg13被认为是介导Ulk1/2和FIP200之间相互作用并增强Ulk1/2激酶活性的适配器。利用Atg13缺陷细胞,我们证明Atg13对自噬诱导是必不可少的。我们进一步表明,Atg13函数严格依赖于FIP200绑定。相反,同时敲除Ulk1和Ulk2对自噬诱导没有类似的作用。因此,我们在Atg13中确定的Ulk1依赖性磷酸化位点在这个过程中是可消耗的。这表明Atg13具有独立于Ulk1/2的额外功能,并且Atg13和FIP200在自噬诱导过程中协同作用。

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图1。
图1。
生成Atg13缺陷的DT40细胞。(A) Atg13缺陷型DT40 B细胞系(第13天−/−)都是由两者的定向破坏产生的第13天等位基因。使用野生型、hisD-或bsr-靶向等位基因特异性引物的基因组PCR证实了靶向成功(详见图S1)。来自任意一种野生型(wt)细胞的清除细胞裂解物的等量蛋白质(第1道),第13天+/−克隆(车道2–3)和第13天−/−通过免疫印迹法分析克隆(4–7道)的Atg13和GAPDH。星号表示未指定的背景带。(B) 野生型和第13页−/−用10 nM巴非霉素A处理逆转录病毒转染了编码mCitrine-LC3B的cDNA的DT40细胞1(BafA1)或DMSO(对照)6小时,并通过共焦激光扫描显微镜直接观察(棒材:10µm)。(C) 对(B)中描述的细胞的清除细胞裂解物进行抗Atg13和抗LC3免疫印迹。LC3-II/LC3-I比率表示为三个独立实验的平均值±SEM(D)第13天−/−用HA标记的全长鸡Atg13亚型A(9–12道)重组的细胞在正常生长培养基(RPMI)或饥饿培养基(EBSS)中培养1h,有或无10nM(BafA1)。通过免疫印迹法分析清除的细胞裂解液中的等蛋白量的Atg13、GAPDH和LC3。作为对照,野生型细胞(1-4车道)和第13页−/−用空载体(5-8道)重组的细胞进行平行分析。LC3-II/GAPDH比值表示为三个独立实验±SEM的平均值。
图2。
图2。
Atg13对自噬体的生成至关重要(A)DT40野生型和(B)第13天−/−细胞在正常生长培养基(对照)或EBSS中孵育2小时。细胞固定并通过透射电子显微镜进行分析。每个条件下的代表性单元格以两种不同的放大倍数显示。放大后的图像中,自噬体用黑色箭头表示,线粒体肿胀用星号表示(条形:500 nm)。(C) 野生型和(D)第13天−/−用编码mRFP-EGFP-rLC3的cDNA逆转录转染的细胞在EBSS中孵育2h,并用激光共聚焦扫描显微镜进行分析。在合并图像中,mRFP信号显示为红色,EGFP信号显示为绿色。自体溶酶体用白色箭头表示(条:10µm)。含有自体溶酶体的细胞百分比(>200个细胞/实验)表示为两个独立实验的平均值±范围。
图3。
图3。
Ulk1和Ulk2对于DT40细胞的自噬诱导是不可或缺的。(A) Ulk1缺失的DT40细胞(ulk1号机组−/−),Ulk2(ulk2型−/−)或Ulk1和Ulk2(ulk1/2−/−)通过基因靶向产生,野生型等位基因的丢失通过基因组PCR得到确认(详情见图S2)。缺少ulk1号机组ulk2号机组转录本经RT-PCR验证。(B) 野生型细胞和两个独立的双缺陷细胞ulk1/2−/−克隆(2-6和17-16)在全培养基(RPMI)或EBSS中,在存在或不存在10nM BafA1的情况下孵育1小时。通过免疫印迹分析来自清除的细胞裂解物的等量蛋白质的Atg13、GAPDH和LC3。LC3-II/GAPDH比值表示为三个独立实验的平均值±SEM(C)ulk1/2−/−细胞(克隆2-6)在正常生长培养基(对照)或EBSS中孵育2h,固定细胞并进行透射电镜分析。对于饥饿状态,代表性的细胞以两种不同的放大倍数显示。在放大倍率较高的图像中,自噬体由黑色箭头指示(条形:500 nm)。(D)单位1/2−/−用编码mRFP-EGFP-rLC3的cDNA逆转录转染的细胞(克隆2-6)在EBSS中孵育2h,并用共焦激光扫描显微镜进行分析。在合并图像中,mRFP信号显示为红色,EGFP信号显示为绿色。自体溶酶体用白色箭头表示(条:10µm)。带有自溶体的细胞百分比(>100个细胞/实验)表示为三个独立实验的平均值±SD。n.s.表示野生型和ulk1/2−/−细胞(学生t检验)。
图4。
图4。
Atg13中的FIP200结合位点由外显子12编码。(A) 从DT40细胞扩增的Atg13剪接变异体(命名为A-G)的示意图。(B) 使用剪接变异体特异性引物组合通过qRT-PCR分析这些剪接变种的相对丰度(参见补充材料和方法图S8A)。(C)第13天−/−用HA标记的剪接变异体A-G重组细胞,裂解产物进行抗HA免疫沉淀,并通过免疫印迹分析Atg13和FIP200。星号表示不特定的背景带。
图5。
图5。
FIP200结合位点对Atg13功能至关重要。(A)第13天−/−用HA标记的剪接变异体A-G重组细胞,并在有或无10 nM BafA1的全培养基(RPMI)或EBSS中培养1小时。通过免疫印迹法分析清除的细胞裂解液中的等蛋白量的Atg13、HSP90和LC3。来自三个独立实验的LC3-II/HSP90比率表示为平均值±SEM(B)第13页−/−用编码HA-Atg13亚型A(全长)或HA-Atg13-亚型C(?外显子12)的cDNA逆转录病毒转染或用pmRFP-EGFP-rLC3稳定转染空载体。细胞在EBSS中孵育2 h,并通过共焦激光扫描显微镜进行分析。在合并图像中,mRFP信号显示为红色,EGFP信号显示为绿色。三个独立实验中含有自体溶酶体的细胞百分比(>100个细胞/实验)表示为平均值±SD*p<0.05,Student t检验。
图6。
图6。
不同Atg13依赖性自噬诱导途径的模型。根据先前的研究结果,有人提出mTORC1在富含营养的条件下与Ulk-Atg13-FIP200复合物结合,在抑制位点磷酸化Ulk1/2和Atg13,并抑制Ulk1/2激酶活性。饥饿或直接mTORC1抑制后,这种负调控被释放,Ulk1/2在激活位点自我磷酸化,随后磷酸化Atg13和FIP200。这反过来导致自噬诱导(mTORC1-Ulk1/2轴)。在通过自噬诱导对mTORC1抑制反应并依赖于Ulk1和Ulk2的细胞中,此途径最有可能受到青睐。然而第13天−/−ulk1/2−/−DT40细胞让我们假设Atg13具有更基本的功能,不一定受Ulk1或Ulk2调节,但一定需要FIP200结合能力。因此,令人惊讶的是,Atg13除了作为连接Ulk1/2及其底物FIP200的适配器分子的拟议功能外,还有一个额外的作用。可以想象有几种作用模式:(A)Atg13以激酶依赖的方式发挥作用,例如通过稳定或招募FIP200,(B)Atg13-FIP200复合物以激酶依赖方式调节,或(C)Atg17-FIP200由Ulk1/2以外的其他激酶调节。

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引用人

工具书类

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