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.2006年11月;26(22):8623-38。
doi:10.1128/MCB.00487-06。 Epub 2006年9月5日。

KAP1共表达子的功能是协调KRAB锌指蛋白介导的转录抑制所需异染色质的从头HP1标定微环境的组装

附属公司

KAP1共表达子的功能是协调KRAB锌指蛋白介导的转录抑制所需异染色质的从头HP1标定微环境的组装

Smitha P Sripathy公司等。 分子细胞生物学. 2006年11月.

摘要

KAP1/TIF1beta被认为是转录抑制因子KRAB锌指蛋白(KRAB-zfp)超家族的通用共抑制蛋白。为了表征KAP1和KAP1相互作用蛋白在转录抑制中的作用,我们研究了激素反应性KRAB和KAP1-阻遏蛋白对稳定整合报告基因的调控。在这里,我们证明了小干扰RNA(siRNA)对内源性KAP1水平的消耗显著抑制了KRAB介导的染色质模板的转录抑制。同样,siRNA降低HP1alpha/beta/gamma和SETDB1的细胞水平可以减弱KRAB-KAP1的阻遏作用。我们还发现,KAP1与DNA的直接连接足以抑制整合转基因的转录。这种活性完全依赖于KAP1与HP1的相互作用,以及KAP1的完整PHD指和溴结构域,这表明这些结构域在转录共表达中协同作用。野生型KAP1抑制状态的实现涉及RNA聚合酶II招募减少,组蛋白H3 K9乙酰化和H3K4甲基化水平降低,组蛋白占有率增加,三甲基组蛋白H3K9、H3K36和组蛋白H4K20富集,以及转基因近端调控序列中HP1沉积。含有HP1结合域突变的KAP1蛋白未能诱导与转基因DNA序列相关的组蛋白修饰发生任何变化,这意味着HP1定向的核区隔化是KRAB/KAP1阻遏复合体转录抑制所必需的。这些数据的结合表明,KAP1的功能是协调动态调节组蛋白修饰和HP1沉积变化的活动,以建立异染色质的从头开始微环境,这是KRAB-zfps抑制基因转录所必需的。

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数字

图1。
图1。
KRAB介导的抑制需要KAP1。(A) 使用识别KAP1 N末端(抗RBCC)或C末端(抗PHD/溴)的抗体,对两个独立稳定的敲除细胞系中内源性KAP1表达进行Western blot分析。检测Rbap48(p48)作为负荷控制。(B) 5XGAL4-TK-核糖核酸酶报告子和GAL-KRAB阻遏蛋白的示意图。(C) 用p5XGAL4-TK-核糖核酸酶报告子和表达GAL4-KRAB阻遏蛋白的指定数量的质粒瞬时转染稳定的KAP1敲除细胞(cl4和cl10)。转染48小时后测量荧光素酶活性,并对转染效率进行标准化。压制(n个-fold)表示在没有任何效应质粒的情况下,标准化荧光素酶活性与在存在指示数量的GAL4-KRAB质粒转染的情况下测得的活性的比率。这些数据表示两个独立实验的平均值,共做了三次。误差条表示平均值的标准偏差。
图2。
图2。
KAP1的共抑制剂活性取决于它与HP1、功能性PHD指和溴代多巴胺的相互作用。(A) KAP1的结构域和合成引入突变的位置示意图。(B) 用p5XGAL4-TK-luciferase报告子、100 ng pM1-KRAB和表达FLAG-tagged KAP1(野生型[WT]、RV487、488EE、W664A和F761A)的质粒瞬时转染稳定的KAP1敲除细胞。转染48小时后测量荧光素酶活性,并对转染效率进行标准化。按图1所示计算抑制。数据代表两个独立的实验,一式三份。误差条表示平均值的标准偏差。明显没有误差条表示标准偏差太小,无法进行物理说明。(C) 转染HEK293细胞的Western blot分析,确认FLAG-KAP1蛋白的稳定外源表达(使用抗FLAG和抗RBCC抗体)。β-肌动蛋白代表一种负荷控制。
图3。
图3。
激素调节报告基因转基因细胞系的建立。(A) 生成具有稳定整合的5XGAL4-TK-核糖核酸酶报告子和激素反应阻遏蛋白组成表达的细胞系的策略。(B) 异源激素反应阻遏蛋白示意图。KAP1的KRAB结构域(Kox1氨基酸1至90)或氨基酸293至835(野生型、RV487、488EE、W664A、L720A和F761A)在框架中融合到ERHBD-GAL4 DNA结合域融合的C末端。
图4。
图4。
ERHBD-GAL4-KRAB对染色质模板的激素依赖性抑制需要KAP1。(A,上面板)ERHBD-GAL4-KRAB对激素依赖性阻遏的动力学。细胞在含有0.1%乙醇或500 nM 4-OHT的培养基中培养指定时间。压制(n个-fold)是指在没有激素的情况下,标准化荧光素酶活性与有激素的情况下标化荧光素酶活性的比值。数据表示三次独立实验的平均值,误差条表示平均值的标准偏差。(下图)使用针对GAL4-DNA结合结构域的抗体检测所示细胞克隆中ERHBD-GAL4-KRAB(箭头)的表达。检测Rbap48(p48)作为负荷控制。(B) 实验方案概述。12.10Kr细胞接受两轮转染100 nM的独立dsRNA寡核苷酸,目的是在用0.1%乙醇或500 nM 4-OHT处理48 h之前降低KAP1的表达。(C)对第6天从转染细胞中制备的具有指示siRNA的全细胞提取物进行Western blot分析。(D)靶向KAP1 mRNA不同区域的独立siRNA分子短暂耗尽KAP1,导致激素依赖性KRAB介导的抑制减弱。按面板A所述计算抑制。数据代表两个独立实验,一式三份。误差条表示平均值的标准偏差。UT,未转染。
图5:。
图5:。
ERHBD-GAL4-KAP1对染色质模板的激素依赖性抑制。(A) ERHBD-GAL4-KAP1在所示细胞克隆中对激素依赖性转录抑制的动力学。细胞在含有0.1%乙醇或500 nM 4-OHT的培养基中培养指定时间。按照图4A所述计算抑制。数据表示一式三份的两个独立实验的平均值,误差条表示平均值的标准偏差。(B) 使用针对GAL4 DNA结合域的抗体检测所示细胞克隆中ERHBD-GAL4-KAP1的表达(箭头)。β-肌动蛋白表达作为负荷对照。(C) 表达ERHBD-GAL4-KAP1蛋白(野生型[WT]、RV487、488EE、W664A、L720A和F761A)的稳定细胞系的Western blot分析。底部的数字表示每个ERHBD-GAL4-KAP1蛋白的表达水平(任意单位),归一化为β-actin表达。(D) 所示细胞系在含有0.1%乙醇或500 nM 4-OHT的培养基中培养96小时。按照图4的图例所述计算抑制。数据表示三次独立实验的平均值,误差条表示平均值的标准偏差。
图6。
图6。
ERHBD-GAL4-KAP1抑制的荧光素酶转基因的染色质免疫沉淀分析。(A) 5XGAL4-TK-核糖核酸酶转基因示意图。粗体线表示从免疫沉淀中回收的DNA中PCR扩增的转基因的四个区域。(B) 在含有0.1%乙醇或500 nM 4-OHT的培养基中生长96 h的12.32KA细胞的甲醛交联染色质用针对所示抗原的抗体进行免疫沉淀。在指定的位点对免疫沉淀DNA进行PCR扩增,以检测低磷酸化RNA聚合酶II募集、组蛋白H3占位、组蛋白修饰(左侧)中的激素依赖性变化以及HP1和SETDB1占位的变化(右侧)。输入的DNA分别占免疫沉淀DNA总量的0.25%、0.125和0.0625%。
图7。
图7。
用4-OHT治疗后,KAP1-HP1相互作用的破坏未能诱导RNA聚合酶II募集、组蛋白占据和组蛋白修饰(A)或HP1/SETDB1募集到荧光素酶报告子(B)启动子序列中的激素依赖性变化。在含有0.1%乙醇或500 nM 4-OHT的培养基中生长96 h的12.11M2细胞的甲醛交联染色质用针对所示抗原的抗体进行免疫沉淀。PCR扩增免疫沉淀中恢复的启动子和3′荧光素酶编码序列。输入的DNA占免疫沉淀DNA总量的0.25、0.125和0.0625%。
图8。
图8。
染色质模板的激素依赖性KRAB阻遏需要KAP1、HP1和SETDB1。12.10Kr细胞接受两轮dsRNA寡核苷酸转染,以暂时降低所示蛋白质的水平,如图4B的图例所示。为了三重敲除HP1α、-β和-γ,用50 nM siRNA转染细胞到每个靶点。(A) 对第6天制备的细胞全细胞提取物进行Western blot分析,该细胞转染了指示的siRNA.UT,未转染。(B) 短暂耗尽KAP1、HP1和SETDB1可减弱染色质模板的激素依赖性KRAB阻遏。这些数据表示两个独立实验的平均值,共做了三次。误差条表示平均值的标准偏差。

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引用人

参考文献

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