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2008年2月;14(2):144-53.
doi:10.1038/nm1717。 Epub 2008年1月27日。

促凋亡BAD在胰岛素分泌和β细胞存活中的双重作用

附属公司

促凋亡BAD在胰岛素分泌和β细胞存活中的双重作用

尼卡·N·丹尼尔等。 自然·医学 2008年2月

摘要

促凋亡BCL-2家族成员BAD位于一种葡萄糖激酶复合物中,该复合物调节葡萄糖驱动的线粒体呼吸。在这里,我们提出了BAD在β细胞葡萄糖刺激的胰岛素分泌中的生理作用的遗传学证据。BAD的这种新功能特别依赖于其BH3序列的磷酸化,而BH3序列以前被定义为一个重要的死亡域。我们通过使用靶向葡萄糖激酶、恢复葡萄糖驱动的线粒体呼吸和纠正BAD-deficient胰岛中胰岛素分泌反应的细胞可渗透、碳氢结合的BAD BH3螺旋,强调磷酸化BAD BH3.的药理学相关性。我们的研究揭示了BAD BH3结构域的替代靶点和功能,并强调磷酸化BAD BH 3模拟物在选择性恢复β细胞功能方面的治疗潜力。此外,我们发现BAD在高脂肪喂养期间调节β细胞质量的生理适应。我们的发现为BAD在β细胞存活和胰岛素分泌中的双功能活性提供了遗传学证据。

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数字

图1
图1
胰岛素分泌受损 −/−老鼠。血糖()和胰岛素(b条)胰岛素分泌水平和曲线下面积(AUC)(c(c))在对隔夜禁食者进行高血糖钳夹试验期间 +/+(n个=10)和 −/−(n个=12)只小鼠*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, +/+ −/−小鼠,未配对,双尾-测试。
图2
图2
胰岛素分泌缺陷的特征 −/−小岛。()胰岛周血。数据是四个独立实验的平均值±标准偏差。每个胰岛的DNA含量分别为12.09±0.65 ng和13.17±0.95 ng +/+ −/−小鼠。(b条)胰岛素在整个围手术期(最小0-40)、第一阶段(最小8-15)和第二阶段(最小15-40)的AUC. (c(c))葡萄糖引起的ATP/ADP比值变化 +/+ −/−小岛。()用静态孵育法测定10 mMα-酮异己酸(KIC)、0.25 mM甲苯磺丁脲或0.25 mC卡巴胆碱对胰岛素释放的影响。数据是四个单独实验的平均值±标准偏差。每个胰岛的胰岛素含量分别为115.1±4.64和118.49±4.09 ng, +/+ −/−分别是。(e(电子))原代胰岛匀浆中的葡萄糖激酶活性 +/+ −/−老鼠。数据表示四个独立测量值的平均值±s.e.m。((f))胰岛素分泌 +/+ −/−随着葡萄糖浓度的增加,胰岛周围融合。数据是四个独立实验的平均值±标准偏差*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, ***P(P)<0.001,学生-测试。
图3
图3
葡萄糖引起的线粒体膜电位和[Ca的变化2+]在里面 +/+ −/−β细胞。()线粒体膜电位的变化(ΔΨ)对刺激性燃料的反应(n个= 10). 顶部的图像根据荧光强度进行了彩色编码:蓝色(低)和红色(高)。比例尺,5μm。(b–g)代表性Ca2+从个人获得的痕迹 +/+(n个=116)和 −/−(n个=115)胰岛细胞对11 mM葡萄糖和35 mM KCl的反应。对来自每个基因型的至少四只不同小鼠的细胞进行分析。[Ca的定量总结2+]响应见在线补充表1。
图4
图4
BAD BH3结构域及其磷酸化状态对GSIS的调节。()GSIS缺陷的基因重建 −/−小岛。数据是用两种独立的病毒库存制剂进行的三个单独实验的平均值±标准偏差。不另作说明,不重要。星号比较各组胰岛在5.5 mM和12.5或25 mM葡萄糖下的释放***P(P)< 0.001.P(P)<0.05,比较 +/+ −/−胰岛感染对照(GFP)病毒;P(P)<0.001,比较 −/−感染对照病毒的胰岛与表达野生型BAD的病毒;P(P)<0.05,比较 −/−感染表达野生型BAD的病毒的胰岛与表达L151A突变体的病毒相比。每个胰岛的胰岛素含量分别为122.75±12.34和127.13±5.09 ng, +/+ −/−分别是。(b条)GSIS输入 +/+, 3SA公司 155A美元小岛。数据是三个独立实验的平均值±s.e.m。星号比较各组胰岛在5.5 mM和12.5或25 mM葡萄糖下的释放*P(P)< 0.05, ***P(P)< 0.001.P(P)< 0.05, +/+ 3个 +/+ 155A美元每个胰岛的胰岛素含量分别为118.74±3.86、96.46±3.42和106.5±6.24 ng, +/+,3个 155A美元分别是。(c(c),)血胰岛素(c(c))和葡萄糖()腹腔葡萄糖耐量试验后的丰度 +/+(n个=10)和 155A美元(n个=10)只小鼠*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, +/+ 155A美元老鼠,学生的-测试。(e(电子))喂食或隔夜禁食小鼠胰岛中的BAD磷酸化状态。在喂食和禁食状态下,Ser155的磷酸化-BAD与总BAD的比率分别为0.72和0.01,Ser136为0.80和0.03。WB、western blot。
图5
图5
β细胞中SAHB化合物的代谢活性。()胰岛治疗产生的人类SAHB小组。保存的亮氨酸和天冬氨酸残基以黄色突出显示,丝氨酸以灰色标记。不同SAHB化合物中改变的残留物标记为绿色和紫色。N个L(左),去甲亮氨酸*S5非天然氨基酸(见方法)。(b条)3μM SAHB对GSIS的影响。数据是五个独立实验的平均值±标准偏差。星号比较各组胰岛在5.5 mM和12.5或25 mM葡萄糖下的释放**P(P)< 0.01, ***P(P)< 0.001.P(P)<0.05或P(P)< 0.001, +/+ −/−胰岛用载体治疗。P(P)<0.05或P(P)< 0.01, −/−用载体治疗的胰岛与BAD SAHBA类P(P)<0.05或P(P)< 0.01, −/−BAD SAHB治疗的胰岛A类与磷酸化SAHB(SAHBA类(S→pS)或SAHBA类(S→D)). 每个胰岛的胰岛素含量分别为114.61±5.18和105.54±4.63ng, +/+ −/−分别是。(c(c))1μM SAHB化合物对葡萄糖诱导的ΔΨ变化的影响. ()SAHBs与重组BCL-X的结合亲和力L(左)ΔC蛋白。(e(电子))3μM SAHBs对INS-1细胞葡萄糖激酶活性的影响*P(P)<0.05和***P(P)< 0.001. ((f))含有可光活化二苯甲酮部分的衍生小鼠SAHBs小组。()葡萄糖激酶作为BAD BH3直接靶点的鉴定。SAHB之间共价络合物的形成A类(S→pS)紫外光活化后的葡萄糖激酶。(小时)SAHB化合物与全长IVTT BAD竞争与IVTT葡萄糖激酶的结合。IP,免疫沉淀。
图6
图6
的灵敏度HFD的遗传模型。()相对胰岛16周HFD治疗后野生型小鼠的mRNA水平*P(P)< 0.05. (b条)每周血糖(左)和体重(右) +/+ −/−(n个=20)用HFD治疗16周。(c(c))队列胰岛面积百分比b条右侧显示了具有代表性的胰岛素抗体胰腺切片。比例尺,250μm。()喂食的血液胰岛素水平 +/+ −/−对照组或HF饮食8周*P(P)< 0.05, −/− +/+. (e(电子))一个队列的每周血糖(左)和体重(右) +/+3SA公司(n个=8)HFD治疗16周。((f))队列胰岛面积百分比e(电子).比例尺,250μm。()喂食的血液胰岛素水平 +/+ 3SA公司对照组或HFD治疗8周*P(P)< 0.05, 3个 +/+HFD上。(小时)BAD在胰岛素分泌和β细胞存活中双重作用的拟议模型。BH3结构域赋予BAD在GSIS和凋亡中的双功能活性。该结构域中的Ser155磷酸化指示BAD通过靶向葡萄糖激酶和调节胰岛素分泌发挥代谢作用。当去磷酸化时,BAD BH3靶向BCL-XL(左)控制细胞凋亡。细胞凋亡以及其他β细胞生长、增殖和存活的阴性和阳性调节因子有助于β细胞质量的生理控制。

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