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.2004年6月;24(11):4664-76.
doi:10.1128/MCB.24.14664-4676.2004。

RasGRP3的C-Src磷酸化介导的表皮生长因子受体对磷脂酶C-ε的Rap2B依赖性刺激

附属公司

RasGRP3的C-Src磷酸化介导的表皮生长因子受体对磷脂酶C-ε的Rap2B依赖性刺激

Matthias B采矿场等人。 分子细胞生物学. 2004年6月.

摘要

利用内源性表达PLC-偶联表皮生长因子(EGF)受体的HEK-293细胞,研究了在Ras-like和Rho GTPases控制下磷脂酶C-ε(PLC-epsilon)的受体酪氨酸激酶调节。通过EGF受体激活PLC-gamma1和PLC-epsilon的PLC和Ca(2+)信号,通过梭状芽孢杆菌毒素灭活Ras-related GTPases和显性阴性Rap2B的表达而被特异性抑制。EGF诱导Rap2B快速而持续的GTP负载,Rap2Bs与PLC-epsilon的结合,以及PLC-epsilon依赖于Rap2B-的易位到质膜。EGF对Rap2B的GTP负载受细胞内Ca(2+)螯合和脂肪酶活性PLC-gamma1表达的抑制,但不受PLC-epsilon表达的抑制。RasGRP3是一种Ca(2+)/二酰基甘油调节的鸟嘌呤核苷酸交换因子,用于Ras-like GTPases,但不表达其他各种交换因子,可通过EGF受体增强Rap2B的GTP负载和PLC/Ca(2+)信号。表皮生长因子诱导RasGRP3的酪氨酸磷酸化,而不是RasGRP1,明显是由c-Src引起的;抑制c-Src干扰EGF诱导的Rap2B激活和PLC刺激。总之,这些数据表明EGF受体通过PLC-gamma1激活和c-Src对RasGRP3的酪氨酸磷酸化触发Rap2B的激活,最终导致PLC-epsilon的刺激。

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数字

图1。
图1。
PLC-γ1和PLC-ɛ对EGF诱导的PLC和Ca的影响2+HEK-293细胞中的信号传导。将空载体(vector,V)、PLC-γ1、PLC-ɛ、PLC-β1、PLC-δ1(各为野生型)、脂肪酶非活性H335Q PLC-γl和H1144L PLC-ɥ或脂肪酶无活性H335 Q PLC-γ1与H1144L PLC-\603'的组合转染HEK-293细胞。转染100μg编码脂肪酶非活性PLC的DNA和25μg编码野生型PLC的DNA。转染后48小时,IP在没有(基本)或存在100 ng EGF/ml(A)和EGF诱导的[Ca2+]增加量(B)已确定。面板A中的数据表示平均值±SEM(n个=4至5);在面板B中,[Ca的叠加轨迹2+]如图所示。插图显示PLC的免疫印迹检测。
图2。
图2。
梭状芽孢杆菌毒素和类Ras-like GTPase突变体对EGF诱导的PLC和Ca的影响2+信号。(A) HEK-293细胞在不使用(对照)或使用100 pg毒素B/ml、300 pg毒素B-1470/ml或100 ng致死毒素/ml的情况下处理24 h,然后测定IP在没有(基础)或存在100 ng EGF/ml(左面板)和EGF诱导的[Ca的情况下形成1分钟2+]增加(右侧面板)。(B) 用空载体(对照)、S17N-Ras、S17N-Rap1A或S17N-Rap2B(各100μg DNA)转染HEK-293细胞。转染后48小时,IP水平在没有(基础)或100 ng EGF/ml(左面板)和EGF-诱导的[Ca2+]确定了增加(右侧面板)。(C) 用空载体(对照)、G12V-Rap1A、G12V Rap2A或G12V Rap2B(各25μg DNA)转染HEK-293细胞。转染后48小时,IP在不使用(Basal)或使用100 ng EGF/ml的情况下测量1分钟的形成。插图:免疫印迹检测用空载体(V)或指示的GTPases转染的细胞裂解液中的GTPase。左侧面板中的数据表示平均值±SEM(n个=3至6);在右侧面板中,[Ca的叠加轨迹2+]如图所示。不重要。
图3。
图3。
Rap2B与PLC的相互作用-ɛ。(A) HEK-293细胞转染c-myc公司-标记的PLC-单独(对照)或与G12V Rap2B(25μg DNA)或与S17N Rap2B、S17N Ras或S17N Rap1A(各100μg DNA。48小时后,将细胞在不含(Basal)或含100ng/ml EGF的情况下处理5分钟,用抗c染色-myc公司抗体,并用免疫荧光激光共聚焦显微镜进行分析。棒材,5μm。(B) 用野生型Rap2B(50μg DNA)转染HEK-293细胞-myc公司-标记的野生型PLC-ɛ(WT)或H1144L PLC-ɦ(H1144L)(每个DNA 25μg)。48小时后,在不使用(−)或(+)100 ng EGF/ml的情况下,将细胞处理5分钟,然后用抗c-myc公司-抗体。c的免疫沉淀物(IP)-myc公司-标记的PLC-ɛ通过SDS-PAGE进行解析,并用抗-Rap2(α-Rap2)或抗-c探针进行探测-myc公司抗体(α-myc)如图所示。所示结果代表了三到四个实验。WB、Western blot。
图4。
图4。
类Ras GTPases的不同GEF对EGF诱导的PLC和Ca的影响2+信号。(A至C)用空载体(vector,V)、PDZ、C3G、Epac1、Repac、GRP2、RasGRP1或RasGRP3(每个25μg DNA)转染HEK-293细胞。转染后48小时,IP水平在没有(基本)或存在100 ng EGF/ml(B)和EGF诱导的[Ca的情况下测量1分钟的形成2+]增加量(C)已确定。(A) 转染细胞裂解液中HA标记GEF的免疫印迹检测。插入面板B:C3G的免疫印迹检测。(D) 用逆转录酶PCR(RT-PCR)检测HEK-293细胞中的RasGRP。面板B中的数据表示平均值±SEM(n个=3至5);在面板C中,[Ca的叠加轨迹2+]如图所示。
图5:。
图5:。
EGF受体激活Rap2B及其对RasGRP3、细胞内Ca的调节2+和PLC-γ1。(A) 用野生型Rap2B(50μg DNA)转染HEK-293细胞。在转染后48小时,在没有(−)或(+)100 ng EGF/ml的情况下刺激细胞指定的时间段。(B)HEK-293细胞仅转染Rap2B(对照)和指定的GEF(每个25μg DNA)。转染后48小时,在不使用(−)或使用(+)100ng EGF/ml的情况下刺激细胞5分钟。(C)用Rap2B转染HEK-293细胞。在转染后48小时,首先在无(对照)或100 nM Gö6976或20μM BAPTA/AM的情况下处理细胞30分钟,然后在无(Basal)或100 ng EGF/ml的情况下刺激细胞5分钟(左面板),或用1μM A23187或1μM离子霉素刺激细胞(右面板)。(D) HEK-293细胞单独转染Rap2B(对照)或H1144L PLC-ɛ或H335Q PLC-γ1(各100μg DNA)。转染后48小时,在不使用(Basal)或100 ng EGF/ml的情况下刺激细胞5分钟。用RalGDS-RBD提取GTP-负载的Rap2B,用SDS-PAGE分离,并用抗Rap2抗体进行免疫印迹。所示结果代表了三到六个实验。
图6。
图6。
EGF受体介导的c-Src对RasGRP3的酪氨酸磷酸化。(A) 用HA标记的RasGRP1或RasGRP3(各25μg DNA)转染HEK-293细胞。48小时后,在没有(−)或(+)10μM AG1478的情况下培养细胞30分钟,然后在没有(-)或(+100 ng EGF/ml的情况下刺激细胞5分钟,如图所示。WB、Western blot;α-HA,抗-HA。(B) 将RasGRP3(25μg DNA)单独转染HEK-293细胞,或将K298M c-Src或K457A Pyk2(每个DNA 75μg)转染HEK-293细胞。48小时后,将细胞在没有(−)或有(+)10μM PP2的情况下孵育30分钟,然后在没有(−)或有(+)100 ng EGF/ml的情况下刺激5分钟,如图所示。细胞裂解后,免疫沉淀HA标记的RasGRP,用SDS-PAGE分离,并用抗磷脂酰肌醇(α-PY)抗体进行检测。K298M c-Src和K457A Pyk2的表达通过特定抗体的免疫印迹实验得到确认(数据未显示)。(C) 纯化的GST标记的RasGRP3在无(−)或(+)重组C-Src的情况下,在[γ-32P] ATP或未标记的ATP。蛋白质通过SDS-PAGE分离,RasGRP3通过考马斯染色和放射自显影术检测(32P) 或用抗磷酸酪氨酸抗体(α-PY)进行免疫印迹。结果代表了三到五个实验。
图7。
图7。
钙的作用2+螯合和c-Src抑制EGF受体对Rap2B的激活和PLC的刺激。(A) 用野生型Rap2B(50μg DNA)单独转染HEK-293细胞(对照组),或用K457A Pyk2或K298M c-Src转染细胞(各转染75μg DNA。转染后48小时,在不使用(对照)或使用10μM AG1478或10μM PP2的情况下处理细胞30分钟,然后在不使用或使用100 ng EGF/ml或1μM A23187的情况下刺激细胞5分钟。用RalGDS-RBD提取负载GTP的Rap2B,用SDS-PAGE分离,并用抗Rap2抗体进行免疫印迹。显示的免疫印迹代表了四到六个实验。(B) 用空载体(对照)、K457A Pyk2或K298M c-Src(每个75μg DNA)转染HEK-293细胞。48小时后,首先在不使用(对照)或使用10μM PP2、20μM BAPTA/AM或PP2加BAPTA/AM(两者)的情况下处理细胞30分钟。IP(IP)在没有(基础)或使用100 ng EGF/ml的情况下,在指定的时间段内测量形成。面板B中的数据代表平均值±SEM(n个=三到六)。
图8。
图8。
EGF受体介导的PLC-ɛ刺激模型。有关更多详细信息,请参阅正文。

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