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.2010年9月;15(5):497-508.
doi:10.1007/s12192-009-0163-4。 Epub 2009年12月15日。

IRE1alpha通过XBP-1控制细胞周期蛋白A1的表达并促进细胞增殖

附属公司

IRE1alpha通过XBP-1控制细胞周期蛋白A1的表达并促进细胞增殖

杰弗瑞·A·索普等人。 细胞应激伴侣. 2010年9月.

摘要

IRE1是一种保守的双内核糖核酸酶/蛋白激酶,对于指导酵母、苍蝇和蠕虫的内质网应激反应必不可少。然而,在哺乳动物系统中,IRE1α进行的精确生物活性尚不清楚。在这里,分子和化学遗传学方法被用于控制一些前列腺癌细胞系中IRE1的活性,并对其对基因转录、细胞存活和增殖的影响进行了研究。调节IRE1α活性对与内质网应激反应(Grp78和CHOP)或细胞生存相关的基因的诱导没有转录作用。相反,IRE1α活性与增殖呈正相关。由于Xbp-1 mRNA是IRE1内核糖核酸酶活性的唯一已知底物,因此研究了该转录因子在介导增殖中的作用。通过siRNA技术抑制总Xbp-1水平有效减缓了增殖。为了确定负责细胞周期反应的IRE1/XBP-1靶点,进行了全基因组差异mRNA表达分析。IRE1α诱导与感受内质网应激的能力一致,导致内质网高尔基体、质膜和分泌基因产物的富集。细胞周期蛋白A1表达增加是发现的唯一差异表达的细胞周期调控基因。在IRE1α活性的细胞中持续观察到较高的细胞周期蛋白A蛋白水平,并且依赖于XBP-1。我们得出结论,IRE1α活性控制内质网应激反应的一个子集,并通过严格控制Xbp-1剪接介导增殖。

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数字

图1
图1
人前列腺上皮细胞内质网应激反应的诱导。将DU145、LNCaP和PC-3细胞暴露于MG132(1µM)或衣霉素(2µg/ml)或thapsigargin(300 nM)中24 h,并进行Western blot分析以检测GRP78和ß-actin。b条细胞株暴露于thapsigargin(300 nM)或指示浓度的Velcade 24小时。分离总RNA,并通过RT-PCR和琼脂糖凝胶电泳检测cDNA,以识别Xbp-1型拼接状态。u个未分割,拼接的
图2
图2
IRE1活性的降低减缓了细胞增殖。对稳定表达激酶缺陷型IRE1(K599A)或对照pBabe-puro(puro)载体的PC-3细胞进行蛋白质印迹分析。b条将表达PC-3 puro和K599A IRE1的细胞暴露于衣霉素(2µg/ml)和thapsigargin(300 nM)24小时。分析细胞的非分裂丰度(u个)和拼接()Xbp-1型.cCHOP公司组78在PC-3细胞中测定mRNA表达b条在标准化到亲环素B或18S rRNA后,通过qPCR进行。18S标准化仅用于thapsigargin(Tg),因为该处理诱导了亲环素B。显示了三个实验的平均值±标准偏差。d日PC-3细胞(Puro和K599A IRE1)用指定浓度的thapsigargin处理24小时(左边)、Velcade(中间的),或TRAIL(正确的)用MTT比色法测定存活率。e(电子)在PC-3上进行BrdU标记(左边)和LNCaP(正确的)仅表达K599A IRE1结构或载体的细胞(Puro)。显示了三个重复的平均值±标准偏差*P(P) = 0.002; **P(P) = 0.01
图3
图3
IRE1 I642G赋予内核糖核酸酶活性并诱导增殖。(顶部)对稳定表达I642G IRE1结构的对照(Puro)和PC-3细胞进行Western blot分析以检测IRE1的表达。(底部)用DMSO、1NM-PP1(5µM)或thapsigargin(Tg,300 nM)处理稳定表达I642G IRE1结构的对照(Puro)和PC-3细胞24小时,并Xbp-1型检查拼接。b条在存在或不存在1NM-PP1(5µM)的情况下,用Velcade和thapsigargin处理PC-3细胞(Puro和IRE1-I642G)24 h,并用MTT分析量化细胞活力。数值表示平均值±标准偏差。c的表达式CHOP公司组78通过实时定量PCR测定用DMSO或1NM-PP1(5µM)处理24小时的PC-3细胞(Puro和IRE1-I642G)中的mRNA。将数值标准化,并与仅用二甲基亚砜处理的Puro细胞进行比较。误差线反映标准偏差。d日(顶部)对稳定表达I642G IRE1结构的对照(Puro)和DU145细胞进行Western blot分析以检测IRE1的表达。(底部)将稳定表达I642G IRE1的Puro和DU145细胞用DMSO、1NM-PP1(5µM)或thapsigargin(Tg,300 nM)处理24小时Xbp-1型检查拼接。(e(电子))处理DU145细胞(Puro和I642G IRE1),结果如所述b条.(f)在PC-3上进行BrdU标记(左边)和DU145(正确的)仅表达I642G IRE1结构或载体的细胞(Puro)。将1NM-PP1(5µM)添加到PC-3细胞中24小时。在没有1NM-PP1的情况下,根据血清浓度对DU145细胞进行BrdU标记。显示了三个重复的平均值±标准偏差。Xbp-1型稳定表达IRE1 K599A或I642G或空pBabe Puro结构的PC-3细胞的剪接状态。通过聚丙烯酰胺凝胶电泳分析PCR反应。注意,减少了新加坡先令-K599A细胞中的1个水平和剪接的诱导Xbp-1型与Puro控件相比,I642单元格中的消息
图4
图4
野生型IRE1过度表达对Xbp-1剪接和增殖的影响。对稳定表达所示结构的三个细胞系进行Western blot分析,以检测IRE1和ß-actin的表达。用1NM-PP1(5µM)、Velcade(100 nM)或thapsigargin(Tg,300 nM)处理细胞24小时。b条通过Western blot分析检测稳定表达野生型IRE1的DU145细胞,以确认蛋白过度表达。c将过度表达野生型IRE1的DU145细胞暴露于Velcade 24小时Xbp-1型琼脂糖凝胶电泳揭示剪接状态(左边)并通过NIH ImageJ软件进行量化(正确的).d日对过度表达野生型IRE1的DU145细胞和Puro对照细胞进行BrdU掺入分析。数值反映平均值±标准偏差。e(电子)产生稳定过度表达野生型IRE1的PC-3细胞,并通过Western blot分析蛋白质过度表达。(f)过度表达IRE1结构的PC-3细胞和对照细胞暴露于Velcade 4 hXbp-1型琼脂糖凝胶电泳揭示剪接状态(左边)并通过NIH ImageJ软件进行量化(正确的).对对照PC-3细胞(Puro)和过度表达野生型IRE1的细胞进行BrdU掺入分析。数值反映平均值±标准偏差
图5
图5
剪接XBP-1对细胞增殖的调节。百分比Xbp-1型与非靶向对照组相比,在DU145细胞中siRNA介导的敲除后的mRNA表达。b条用siRNA转染DU145细胞以靶向Xbp-1型或加扰控制。48小时后,通过BrdU标记对细胞进行分析。数值反映平均值±标准偏差*P(P) = 0.0002, **P(P) = 0.0003
图6
图6
的标识细胞周期蛋白A1作为IRE1/XBP-1依赖基因。基因本体论证明了IRE1 I642G PC-3细胞与IRE1野生型细胞中差异表达的基因的定位。b条定量PCR评估细胞周期蛋白A1基因表达(左边)I642G IRE1 PC-3细胞与野生型IRE1和(中间的)与DMSO处理的细胞相比,thapsigargin处理后的PC-3细胞中。误差线反映折叠变化±标准偏差。(正确的)用PCR方法评估thapsigargin处理细胞的Xbp-1剪接状态。c如图所示,在存在或不存在1NM-PP1的情况下,通过Western blot分析测定野生型和I642G IRE1 PC-3细胞中的细胞周期蛋白A蛋白表达。这个数字反映了与野生型IRE1相比,cyclin A表达的折叠变化。d日在缺乏1NM-PP1的情况下,通过Western blot分析测定野生型、K599A和I642G IRE1 PC-3细胞中的细胞周期蛋白A蛋白表达。这个数字反映了与野生型IRE1相比,cyclin A表达的折叠变化。e(电子)用扰乱阴性(SN)或XBP-1 siRNA转染表达I642G IRE1的DU145细胞和Puro对照细胞48小时,并通过蛋白质印迹分析检测细胞周期蛋白a的表达。这个数字反映了细胞周期蛋白A表达与SN转染的PC-3 puro细胞相比的倍数变化

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