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.2009年7月;51(1):139-48.
doi:10.1016/j.jhep.2009.03.024。 Epub 2009年5月3日。

肝星状细胞吞噬凋亡体通过JAK/STAT和Akt/NF-kappaB依赖性途径促进其生存

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肝星状细胞吞噬凋亡体通过JAK/STAT和Akt/NF-kappaB依赖性途径促进其生存

Joy X Jiang先生等。 肝脏病学杂志. 2009年7月.

摘要

背景/目的:我们之前已经证明肝星状细胞(HSC)吞噬凋亡小体(AB)是促纤维化的。由于HSC存活对肝纤维化的进展至关重要,我们的目标是研究吞噬作用是否诱导HSC存活。

方法:在已知凋亡剂存在的情况下,研究吞噬HSC的细胞凋亡。评估JAK/STAT-和PI3K/Akt-依赖性通路、NF-kappaB活化以及抗凋亡蛋白Mcl-1和A1的表达。通过siRNA方法阻断A1后评估细胞凋亡。

结果:吞噬性HSC对FasL/环己酰亚胺或TRAIL诱导的凋亡具有抵抗作用。抑制JAK/STAT或PI3K介导的通路可诱导HSC凋亡。吞噬作用诱导JAK1/STAT3磷酸化,而这可以通过抑制JAK来阻止。JAK抑制也阻断了STAT3向细胞核的转移。Mcl-1表达以JAK依赖的方式上调。Akt的PI3K依赖性磷酸化依赖于NADPH氧化酶活性和超氧物生成。观察到NF-kappaB激活和随后A1的上调,A1抑制诱导HSC凋亡。

结论:AB吞噬作用通过两条途径促进HSC存活,其中A1依赖性更为显著。这代表了一种新的机制,AB的吞噬有助于肝纤维化的传播。

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数字

图1
图1。凋亡体吞噬作用诱导HSC存活
(A)AB暴露对原发性HSC的凋亡率没有改变(3.7%±0。9) 与对照组相比(2.9%±0.2)。FasL(FSL)联合环己酰亚胺(CHX)诱导HSC凋亡增加15.8%(±1.1)。吞噬HSC N+5时,此值降至11%(±1.0),*p<0.001,**p<0.05。(B)TRAIL诱导的原代培养活化HSC的凋亡(50.6%±6.1)在吞噬HSC时显著降低(27.6%±1.8)。凋亡基于活性caspase-3/DAPI染色检测。将数据标准化为控制,设置为1。N=4,**p<0.05
图2
图2。阻断JAK/STAT和/或PI3K通路诱导吞噬细胞HSC凋亡
(A)在有或无AG490(AG)和/或PI3K抑制剂LY294002(LY)的情况下,用TAMRA标记的AB(红色)处理24小时的大鼠原发性HSC,进行DAPI(蓝色)核染色和免疫荧光检测活性caspase-3(绿色)。DMSO处理的细胞作为对照。a)对照组HSC仅DAPI阳性。b)在暴露于AB的HSC中,未检测到活性半胱天冬酶3信号。c)AG490处理的吞噬HSC对活性caspase 3呈阳性,表明凋亡率较高。d)在吞噬暴露于AG490和LY294002的HSC时,进一步诱导细胞凋亡。箭头指向活性caspase-3(绿色)、DAPI(蓝色)和TAMRA(红色)共存的AB。箭头:caspase-3阳性HSC。棒材:10μm。(B)与对照组(2.9%±0.8)相比,AB暴露没有改变凋亡率(4.0%±0.9)。AG490诱导HSC 26.9%(±1.4)的凋亡,LY294002诱导HSC 40.8%(±1.0)的凋亡。联合抑制这两条通路可诱导78.3%(±3.1)的细胞凋亡,通过AB的吞噬作用,凋亡率有所降低,但凋亡率仍然显著(57.4%±2.8)。N=4,*p<0.001。
图3
图3。AB的吞噬作用诱导JAK/STAT磷酸化和STAT3核转位
(A)将LX-2细胞暴露于AB,收集细胞裂解液,使用phosho-JAK1、总JAK1,phospho-STAT3和总STAT3抗体进行免疫印迹。实验表明,AB以时间依赖的方式降低JAK1和STAT3磷酸化。(B)作为阳性对照,瘦素(75ng/ml,10min)诱导LX-2细胞中JAK1和STAT3的磷酸化。(C)用抗STAT3抗体对大鼠原发性HSC进行免疫细胞化学。(a) 在对照细胞(未接触AB)中,STAT3是细胞质。(b,c)AB诱导的HSC STAT3核转位孵化,通过STAT3和DAPI信号的共定位检测到(d)AG490处理AB暴露的HSC抑制STAT3转位。STAT3:绿色,DAPI:蓝色。棒材:20μm。(D)通过LY294002预孵育HSC抑制PI3K活性,也可以部分抑制JAK1和STAT3磷酸化,这表明两条信号通路之间存在串扰。
图4
图4。AB的吞噬作用诱导HSC中Mcl-1的表达
在AG490存在或不存在的情况下,用AB治疗原代大鼠HSC 24小时。对细胞溶质提取物进行Western blot分析,以检测Mcl-1表达的变化。AB处理细胞中Mcl-1表达增加;用JAK抑制剂AG490对细胞进行预孵育可以抑制这一现象。IL-6治疗被用作Mcl-1表达的已知诱导剂。密度测定显示,AB的吞噬作用诱导表达增加1.8倍(±0.3),归一化为β-肌动蛋白,呈重叠对照。N=4,*p<0.05。
图5
图5。AB吞噬作用诱导ROS生成和Akt磷酸化
(A)LX-2细胞与AB孵育6小时,并使用细胞色素c分析评估ROS生成。与对照组相比,AB的吞噬作用诱导了2.2±0.4倍的超氧物活性。N=4,*p<0.05。(B)将LX-2细胞暴露于含或不含罗布青素(NADPH氧化酶抑制剂)、AG490或LY294002的AB,并收集细胞裂解物,使用phosho-Akt和总Akt抗体进行免疫印迹。AB瞬时诱导Akt磷酸化,分别被罗布青素和LY294002阻断,但AG490未阻断。
图6
图6。AB吞噬作用诱导NF-κB活化
将LX-2细胞在无血清培养基中孵育,然后暴露于AB,无论是否预先与CAPE(1ng/ml,14小时)、LY294002(600 nM,1小时)、AG490(50μM,1小时)或罗布麻素(100μM,1小时)预孵育。LX-2细胞吞噬AB可显著激活NF-κB(3.65±0.55倍),这可被CAPE、PI3K抑制所抑制,也可在较小程度上被JAK和NADPH氧化酶抑制所抑制。密度测定显示了3个实验的数据*p<0.005
图7
图7。A1在吞噬肝星状细胞中被诱导表达
(A)LX-2细胞在有或无LY294002或AG490的情况下暴露于AB。Western blot分析抗凋亡蛋白A1的表达。(B)定量密度分析表明,AB的吞噬作用上调了A1的表达(1.7±0.2倍),这是通过阻断PI3K活性而被抑制的。然而,抑制JAK通路对A1表达N=4的影响不大,*p<0.05。为了研究A1的抗凋亡作用,将A1 siRNA(30 nM)转染原代大鼠HSC并暴露于AB。(C)Western blot分析显示小干扰RNA抑制A1表达。(D)在存在或不存在FasL和环己酰亚胺的情况下,用加扰(Scr)或A1 siRNA(A1si)转染原代HSC,暴露于AB。Caspase-3/DAPI染色评估细胞凋亡。Scr+AB组细胞凋亡率为(14.1%±0.8)。FasL和CHX使其增加(29.6%±1.2)。A1 siRNA转染在基线(仅AB暴露细胞)和FasL/CHX治疗后诱导较高的凋亡率(42.1%±0.7)。平均值±SED,N=4,*p<0.001,**p<0.005。
图8
图8。HSC吞噬AB诱导不同的生存途径
AB的吞噬诱导JAK1/STAT3介导的生存途径,导致Mcl-1的上调。吞噬作用也诱导Akt磷酸化通过PI3K,这有助于NF-κB的激活。因此,A1抗凋亡蛋白在吞噬HSC时以PI3K依赖的方式上调。

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