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.2007年12月18日;104(51):20612-7.
doi:10.1073/pnas.0706796104。 Epub 2007年12月12日。

缺乏ryanodine受体S-亚硝基化增加心肌细胞肌浆网钙渗漏和心律失常发生

附属公司

缺乏ryanodine受体S-亚硝基化增加心肌细胞肌浆网钙渗漏和心律失常发生

丹尼尔·冈萨雷斯等人。 美国国家科学院程序. .

摘要

钙稳态改变是心脏病的一个显著特征,其中钙释放通道ryanodine受体(RyR)起主要作用。累积的数据支持了神经元型一氧化氮合酶(NOS1)通过S-亚硝化调节心脏RyR的观点。我们测试了NOS1缺乏损害RyR S-亚硝基化,导致Ca(2+)稳态改变的假设。与野生型(WT)相比,NOS1(-/-)和NOS1/NOS3(-/-/)心肌细胞中舒张性Ca(2+)水平升高,但NOS3(-/-)心肌细胞没有升高,表明舒张性Ca2+泄漏。与WT相比,NOS1(-/-)和NOS1/NOS3(-/-/)心肌细胞的漏液量增加,但NOS3(--/--)心肌细胞没有增加。重要的是,NOS1/和NOS1/。尽管NOS1(-/-)心脏中FK-binding蛋白12.6与RyR的化学计量比和结合以及RyR磷酸化程度没有改变,但RyR2 S-亚硝化作用显著降低,硫醇氧化水平增加。总之,这些发现表明NOS1缺乏导致RyR2亚硝化,导致舒张性Ca(2+)泄漏和促心律失常表型。NOS1失调可能是与心脏病相关的关键表型的近因。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
Ca的力-频率关系和参数2+拆卸。()肌节缩短和钙瞬变的典型痕迹([Ca2+])野生型(wt)和NOS1缺乏的心肌细胞。(b条)肌角缩短与[Ca的振幅2+]瞬态(F类F类0)随着刺激频率的增加,NOS1受损−/−和NOS1/NOS3−/−但不在NOS3中−/−肌细胞**,P(P)与WT和NOS3相比<0.05−/−. (c)收缩压(峰值)和舒张压[Ca的校准值2+]i、。.编号1−/−和NOS1/NOS3−/−心肌细胞舒张[Ca水平增加2+]i、。. **,P(P)与WT和NOS3相比<0.05−/−. (d日)[Ca的频率相关加速度2+]衰变被估计为衰变常数(τ)和TR50(达到基线值50%的时间)。两个参数在菌株之间没有显著差异。(e(电子))NCX功能。Tau和T50用以分析钠钙交换器NCX在咖啡因过量脉冲期间的功能。
图2。
图2。
评估SR钙泄漏和负荷-泄漏关系。()显示Ca协议的代表性跟踪2+泄漏。刺激心肌细胞后(示例中为4 Hz),溶液变为Na+/钙2+-自由(0 Na+/0钙2+)培养基培养40秒。恢复一段时间后,用含有1 mM丁卡因(RyR阻滞剂)的无钠/无钙培养基再次以相同频率激发细胞。fura信号的减少对应于Ca2+泄漏。(b条)SR内Ca2+内容是刺激频率的函数。频率的增加导致Ca的增加2+负载。(c)SR内Ca变化2+含量(胞浆钙的变化2+丁卡因)作为负荷的函数。尽管钙负荷减少2+进入SR后,NOS1中的丁卡因诱导位移增加−/−和NOS1/3−/−与野生型(wt)相比,心肌细胞的舒张泄漏增加。(d日)钙的部分释放2+以4 Hz和10 mM咖啡因脉冲刺激细胞后(所研究的心肌细胞数量出现在酒吧内;*,P(P)<0.05与WT。
图3。
图3。
致心律失常钙2+NOS1缺乏心肌细胞中的波。()WT、NOS1的代表性痕迹−/−,编号1/NOS3−/−和NOS3−/−以4赫兹刺激心肌细胞。在0 Na中暂停后+/0钙2+细胞内钙缓冲液2+NOS1出现波浪−/−和NOS3/NOS1−/−细胞。随着丁卡因的出现,它们被废除了。(b条)自发钙的定量2+WT、NOS1显示的每个单元的波数−/−,编号3−/−和NOS1/3−/−以4 Hz刺激心肌细胞;*,P(P)< 0.05; **,P(P)与WT相比<0.01(c)自发钙的分析2+WT、NOS1显示的波形−/−心肌细胞受1至6赫兹刺激。*,P(P)<0.05与WT(d日)细胞外高钙的影响2+钙浓度2+波浪。WT和NOS1−/−心肌细胞从1.8 mM细胞外钙转换为5 mM−/−显示舒张钙2+波(五个细胞中有四个),但WT心肌细胞(四个细胞中没有)。
图4。
图4。
图4。NOS1受体阻滞剂和NO供体的药理学操作。()用特异性NOS1抑制剂处理野生型心肌细胞(Wt)S公司-甲基硫代瓜氨酸(SMTC;1μM)。15分钟后,用Na攻击细胞+/钙2+-释放缓冲液,40秒后加入咖啡因。(b条)NOS1号−/−用NO供体(DETA/NO,100μM)处理细胞,然后用Na激发+/钙2+-游离溶液和咖啡因评估SR内钙2+内容(*,P(P)<0.05与WT;**,P(P)与WT和NOS1相比,<0.01−/−; 酒吧内出现的心肌细胞数量)。
图5。
图5。
FKBP12.6与RyR2结合和磷酸化的化学计量学。()RyR2和FKBP12/12.6的蛋白印迹。野生型(wt)和NOS1的心脏匀浆−/−老鼠(n个=10)分析RyR2和FKBP12/12.6的总含量。*,P(P)<0.05与WT(b条)用抗RyR2抗体对两株菌株进行共免疫沉淀,进一步分析FKBP12.6与RyR2的特异性结合(n个= 6). (c)RyR的磷酸化状态也通过使用针对磷酸化Ser-2908的特异性抗体进行测量,并与RyR2的总量进行比较。每个条形图中显示了心肌细胞的数量。
图6。
图6。
RyR2分析S公司-亚硝基化和游离半胱氨酸。()RyR公司S公司-通过生物素开关评估亚硝化作用。野生型(wt)和NOS1的心脏−/−小鼠接受生物素开关并用抗RyR2抗体进行免疫沉淀。(上部)使用抗生物素抗体的代表性Western blot。(下部)样品中的RyR2总量。条形图恢复了生物素信号与总RyR2的比率(条形图中显示的样本数量;*,P(P)与WT和NOS3相比<0.05−/−,方差分析)。(b条)RyR2中游离半胱氨酸的评估。心脏匀浆用一溴比曼(mBrB)标记,这是一种游离半胱氨酸的特异性探针。然后通过电泳对样品进行解析,并通过紫外线透照对游离半胱氨酸进行可视化。(上部)野生型和NOS1中游离半胱氨酸的强度−/−匀浆。作为对照,对野生型心脏灌注1和10 mM H2O(运行)2分别是。(下部)凝胶银染法测定RyR的总含量(条形图中显示的样品数量;*,P(P)与WT和NOS3相比<0.05−/−,方差分析)。

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