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.2011年3月;15(3):173-82.
doi:10.1089/omi.2010.0088。 Epub 2011年2月17日。

癌症研究中的稳定同位素再溶代谢组学(SIRM)及其在非小细胞肺癌临床应用

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癌症研究中的稳定同位素再溶代谢组学(SIRM)及其在非小细胞肺癌临床应用

安德鲁·莱恩等。 OMICS公司. 2011年3月.

摘要

代谢组学提供了细胞或组织代谢状态及其对外界扰动的反应的读数。因此,该方法在临床诊断方面具有巨大潜力。使用稳定同位素解析代谢组学(SIRM)进行路径追踪的临床代谢组学是一种在原位获取人类癌症受试者代谢参数的重要新方法。在这里,我们概述了从培养细胞和小鼠模型中标记细胞的技术发展。通过癌症生物学中的应用实例,描述了用于分析产生的代谢物同位素和同位素的高通量分析方法NMR和质谱,特别是傅里叶变换离子回旋共振。描述了使用稳定同位素示踪剂的代谢组学临床应用的特殊技术考虑。我们正在进行的非小细胞肺癌(NSCLC)代谢组学研究将证明从概念到分析的整个过程。这种强大的新方法已经为肺癌细胞的代谢适应提供了重要的新见解,包括通过NSCLC中丙酮酸羧基化上调无补体。

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图1。
图1。
简单的代谢方案。G代表细胞外葡萄糖,在细胞内被己糖激酶立即磷酸化为G6P。拉克o个和Lac分别代表细胞外(排泄)和细胞内乳酸。表观速率常数,k个因为代谢转化是酶浓度的函数。在迈克利斯·蒙顿动力学的极限下,k个 = (k个/K(K))e(电子)[1−第页/瑞典克朗等式],其中e(电子)是游离酶浓度,第页酶催化的产物和底物浓度K(K)等式是反应的平衡常数(Roberts等人,1985)。
图2。
图2。
乳酸生产13不同硒处理改变了C葡萄糖和释放到培养基中的量。A549细胞在含有0.2%[U-13C] -在不存在或存在5μM甲基亚硒酸(MSA)、6.25μM亚硒酸盐(SeO3)或500μM硒代蛋氨酸(SeM)的情况下,葡萄糖持续24小时。通过1D测定培养基代谢物1核磁共振氢谱。显示中央共振的甲基区域1H连接到12C和两个13乳酸C卫星。的拆分模式13C卫星表明13C-标记乳酸同位素(13C类-乳酸)。MSA治疗导致13C类-与对照组相比,其他两种硒处理组的乳酸水平更高。
图3。
图3。
葡萄糖消耗和乳酸分泌到培养基中的时间过程。MDAMB231细胞在含有0.2%[U的RPMI中生长-13C] -葡萄糖。通过1D测量培养基代谢物1核磁共振氢谱。(A类) •13葡萄糖;13C乳酸;12C乳酸;缬氨酸。连续线是对文本中描述的等式的回归拟合,具体增长率(λ)为0.07 h−1.R(右)2葡萄糖和13乳酸C分别为0.996和0.998。缬氨酸的变化率与零无显著差异13乳酸C生成量为0.01 mM h−1. (B类)的分数13培养基中C标记的乳酸(○)和13消耗的C葡萄糖转化为排泄物13乳酸C(•)。
图4。
图4。
TOCSY光谱:影响13C源。A549细胞在含有10 mM[U-13C] -葡萄糖+2 mM12C Gln或10 mM12C葡萄糖+2 mM[U-13C] -甘氨酸。收集细胞并提取极性代谢物。使用50 ms的各向同性混合时间,在14.1 T和293 K下记录TOCSY光谱(A类)13葡萄糖;(B类)13C Gln.公司。绿色方框连接13C卫星峰值和红色方框追踪1各种代谢物的H共价键。
图5:。
图5:。
鼠标U-13C葡萄糖。SCID小鼠注射[U-13C] -葡萄糖经尾静脉,15分钟后采集组织。1H(H)-{13C} 在14.1 T 20°C下记录HSQC光谱。光谱显示了15分钟内葡萄糖衍生代谢物的不同相对标记模式。1分钟和30分钟的左血浆主要显示葡萄糖(1分钟)和葡萄糖加乳酸(30分钟)。右:如图所示的组织。
图6。
图6。
切除非小细胞肺癌。左上:缝合血管;右上角:收集到一个内袋中;左中取切除肺的肿瘤组织(白色)和非肿瘤肺组织;右中:切取肿瘤病理标本并冷冻;左下:液氮冷冻夹持肿瘤切片;右下:病理样本的吸墨纸组织。切除和冷冻之间的时间<5分钟。
图7。
图7。
的流量13来自[U的C原子-13C] -葡萄糖转化为可检测的代谢物。13来自葡萄糖(红色)的C原子通过糖酵解进入丙酮酸和丙氨酸,然后通过丙酮酸脱氢酶或丙酮酸羧化酶反应进入克雷布斯循环制造器,最终进入大分子。
图8。
图8。
FT-ICR MS光谱。脂质是从血浆和肺组织的微泡中提取的溶剂,冷冻干燥,并在甲醇中再溶解。通过直接输注,在7T的Thermo-LTQ-FT-MS光谱仪上记录FT-ICR-MS光谱。(A类)从三名患者的正常和非小细胞肺癌组织中提取的磷脂的扩大区域。(B类)从同一肺癌患者和三名对照受试者的血浆中提取的微泡中提取的脂质(无癌症史)。

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引用人

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