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.2011年9月9日;286(36):31830-8.
doi:10.1074/jbc。M111.229518。 Epub 2011年7月19日。

SLC6A14(ATB0,+)蛋白是一种高浓度、广谱特异性氨基酸转运体,是治疗雌激素受体阳性乳腺癌的新型有效药物靶点

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SLC6A14(ATB0,+)蛋白是一种高浓度、广谱特异性氨基酸转运体,是治疗雌激素受体阳性乳腺癌的新型有效药物靶点

Senthil卡鲁纳卡兰等人。 生物化学杂志. .

摘要

SLC6A14又称ATB(0,+),是一种具有独特特性的氨基酸转运体。它运输20种蛋白质生成氨基酸中的18种。然而,这种转运体仅在正常组织中低水平表达。在这里,我们发现转运蛋白在雌激素受体(ER)阳性的乳腺癌中特异性上调,在原发性人类乳腺癌组织和人类乳腺癌细胞系中可以证明。SLC6A14是雌激素/ER靶点。SLC6A14的转运特征包括亮氨酸(mTOR的激活剂)、谷氨酰胺(核苷酸生物合成的必需氨基酸和谷氨酰胺分解的底物)和精氨酸(肿瘤细胞的必需氨基酸)的集中转运,提示ER阳性乳腺癌细胞上调SLC6A14,以满足其对这些氨基酸的增加需求。因此,用SLC6A14的选择性阻断剂α-甲基-DL-色氨酸(α-MT)体外治疗ER阳性乳腺癌细胞,可诱导氨基酸剥夺,抑制mTOR,并激活自噬。α-MT治疗时间延长会导致细胞凋亡。在α-MT治疗期间添加自噬抑制剂(3-甲基腺嘌呤)也会诱导细胞凋亡。α-MT的这些作用对表达转运体的ER阳性乳腺癌细胞具有特异性。当SLC6A14被shRNA沉默时,α-MT引起氨基酸剥夺的能力在ER-阳性乳腺癌细胞系MCF-7细胞中显著减弱。在小鼠异种移植研究中,α-MT本身能够减少ER-阳性ZR-75-1乳腺癌细胞的生长。这些研究确定SLC6A14是治疗ER阳性乳腺癌的新的有效药物靶点。

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数字

图1。
图1。
上调SLC6A14型ER阳性乳腺癌。 、RT-PCR分析原发性乳腺癌组织和相应的邻近正常组织中SLC6A14 mRNA。N个,正常;T型,肿瘤。B类ER阳性乳腺癌组织和正常乳腺组织中SLC6A14蛋白的免疫组化分析。C类人乳腺癌细胞系中SLC6A14和ERαmRNA的RT-PCR分析。急诊室+ 不列颠哥伦比亚省ER阳性乳腺癌细胞株;急诊室 不列颠哥伦比亚省,ER阴性乳腺癌细胞株。
图2。
图2。
雌激素/ER对SLC6A14表达的调节。 ZR-75-1和BT-474细胞在对照培养基(10%胎牛血清加酚红)和无酚红培养基中培养5~6代(下午。; 10或5%炭样剥离胎牛血清),并通过RT-PCR测定ERα和SLC6A14 mRNA的水平。第1页,第3页至第5页、和第1页至第6页参考文章编号。B类用雌二醇处理BT-474细胞(E2级; 10牛顿)有无抗雌激素(1μ)24小时,然后用于SLC6A14和ERαmRNA的RT-PCR分析。ICI 182780也称为Faslodex。TAM公司,三苯氧胺;4-羟基TAM,4-羟基他莫昔芬。C类,BT-474细胞转染了SLC6A14型启动子(~3kb)-荧光素酶(吕克)构建或清空载体,然后用雌二醇(10n)在有无抗雌激素(1μ). 治疗后,对报告者的活动进行测量。数据表示转染效率差异的β-半乳糖苷酶活性归一化后的值。美国犹他州,未经治疗。
图3。
图3。
+SLC6A14介导的亮氨酸转运的活化动力学()以及精氨酸和谷氨酰胺(B类).人SLC6A14在X·莱维斯卵母细胞注射cRNA。注射后4天,用双微电极电压灯法对卵母细胞进行电生理研究。未注射的卵母细胞在与亮氨酸、精氨酸或谷氨酰胺(1 m). cRNA注射的卵母细胞在与这三种氨基酸融合时显示出明显的内向电流,并且电流的大小随着钠浓度的增加而增加+.(Cl的浓度在100米处保持不变.)由于不同卵母细胞的表达水平不同,导致氨基酸诱导的电流大小不同,因此通过取100米处诱导的电流大小来归一化电流+在每个卵母细胞中为1,并计算在其他Na浓度下诱导的电流大小+作为最大电流的一部分。实验用三个不同的卵母细胞进行,结果以平均值±S.E表示。插图、丘陵地带。
图4。
图4。
SLC6A14介导的亮氨酸、精氨酸和谷氨酰胺转运的活化动力学。实验按照Na的描述进行+图3图例中的活化动力学。注射cRNA的卵母细胞在与这三种氨基酸周融合时显示出明显的内向电流,并且电流的大小随着Cl浓度的增加而增加.(Na的浓度+在100米处保持不变)用三个不同的卵母细胞进行实验,结果以平均值±S.E表示。
图5。
图5。
阻断SLC6A14介导的亮氨酸转运(),谷氨酰胺(B类)和精氨酸(C类)α-MT。注射人SLC6A14 cRNA的卵母细胞被100μ亮氨酸、谷氨酰胺或精氨酸。含有氨基酸的卵母细胞在NaCl存在下的外周融合诱导内向电流,当NaCl被替换为N个-甲基-d日-葡聚糖(NMDG公司)氯化物。在NaCl存在下,相同的卵母细胞与氨基酸的再灌注再次诱导内向电流,但当在相同的缓冲液中进行相同氨基酸的灌注时,这些电流消失α-甲基。
图6。
图6。
α-MT阻断SLC6A14对乳腺癌细胞的作用。 对MCF-10A(一种非恶性乳腺上皮细胞系)、MCF-7(一种雌激素受体阳性乳腺癌细胞系)和MB-231(一种激素受体阴性乳腺癌细胞株)细胞进行2.5 m或不进行处理α-MT作用24、48或72小时,然后用于分析天冬酰胺合成酶(ASNS公司)和CHOP mRNA水平。B类对MCF-7、MB-231和MCF-10A细胞进行2.5 m处理或不处理α-MT 48小时,然后用于组成型表达的LC3的免疫细胞化学分析。C类,MCF-7细胞用(面板bc(c))或不带(面板a)α-MT(2.5米)48小时,然后用于电子显微镜。箭头表明自噬前体和自噬体中细胞质和细胞器的隔离,以及星号表示浓缩染色质。N个,细胞核。
图7。
图7。
α-MT对MCF-7细胞自噬的诱导作用。 ,自噬体蛋白水解14C标记蛋白质。α-MT和3-MA的浓度(如果存在)分别为2.5和10 m处理时间为48小时。蛋白质水解的程度由无蛋白上清液中的放射性测定。与不含α-MT和3-MA的蛋白质水解显著不同(第页< 0.001);b条,与不存在α-MT和3-MA时的蛋白水解显著不同(第页< 0.05);c(c)与仅存在α-MT的蛋白水解显著不同(第页< 0.01).B类,用GFP-LC3表达质粒转染MCF-7细胞,24小时后,用α-MT(2.5 m)存在或不存在3-MA(10 m)48小时。在治疗结束时,固定细胞,并对体外表达的GFP-LC3点状定位的细胞百分比进行量化。与对照组相比;b条与α-MT单独治疗相比;c(c),与α-MT单独治疗相比;*,第页< 0.001.
图8。
图8。
α-MT对对照MCF-7细胞和shRNA沉默MCF-7中天冬酰胺合成酶和CHOP mRNA水平的影响SLC6A14型. ,使用基于慢病毒的系统在MCF-7细胞中测试了五种不同的SLC6A14特异性shRNAs,以监测其沉默效果SLC6A14型以GAPDH作为内部对照,通过RT-PCR测定SLC6A14 mRNA水平。c(c),控制。B类,SLC6A14型使用慢病毒系统用shRNA-4在MCF-7细胞中沉默,然后不使用或使用α-MT(2.5 m,48小时)。从细胞中分离的RNA用于RT-PCR以监测天冬酰胺合成酶的水平(ASNS公司)和CHOP mRNA。
图9。
图9。
α-MT对mTOR活性的影响。MCF-7和MB-231细胞在不使用或使用α-MT(2.5 m)24、48或72小时,细胞裂解物用于Western印迹。S6K-P系列,磷酸化S6激酶。B–D类α-MT加或不加3-MA对细胞死亡的影响。B类在不使用或使用α-MT(2.5 m),3-MA(10米)或α-MT(2.5 m)加上3-MA(10米)并对碘化丙啶引起的细胞死亡进行了分析(圆周率)染色和基于FACS的细胞周期分析。C类,MCF-7细胞在不使用或使用α-MT(2.5 m)的情况下处理48 h),3-MA(10米)或α-MT(2.5 m)加上3-MA(10米)然后通过膜联蛋白V标记分析凋亡细胞死亡。D类,MCF-7和MB-231细胞在不使用或使用2.5μα-MT作用24、48或72小时。然后,使用细胞裂解产物,使用特异识别蛋白水解产物的抗体,对层粘连蛋白A降解产物进行Western blot分析。β-肌动蛋白被用作内部控制。
图10。
图10。
体内α-MT治疗ER阳性乳腺癌的疗效。ZR-75-1型(),MCF-7(B类)和MB-231(C类)将细胞皮下注射到BALB/c裸鼠(10×106细胞/注射部位)。对于MCF-7细胞,植入缓释雌激素颗粒以支持肿瘤生长。对于每个细胞系,对照组接受含蔗糖的水,处理组接受含蔗糖的水中的α-MT(2mg/ml)。定期测量肿瘤大小。NS公司,无统计学意义(第页> 0.05); *,第页<0.005(双尾非配对学生t吨测试)。D类,BALB/c裸鼠分为两组;对照组饮用含蔗糖的水,治疗组饮用含糖水中的α-MT(2mg/ml),持续2周。然后给小鼠放血,并通过HPLC测定血浆中的α-MT。未注明日期。,未确定。
图11。
图11。
雌激素依赖性抑制α-MT诱导MCF-7细胞中天冬酰胺合成酶和CHOP表达的功效。MCF-7细胞在无或有雌二醇的苯酚无红培养基中培养(E2级; 10牛顿)24小时,然后在不使用或使用α-MT(2.5 m)的情况下进行处理,24小时)。这些细胞用于分析SLC6A14,天冬酰胺合成酶(ASNS公司)RT-PCR检测CHOP mRNA水平。HPRT1 mRNA水平作为内部对照。

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引用人

工具书类

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