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.2005年6月29日;25(26):6156-66.
doi:10.1523/JNEUROSCI.1017-05.2005。

Sortilin控制脑源性神经营养因子向调节分泌途径的细胞内分选

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Sortilin控制脑源性神经营养因子向调节分泌途径的细胞内分选

陈哲余等。 神经科学. .

摘要

脑源性神经营养因子(BDNF)在神经元活性依赖性分泌后,调节关键的神经系统功能。最近,人类bdnf基因的一个变体导致前体蛋白中缬氨酸到蛋氨酸的替代,已被证明会导致神经元调节分泌缺陷和记忆障碍。在这里,我们报道了Vps10p结构域蛋白sortilin在控制BDNF分选到调节分泌途径中的新功能。Sortilin在蛋氨酸替代区域与BDNF特异性相互作用,并在神经元分泌颗粒中与BDNF.共定位。sortilin的截短形式导致BDNF在不影响神经营养因子-4(NT-4)分泌的情况下向组成型分泌途径错配。此外,引入初级神经元的sortilin小干扰RNA也导致BDNF从调节分泌途径错配到组成分泌途径。总之,这些数据表明了理解与变异BDNF相关的缺陷的机制,并提供了一个基于对分泌途径分类的不同突触前调节的框架,以解释原肌球蛋白相关激酶B的两种配体BDNF和NT-4如何介导不同的生物反应。

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数字

图1。
图1。
sortilin与野生型和变异BDNF的共免疫沉淀。A类,HEK 293细胞与编码sortilin和C末端BDNF的cDNA共转染瓦尔-HA或BDNF遇见-HA或空向量(-)。细胞裂解物用HA抗体免疫沉淀,用分拣素抗体免疫印迹(顶部)。BDNF-HA的免疫沉淀(IP)经HA抗体免疫印迹证实(中)。粗裂解物用sortilin抗体和HA抗体进行免疫印迹,以确认等效表达水平(底部)。B类,体外结合试验。GST-BDNF公司瓦尔、GST-BDNF遇见或GST-NT-4前体融合蛋白与过度表达全长sortilin的HEK 293细胞的裂解物孵育。用抗皮质素抗体免疫印迹法检测结合的索氨酸。
图2。
图2。
定位sortilin与BDNF突变体的相互作用。A类用sortilin和全长BDNF或NT-4或截断突变体共同转染HEK 293细胞。用HA抗体对裂解液进行免疫沉淀,用sortilin抗体进行免疫印迹(顶部)。用HA抗体免疫印迹证实BDNF-HA的免疫沉淀(中间)。Sortilin的表达通过Sortilin抗体进行验证(下图)。B类,顶部面板中蛋白质印迹的定量A类作为突变体神经营养因子与野生型BDNF相比的sortilin共免疫沉淀(Co-IP)的百分比。通过三个独立实验的分析确定平均比例±SEM。C类,BDNF和NT-4突变体概述A类以及对sortilin与突变BDNF和NT-4相互作用的总结。免疫沉淀;wt,野生型;m、 成熟。
图3。
图3。
绘制BDNF与sortilin突变体的相互作用。A类,tSort与BDNF的共免疫沉淀。将HEK 293细胞与编码突变的截短分拣蛋白或全长分拣蛋白的cDNA以及C末端标记的BDNF-HA共同转染。细胞裂解物用HA抗体免疫沉淀,用分拣素抗体免疫印迹(顶部)。用HA抗体免疫印迹证实BDNF-HA的免疫沉淀(中间)。粗裂解物用sortilin抗体进行免疫印迹,以确认等效表达水平(底部)。B类BDNF与sortilin的内源性关联。P10海马和皮层裂解物用抗BDNF抗体或正常兔IgG进行免疫沉淀,并用亲和素抗体进行免疫印迹(顶部)。BDNF的免疫沉淀通过BDNF抗体的免疫印迹得到证实(中间)。粗裂解物用分拣素抗体进行免疫印迹,以确认等效蛋白负荷(底部)。C类,BDNF的组成性分泌,在缺乏或存在截短的分拣蛋白的情况下。用编码GFP或tSort的重组腺病毒感染稳定表达proBDNF的HEK 293细胞,感染倍数为1。感染48小时后收集培养基(每车道25μg),并用BDNF和sortilin抗体进行免疫印迹。Wt,野生型;免疫沉淀;河马,海马;Con,控制。
图4。
图4。
变异型和野生型BDNF与sortilin的亚细胞共定位。A类分化后的PC12细胞转染N末端HA标记变异体(Met)或野生型BDNF(Val)。48小时后固定细胞并渗透。BDNF和sortilin的克隆化通过与抗HA和抗皮质素抗体结合来观察。此外,未转染分化的PC12细胞在48小时后固定并渗透。通过与抗皮质素和抗SecII抗体共染,可以观察到内源性sortilin和SecII的Colocalization。显示了典型的外荧光图像。B类用N-末端HA标记变异体(Met)或野生型BDNF(Val)和Myc-tagged sortilin转染海马神经元。48小时后固定细胞并渗透。如材料和方法中所述,使用表位抗体,通过共聚焦显微镜观察HA-BDNF和Myc-sortilin的共定位。使用MAP2抗体确认所有神经元。此外,未转染的神经元在48小时后固定并渗透。通过与抗皮质素和抗SecII抗体共染,可观察到内源性sortilin和SecII的克隆化。显示了典型的外荧光图像。比例尺,20μm。
图5。
图5。
截短的sortilin改变细胞内BDNF靶向分泌颗粒。A类,分化后的PC12细胞与全长或截短的Myc-标记的sortilin以及N-末端HA-标记的BDNF共同转染瓦尔或BDNF遇见48h后细胞固定并渗透。通过与抗HA、抗Myc抗体和抗SecII抗体结合,可以观察到sortilin(全长,截断)、BDNF和SecII的定位。显示了典型的外荧光图像。B类,海马神经元与截短的Myc-tagged sortilin和N-末端HA标记的BDNF共同转染。48小时后固定细胞并渗透。BDNF和SecII的定位是通过与抗HA、抗SecII抗体和抗MAP2抗体结合来实现的。通过与抗HA、抗Myc抗体和抗SecII抗体共染色,观察截短的sortilin、BDNF和SecII的定位。显示了典型的外荧光图像。比例尺,20μm。
图6。
图6。
BDNF前体蛋白在活性依赖性BDNF分泌中的作用。A类在转染N末端HA-BDNF的PC12细胞中表达含有BDNF前体差异区域(Box1、Box2、Box3、Box2+3)的慢病毒构建物,该区域融合到GFP或GFP单独。48小时后,在材料和方法中描述的去极化分泌条件下收集培养基,并用ELISA进行分析。结果显示为六个独立实验测定的平均值±SEM(**第页< 0.001; 学生的t吨测试)。B类,用缺乏前体蛋白某些区域的BDNF突变形式转染分化的PC12细胞(ΔBox1,ΔBox2′,ΔBox3,ΔBox2+3)。48小时后,在材料和方法中描述的去极化分泌条件下收集培养基,并用ELISA进行分析。结果显示为六个独立实验分析得出的平均值±SEM(**第页< 0.001; 学生的t吨测试)。WT,野生型。
图7。
图7。
截短的sortilin选择性地改变活性依赖性BDNF分泌。A类在存在或不存在tSort的情况下,用NT-4转染分化的PC12细胞。48小时后,如材料和方法中所述,在去极化和组成型分泌条件下收集培养基,并通过ELISA进行分析。在存在或不存在全长sortilin(Sort)或tSort的情况下,用BDNF转染分化的PC12细胞。48小时后,在去极化状态下收集培养基(B类)和组成性分泌物(C类)条件,如材料和方法中所述,并通过ELISA分析。所有结果均表示为六个独立实验分析得出的平均值±SEM(*第页< 0.01;**第页< 0.001; 学生的t吨测试)。
图8。
图8。
截短的sortilin和sortilin-siRNA选择性地改变活性依赖的BDNF分泌。在存在或不存在全长sortilin(Sort)、tSort或sortilin-siRNA(siSort)的情况下,用BDNF转染海马皮层神经元。3天后,在去极化条件下收集培养基(A类)和组成性分泌物(B类)条件,如材料和方法中所述,并通过ELISA分析。所有结果均表示为六个独立实验分析得出的平均值±SEM(*第页< 0.05;**第页< 0.01; 学生的t吨测试)。C类,在有或无sortilin siRNA的情况下转染海马皮层神经元。3天后,按照材料和方法中的描述,对细胞裂解液进行sortilin-微管蛋白(负载控制)免疫印迹。

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