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比较研究
2008年5月;134(5):1532-43.
doi:10.1053/j.gastro.2008.02.022。 Epub 2008年2月14日。

刺猬反应祖细胞的积累与小鼠和人类酒精性肝病的严重程度相似

附属公司
比较研究

刺猬反应祖细胞的积累与小鼠和人类酒精性肝病的严重程度相似

容美美(Youngmi Jung)等。 胃肠病学 2008年5月

摘要

背景和目标:改善酒精性肝病(ALD)的预后需要更好地了解习惯性乙醇(EtOH)消耗如何改变肝脏内的正常再生机制。刺猬(Hh)通路激活促进其他组织中祖细胞数量的增加。我们评估了慢性EtOH暴露激活肝脏Hh信号的假设。

方法:对喂食食物、高脂饮食(HF)或HF+EtOH 4周的小鼠的Hh信号转导、肝祖细胞、转化生长因子(TGF)-β诱导和肝损伤进行比较。比较Hh反应性肝细胞(如未成熟胆管细胞和卵圆细胞)和成熟肝细胞(对Hh无反应)对TGF-β介导的凋亡的敏感性。对比对照组和ALD患者的Hh反应细胞在肝脏的蓄积,并与预测亚急性死亡率的判别函数(DF)相关。

结果:HF小鼠的Hh信号和Hh反应细胞数量增加,HF+EtOH小鼠的增加最大。在这两种细胞中,祖细胞和基质细胞群都含有Hh反应细胞。HF+EtOH小鼠中的导管型祖细胞和纤维化标记物多于HF小鼠。前者也表达更多TGF-β-1。TGF-β-1治疗可选择性地提高Hh反应性未成熟肝细胞的活性,并使存活的成熟肝细胞产生Hh配体。ALD患者的Hh反应细胞增多。与DF<32的患者相比,DF>32的患者Hh-反应性未成熟导管细胞的小叶积累更大。

结论:ALD中Hh信号增加,可能通过促进未成熟导管细胞在肝脏的积聚而影响ALD结果。

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数字

图1
图1
乙醇(EtOH)诱导的脂肪性肝炎小鼠模型。典型高脂肪饮食(HF)的H&E染色肝脏切片(A类)和HF+EtOH-fed(B类)小鼠(原始放大倍数,×40)。方框插入A类B类分别说明微泡脂肪变性(A类),脂肪变性膨胀的肝细胞(B类)和凋亡体(B类)放大倍数较高时(原始放大倍数×63)。箭头表示Mallory尸体。典型HF的TUNEL染色肝脏切片(C类)和HF+EtOH(D类)老鼠。喂食对照组中TUNEL(+)细胞的数量(控制器,n=4)、HF小鼠(n=4)和HF+EtOH小鼠(n=9)(E类). 三个治疗组全肝RNA中胶原蛋白(I)α的QRT-PCR分析(F类). 结果如图所示E类F类表示为平均值±SD*P(P)< .05; **P(P)< .005.
图2
图2
脂肪肝中刺猬配体和刺猬靶基因的表达增加。从饲料对照组的肝脏中分离出RNA(控制器、HF小鼠(n=4)和HF+EtOH小鼠(n=9),并通过QRT-PCR进行分析。结果以Sonic hedgehog的平均值±SD表示() (A类),已修补(私人投资公司) (B类),Gli2(C类)和Frizzled相关肽(Frp公司) 1 (D类). *P(P)< .05; **P(P)< .005.
图3
图3
在HF和HF+EtOH小鼠中表达Hh靶基因Gli2和Ptc的细胞在肝脏的蓄积。对随机选择的3只小鼠/治疗组的肝脏切片进行免疫组织化学染色。Gli2公司(A类C类)和修补程序(Ptc)(B类D类)在典型的HF小鼠中(A类B类)和HF+EtOH小鼠(C类D类)分别为(原始放大倍数,×40)。在7个门静脉三联体(PT)/切片中计数Gli2(+)胆管细胞(BD)和肝细胞(HEP)细胞。Gli2(+)BD表示为每PT的Gli2(线形图)和Gli2(+)HEP细胞表达为Gli2+细胞核/HEP细胞总数的百分比(条形图) (E类). 通过形态计量学测量8个中层区域/截面的Ptc(+)细胞(F类). 绘制所有小鼠的平均±SD结果*P(P)<0.05**P(P)<0.005与CON。
图4
图4
脂肪肝损伤期间肝祖细胞和胆管细胞的扩张。典型食物对照组的AE1/3免疫组织化学染色(A类),HF鼠标(B类),和2只不同的HF+EtOH小鼠(C类D类)(原始放大倍数,×40)。饲料对照组全肝RNA中CK7、HNF6和CK19的QRT-PCR分析(控制器,n=4),HF(n=4,和HF+EtOH小鼠(n=9)(E类). 平均值±标准偏差*P(P)< .05.
图5
图5
脂肪肝损伤诱导TGF-β-1,成熟和未成熟肝细胞的反应不同。喂食对照组(CON,n=4)、HF(n=4,和HF+EtOH(n=9)小鼠全肝RNA中TGF-β-1的QRT-PCR分析(A类). 成熟肝细胞经24小时TGF-β-1治疗(2 ng/mL)后Caspase 3/7活性(AML12型),未成熟胆管细胞(603亿)和椭圆形细胞(电子产品C10) (B类). TGF-β处理的AML12细胞中印度刺猬(Ihh)的表达。QRT-PCR分析结果(C类)和Western blot分析(D类). 所有结果均显示为平均值±SD*P(P)< .05, **P(P)<.005 vs CON或车辆。
图6
图6
人类酒精性肝病(ALD)的导管反应。典型酒精性肝病患者的天狼星红染色(A类).方框显示健康肝脏对照患者的天狼星红染色(均为40倍放大)。Ptc免疫组织化学染色(B类)和Gli 2(C类)来自ALD代表性患者的肝脏(原始放大倍数,×40)。Gli2和αSMA双重免疫组化染色(D类),波形蛋白(E类)或CK 7(F类)代表性ALD肝脏。棕色是Gli2,并且蓝色是α-SMA、Vimentin或CK 7。箭头指示增殖的导管细胞,其对Gli2和αSMA或波形蛋白呈双阳性(原始放大倍数,×63)。
图7
图7
酒精性脂肪性肝炎患者中Gli2/CK7双阳性导管细胞的小叶积聚与高短期死亡率相关。Gli2双重免疫组化染色(棕色的)和CK7(蓝色)短期死亡率低风险的代表性患者的肝实质内(Maddrey判别函数(DF)<32)(A类)以及另一个具有代表性的短期死亡率高风险患者(Maddrey DF>32)(B类)(原始放大倍数,×63)。通过形态计量学对所有受试者6个实质区域/断面的双(+)细胞进行定量,并比较Maddrey DF<32(n=5)和MaddreyDF>32(n=4)患者的平均±SD结果(C类). *P(P)<0.05。Gli2/CK7(+)细胞积累与DF的相关性(D类,P(P)<.05),Child-Pugh分数(E类,P(P)<0.05)和血清胆红素(F=0.64)(P(P)< .1).

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引用人

工具书类

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    1. Yep WW,伯特AD。酒精性肝病。精神病学诊断。2006;23:149–160.-公共医学
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